文章信息
- 郝海昀, 杨志清, 许喜喜, 王雪飞, 王斌, 史晓红, 付振东, 汪波, 王素萍.
- Hao Haiyun, Yang Zhiqing, Xu Xixi, Wang Xuefei, Wang Bin, Shi Xiaohong, Fu Zhendong, Wang Bo, Wang Suping.
- HBsAg阳性母亲HBeAg和新生儿调节性T淋巴细胞关系及对HBV宫内传播的影响
- Relationship between HBeAg from HBsAg positive mothers and regulatory T cells in neonates and its influence on HBV intrauterine transmission
- 中华流行病学杂志, 2017, 38(10): 1410-1414
- Chinese Journal of Epidemiology, 2017, 38(10): 1410-1414
- http://dx.doi.org/10.3760/cma.j.issn.0254-6450.2017.10.023
-
文章历史
收稿日期: 2017-02-15
2. 030001 太原市第三人民医院妇产科
2. Department of Obstetrics and Gynecology, the Third People's Hospital of Taiyuan, Taiyuan 030001, China
HBV母婴传播是导致众多HBV慢性携带者及相关疾病的重要原因,而HBV宫内传播是母婴传播的重要成因。HBeAg阳性母亲的新生儿经乙型肝炎(乙肝)疫苗和乙肝高效价免疫球蛋白(HBIG)免疫后,仍有5%~15%发生HBV宫内传播[1-4],但机制不明。有研究表明,在HBeAg阳性慢性乙肝患者外周血及HBeAg阳性新生儿脐血中[5-6],调节性T淋巴细胞(Treg)含量均高于HBeAg阴性者,但并未发现两者间相关性及其与宫内传播的关系。血清中HBeAg可作为免疫调节蛋白,引起T淋巴细胞耐受,导致病毒持续感染[7],而Treg能抑制HBV特异性免疫应答[5, 8],因此HBeAg阳性母亲新生儿HBV宫内传播风险增加是否与母亲HBeAg通过胎盘进入胎儿体内影响新生儿Treg含量有关[9]。为此本研究通过探讨HBsAg阳性母亲的HBeAg与新生儿相关免疫细胞的表达情况,以进一步探讨HBV宫内传播的机制。
对象与方法1.研究对象:为2011年7月至2013年1月在太原市第三人民医院产科收集的270对HBsAg阳性母亲及其新生儿。纳入标准为孕期未服用替比夫定等抗病毒及皮质激素类药物,且未合并梅毒、丙肝等感染;新生儿足月产(孕周>37周)且体重正常(2 500~4 000 g)。母亲分娩时进行问卷调查,并采集母亲分娩前肘静脉血及新生儿出生24 h内主、被动免疫前股静脉血各3 ml。本研究经山西医科大学伦理委员会批准,所有研究对象均签署知情同意书。
2.研究方法:
(1)血清HBV标志物及HBV DNA载量检测:采用化学发光免疫试验(CLIA)检测母亲及新生儿HBV血清学标志物(HBsAg、HBeAg)(试剂购自德国罗氏诊断有限公司),HBsAg≥1.00 COI,HBeAg≥1.00 COI判定为阳性。采用PE5700基因扩增仪行荧光定量聚合酶链式反应(FQ-PCR),检测母亲及新生儿血清中HBV DNA载量(试剂购自中山大学达安基因股份有限公司)。HBV DNA载量≤103拷贝/ml判定为阴性,HBV DNA载量>103拷贝/ml判定为阳性。
(2)新生儿Treg及树突状细胞(DC)的检测:采用FACS Calibur流式细胞仪(美国BD公司),鼠抗人CD4-FITC、CD25-PE、Foxp3-PE-Cy5、CDllc-PE、CDl23-PE、Human Hematopoietie Lineage-FITC Cocktail、HLA-DR-PerCP-Cy5.5及同型对照(美国eBioscience公司)等试剂,检测新生儿股静脉血中免疫细胞的含量[10-11]。用CELLQUEST软件分析Treg占CD4+T淋巴细胞比例,DC数量以各亚群占外周血单个核细胞(PBMC)的比例表示。
3. HBV宫内传播判定标准:新生儿出生24 h内,主、被动免疫前,股静脉血HBsAg阳性和/或HBV DNA>1×103拷贝/ml者判定为HBV宫内传播[3]。
4.统计学分析:采用SAS 9.4软件进行数据分析。描述服从正态分布的资料采用x±s,偏态分布资料采用M值和四分位数间距(QR);定量资料组间比较采用秩和检验(两两比较采用Nemenyi法);定性资料组间比较采用χ2检验;相关性分析采用Spearman秩相关;多因素分析采用非条件logistic回归,P<0.05表示差异有统计学意义。
结果1.一般情况:共纳入HBsAg阳性母亲及其足月新生儿270对,其中母亲HBeAg阳性112例,阴性158例。母亲年龄及孕周分别为(27.53±4.37)岁和(39.19±0.96)周,新生儿男女性别比例、体重及身长分别为1.14 : 1、(3 296.48±334.64)g、(49.83±1.11)cm。HBsAg阳性母亲HBV宫内传播率为13.33%(36/270),HBsAg和HBeAg同时阳性的母亲导致HBV宫内传播占全部宫内传播的63.89%(23/36),发生HBV宫内传播的新生儿中,13.89%(5/36)为HBsAg和HBV DNA同时阳性。
2. HBeAg与HBV宫内传播的关系:非条件logistic回归模型进行多因素分析(采用逐步回归法,以α=0.05为入选水准,α=0.10为剔除水准)显示,调整混杂因素(母亲HBV DNA、母亲年龄、分娩方式、孕产史、孕期是否注射HBIG)后,母亲HBeAg阳性的新生儿发生HBV宫内传播的风险相比阴性者的新生儿增加了3.08倍[OR=4.08(95%CI:1.89~8.82),P<0.001],是新生儿HBV宫内传播的危险因素。
3.母亲HBeAg血清学状态及滴度与新生儿Treg含量的关系:将母亲HBeAg阳性者按照HBeAg滴度的四分位数P25、P50、P75(833.1 COI、1 054 COI、1 273 COI)分为4组,加之HBeAg阴性组,共5组。比较5组的一般情况(孕周、分娩方式、孕产史、宫内窘迫发生率及新生儿体重)差异均无统计学意义(P>0.05)(表 1)。经分析,母亲HBeAg阳性者新生儿的Treg含量高于阴性者(Z=2.29,P=0.022)。5组新生儿Treg含量的差异有统计学意义(χ2=18.73,P<0.001)(表 2),进一步两两比较结果显示,HBeAg第3组(1 054 COI≤HBeAg<1 273 COI)的Treg含量最高,与其他组比较差异有统计学意义,其余各组间差异无统计学意义(图 1)。
4.母亲HBeAg滴度与新生儿Treg含量的相关性分析:母亲HBeAg与HBV DNA及新生儿HBeAg均有较强的相关性(rs=0.73,P<0.001;rs=0.78,P<0.001),母亲HBeAg不同滴度组间的HBV DNA及新生儿HBeAg的差异有统计学意义(χ2=183.09,P<0.001;χ2=181.60,P<0.001);两两比较,母亲HBeAg阳性各组HBV DNA载量及新生儿HBeAg含量均高于阴性组(图 1),与各组间Treg含量有相似的变化趋势。采用偏相关分析,控制母亲的HBV DNA载量与新生儿HBeAg后,新生儿Treg与母亲HBeAg滴度呈正相关,rs=0.19,P=0.039。说明新生儿Treg含量随母亲HBeAg滴度的升高呈上升趋势。
5.新生儿Treg含量与相关免疫细胞含量的相关性分析:在抗病毒细胞免疫过程中,DC作为抗原提呈细胞与T淋巴细胞具有相辅相成的作用,采用偏相关分析,控制新生儿的mDC与CD4+/CD8+后,Treg含量与浆细胞样树突状细胞(pDC)呈负相关(rs=-0.21,P=0.02);控制CD8+、mDC及pDC后,Treg与CD4+呈负相关(rs=-0.32,P=0.01),说明新生儿Treg的升高可能抑制pDC与CD4+的增殖。但新生儿Treg含量与mDC、CD8+、CD4+/CD8+之间无相关性(表 3)。
讨论目前HBV宫内传播尚不能通过母婴阻断措施预防其引起的慢性感染。大多数研究一致认为,母亲HBeAg阳性是宫内传播的危险因素。
本文结果显示,112例HBeAg阳性母亲的新生儿有101例为HBeAg阳性,158例HBeAg阴性母亲的新生儿仅有1例为HBeAg阳性,HBeAg的胎盘通过率为90.18%(101/112),而且母亲与新生儿HBeAg滴度有较强的相关性(rs=0.78,P<0.001)。而Wang和Zhu[9]的研究认为,HBeAg为可溶性小分子物质,母体的HBeAg可通过胎盘传给胎儿。本文研究结果与其一致。
有研究表明[7],HBeAg作为一种耐受抗原可通过调节Th细胞亚群的分化,降低宿主T淋巴细胞对病毒的反应,使HBV感染趋于慢性化。因此母亲HBeAg阳性可降低新生儿对HBV的免疫应答,导致慢性感染。CD4+CD25+调节性T淋巴细胞是重要的免疫抑制细胞,Foxp3是其发育和功能维持的主要调节基因[12],本文采用CD4+CD25+Foxp3+调节性T淋巴细胞表示Treg。Stoop等[5]研究表明,HBeAg阳性的慢性乙肝患者外周血中Treg含量明显高于HBeAg阴性者;许晓梅等[6]研究显示HBeAg阳性产妇的新生儿脐带血Treg百分比与HBeAg阴性产妇及健康对照组相比明显增加,提示HBeAg可能通过上调新生儿Treg的数量介导免疫耐受,但其并未发现两者之间的相关关系。
本研究中母亲HBeAg阳性的新生儿其Treg含量大于阴性者。按母亲HBeAg滴度分组后,母亲HBeAg滴度水平第3组(1 054 COI≤HBeAg<1 273 COI)新生儿Treg均高于其他组,也高于第4组(HBeAg≥1 273 COI)。进一步分析显示,第3组母亲HBV DNA载量及新生儿HBeAg含量也均高于第4组。高怡等[11]研究显示,随产妇HBV DNA载量增加,新生儿外周血Treg含量增加;Peng等[13]研究也认为,HBV DNA载量与CD4+CD25+调节性T淋巴细胞呈正相关。另外,张永臣等[14]研究表明,HBeAg阳性新生儿股静脉血中Treg含量明显高于HBeAg阴性者。因此第3组新生儿Treg含量高于第4组可能是受其母亲HBV DNA载量及自身HBeAg滴度的影响。为避免母亲HBV DNA及新生儿HBeAg对母亲HBeAg与新生儿Treg含量关系的影响,在控制母亲的HBV DNA与新生儿的HBeAg后,母亲HBeAg滴度与新生儿Treg含量呈正相关。因此,我们初步认为,母亲的HBeAg可能会上调新生儿Treg的含量,且两者具有相关性,但相关强度并不高,还需扩大样本量深入研究。
本文结果还显示,新生儿Treg与pDC、CD4+之间存在负相关。DC是能够激活初始T淋巴细胞并诱导特异性免疫应答的一类抗原提呈细胞,是机体适应性免疫应答的始动者,分为mDC和pDC两个亚群。Treg可能是通过分泌白细胞介素(IL)-10和转化生长因子(TGF)-β等抑制pDC活化[15],而pDC是机体内产生干扰素(IFN)-α的主要细胞[16],且后者对CD4+和CD8+的激活至关重要。因此Treg可能是通过抑制pDC产生IFN-α从而减弱效应T淋巴细胞的作用,抑制机体的免疫反应,最终增加新生儿HBV宫内传播风险。
总之,HBsAg阳性母亲的HBeAg可能通过上调新生儿Treg的含量影响pDC的成熟和效应T淋巴细胞的活化,从而降低新生儿对HBV的免疫应答,因此HBeAg可能导致免疫耐受,使新生儿HBV宫内传播发生率增加。HBeAg高滴度孕妇在孕期应及时检测并服用抗病毒药物抑制病毒复制水平,从而降低宫内传播发生率,提高其新生儿免疫预防效果。
利益冲突: 无
[1] | Guo Z, Shi XH, Feng YL, et al. Risk factors of HBV intrauterine transmission among HBsAg-positive pregnant women[J]. J Viral Hepat, 2013, 20(5): 317–321. DOI:10.1111/jvh.12032 |
[2] |
邵中军, 徐德忠, 徐剑秋, 等.
孕期性行为与乙型肝炎病毒宫内感染关系的病例对照研究[J]. 中华流行病学杂志, 2005, 26(4): 232–235.
Shao ZJ, Xu DZ, Xu JQ, et al. A retrospective study on the association of sexual behavior during pregnancy with intrauterine infection of hepatitis B virus[J]. Chin J Epidemiol, 2005, 26(4): 232–235. DOI:10.3760/j.issn:0254-6450.2005.04.002 |
[3] |
温海秀, 张芳, 王婷, 等.
HBsAg阳性母亲HBeAg状态和分娩方式对HBV宫内传播的影响及交互作用[J]. 中华流行病学杂志, 2016, 37(6): 791–795.
Wen HX, Zhang F, Wang T, et al. Effects related to HBeAg status and mode of delivery as well as the interactions on intrauterine transmission among HBsAg-positive mothers[J]. Chin J Epidemiol, 2016, 37(6): 791–795. DOI:10.3760/cma.j.issn.0254-6450.2016.06.010 |
[4] | Chen HL, Lin LH, Hu FC, et al. Effects of maternal screening and universal immunization to prevent mother-to-infant transmission of HBV[J]. Gastroenterology, 2012, 142(4): 773–781. DOI:10.1053/j.gastro.2011.12.035 |
[5] | Stoop JN, vander Molen RG, Baan CC, et al. Regulatory T cells contribute to the impaired immune response in patients with chronic hepatitis B virus infection[J]. Hepatology, 2005, 41(4): 771–778. DOI:10.1002/hep.20649 |
[6] |
许晓梅, 施可庆, 刘建, 等.
HBeAg能上调新生儿脐带血中调节性T细胞的表达[J]. 重庆医科大学学报, 2011, 36(5): 550–553.
Xu XM, Shi KQ, Liu J, et al. HBeAg can upregulate regulatory T cell in cord blood[J]. J Chongqing Med Univ, 2011, 36(5): 550–553. DOI:10.13406/j.cnki.cyxb.2011.05.012 |
[7] | Han YP, Li J, Jiang LF, et al. Hepatitis B e antigen from chronic hepatitis B patients induces Th1/Th2 cytokine imbalance in vitro[J]. Chin J Hepatol, 2013, 21(8): 584–589. DOI:10.3760/cma.j.issn.1007-3418.2013.08.006 |
[8] | Stoop JN, Woltman AM, Biesta PJ, et al. Tumor necrosis factor alpha inhibits the suppressive effect of regulatory T cells on the hepatitis B virus-specific immune response[J]. Hepatology, 2007, 46(3): 699–705. DOI:10.1002/hep.21761 |
[9] | Wang JS, Zhu QR. Infection of the fetus with hepatitis B e antigen via the placenta[J]. Lancet, 2000, 355(9208): 989. DOI:10.1016/S0140-6736(00)90021-7 |
[10] | Guo J, Gao Y, Guo Z, et al. Frequencies of dendritic cells and Toll-like receptor 3 in neonates born to HBsAg-positive mothers with different HBV serological profiles[J]. Epidemiol Infect, 2015, 143(1): 1–9. DOI:10.1017/S0950268814000624 |
[11] |
高怡, 郭健, 付振东, 等.
HBV宫内感染新生儿外周血调节性T细胞表达[J]. 中国公共卫生, 2013, 29(4): 488–490.
Gao Y, Guo J, Fu ZD, et al. Detection and analysis of CD4+CD25+ regulatory T cell in peripheral blood from new borns with HBV intrauterine infection[J]. Chin J Public Health, 2013, 29(4): 488–490. DOI:10.11847/zgggws2013-29-04-07 |
[12] | Fontenot JD, Rudensky AY. A well adapted regulatory contrivance:regulatory T cell development and the forkhead family transcription factor Foxp3[J]. Nat Immunol, 2005, 6(4): 331–337. DOI:10.1038/ni1179 |
[13] | Peng GP, Li SP, Wu W, et al. Circulating CD4+CD25+ regulatory T cells correlate with chronic hepatitis B infection[J]. Immunology, 2008, 123(1): 57–65. DOI:10.1111/j.1365-2567.2007.02691.x |
[14] |
张永臣, 王念跃, 王佳, 等.
HBsAg和HBeAg阳性孕妇新生儿血清HBeAg与调节性T细胞的关系[J]. 临床检验杂志, 2010, 28(3): 236–237.
Zhang YC, Wang NY, Wang J, et al. The relationship between HBeAg and regulatory T cells in newborns born to HBsAg and HBeAg positive mothers[J]. Chin J Clin Lab Sci, 2010, 28(3): 236–237. DOI:10.13602/j.cnki.jcls.2010.03.031 |
[15] |
余灵祥, 李志伟, 张培瑞, 等.
Treg细胞在慢性乙肝患者外周血中的表达及其对DC细胞的抑制作用[J]. 现代生物医学进展, 2015, 15(11): 2053–2055.
Yu LX, Li ZW, Zhang PR, et al. Immunosuppression of Treg on the regulation of dendritic cells in patients with chronic hepatitis B[J]. Prog Mod Biomed, 2015, 15(11): 2053–2055. DOI:10.13241/j.cnki.pmb.2015.11.014 |
[16] | Duan XZ, Wang M, Li HW, et al. Decreased frequency and function of circulating plasmocytoid dendritic cells (pDC) in hepatitis B virus infected humans[J]. J Clin Immunol, 2004, 24(6): 637–646. DOI:10.1007/s10875-004-6249-y |