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  药物分析杂志   2018, Vol. 38 Issue (7): 1280-1284.  DOI: 10.16155/j.0254-1793.2018.07.27
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质量分析

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陈帅, 袁崇均, 罗森, 王笳. 不同产地川射干中异黄酮成分含量比较研究[J]. 药物分析杂志, 2018, 38(7): 1280-1284. DOI: 10.16155/j.0254-1793.2018.07.27.
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CHEN Shuai, YUAN Chong-jun, LUO Sen, WANG Jia. Comparison of isoflavone components in Iridis Tectori Rhizoma from different habitats[J]. Chinese Journal of Pharmaceutical Analysis, 2018, 38(7): 1280-1284. DOI: 10.16155/j.0254-1793.2018.07.27.
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基金项目

四川省应用基础计划(重点,2016JY0009);四川省公益性科研项目(A-2017N-39)

第一作者

陈帅, Tel:(028)85237395;E-mail:cscdtcm@126.com

文章历史

收稿日期:2017-08-18
不同产地川射干中异黄酮成分含量比较研究
陈帅 , 袁崇均 , 罗森 , 王笳     
四川省中医药科学院, 成都 610041
摘要目的:分析测定和对比不同产地川射干中射干苷、鸢尾甲苷A、鸢尾甲苷B、野鸢尾苷、鸢尾苷元、鸢尾甲黄素A、鸢尾甲黄素B 7个异黄酮成分,建立快速测定其含量的方法。方法:采用HPLC法测定7个异黄酮成分含量,色谱柱为Kromasil C18柱(150 mm×4.6 mm,5 μm),以甲醇-0.5%醋酸水溶液为流动相进行梯度洗脱,流速1 mL·min-1,柱温35℃,检测波长266 nm;并以检测出的含量为指标,使用SPSS 19.0软件对15批样品进行聚类分析。结果:射干苷、鸢尾甲苷A、鸢尾甲苷B、野鸢尾苷、鸢尾苷元、鸢尾甲黄素A、鸢尾甲黄素B色谱峰分离良好;进样量分别在0.024 8~0.992、0.003 6~0.144、0.005 9~0.236、0.004 4~0.176、0.016 2~0.648、0.005 5~0.22、0.005 7~0.228 μg范围内线性关系良好;平均加样回收率(n=6)分别为99.7%、97.7%、98.2%、98.2%、98.8%、103.0%、103.6%,RSD分别为0.57%、2.0%、1.3%、1.1%、0.81%、2.2%、2.3%。15批样品中上述7个成分的含量分别为33.27~58.63、0.62~6.87、1.36~9.95、0.79~7.25、5.42~24.65、0.78~4.56、0.94~8.63 mg·g-1;聚类分析结果显示15批样品可分为三大类,反映不同产地川射干药材成分的区别。结论:所建立的川射干HPLC含量测定方法可用于川射干的质量控制,聚类分析方法也可为川射干种植、栽培和质量评价提供依据。
关键词射干苷    鸢尾甲苷    野鸢尾苷    鸢尾苷元    鸢尾甲黄素    中药质量控制    高效液相色谱法    聚类分析    
Comparison of isoflavone components in Iridis Tectori Rhizoma from different habitats
CHEN Shuai, YUAN Chong-jun, LUO Sen, WANG Jia    
Sichuan Institute of Chinese Materia Medica, Chengdu 610041, China
Abstract: Objective: To establish a method for simultaneous determination and comparison of 7 constituents(tectoridin, iristectorin A, iristectorin B, iridin, tectorigenin, iristectorigenin A and iristectorigenin B)in Iridis Tectori Rhizoma from different habitats.Methods: The HPLC assay was conducted on a Kromasil-C18 column(150 mm×4.6 mm, 5 μm)with methanol-0.5% acetic acid water solution as a mobile phase. The flow rate was 1.0 mL·min-1, the detection wavelength was 266 nm and the column temperature was 35℃. Hierarchical clustering analysis(HCA) was perfromed to evaluate and classify 15 batches of samples based on the contents of the seven isoflavones using SPSS 19.0 software.Results: Tectoridin, iristectorin A, iristectorin B, iridin, tectorigenin, iristectorigenin A and iristectorigenin B were separated well. The correlation coefficients between concentration and chromatographic peak area of the 7 componts were over 0.999 9 in the range of 0.024 8-0.992, 0.003 6-0.144, 0.005 9-0.236, 0.004 4-0.176, 0.016 2-0.648, 0.005 5-0.22 and 0.005 7-0.228 μg, respectively. The average recoveries(n=6)were 99.7%, 97.7%, 98.2%, 98.2%, 98.8%, 103.0% and 103.6%, respectively with RSDs of 0.57%, 2.0%, 1.3%, 1.1%, 0.81%, 2.2% and 2.3%. The contents of 7 components in the 15 batches of samples were 33.27-58.63 mg·g-1 for tectoridin, 0.62-6.87 mg·g-1 for iristectorin A, 1.36-9.95 mg·g-1 for iristectorin B, 0.79-7.25 mg·g-1 for iridin, 5.42-24.65 mg·g-1 for tectorigenin, 0.78-4.56 mg·g-1 for iristectorigenin A and 0.94-8.63 mg·g-1 for iristectorigenin B. 15 batches of samples were divided into three groups by clustering analysis, which reflected their quality characteristics.Conclusion: The established method can be used for the quality control of Iridis Tectori Rhizoma. HCA can provide basis for planting, cultivation and quality evaluation of the herb.
Key words: tectoridin    iristectorin    iridin    tectorigenin    iristectorigenin    quality control of traditional Chinese medicine    HPLC    hierarchical clustering analysis    

川射干为鸢尾科植物鸢尾Iris tectorum Maxim.的干燥根茎,具有清热解毒、祛痰、利咽的功效,用于热毒痰火郁结、咽喉肿痛、痰涎壅盛、咳嗽气喘[1]。其药材长期以来主要依靠采集野生资源,来源广泛,主产于四川、重庆、贵州、云南、广西等省,不同生长环境下的川射干质量参差不齐,市场上饮片更是鱼目混杂,故对川射干进行质量控制尤为重要。川射干的化学成分主要包括黄酮类化合物及其糖苷、异黄酮类化合物及其糖苷、苯醌类化合物、三萜类化合物及其皂苷,其中异黄酮类化合物是鸢尾属植物的特征性化学成分[2-5],具有抗炎、抗氧化、抗肿瘤、抗骨质疏松、神经保护作用等[6-12]。《中华人民共和国药典》对川射干含量规定仅为HPLC法测定射干苷,难以全面反映其真实质量。本文参考文献[13-14],采用HPLC法,在同一条件下同时测定药材中射干苷、鸢尾甲苷A、鸢尾甲苷B、野鸢尾苷、鸢尾苷元、鸢尾甲黄素A、鸢尾甲黄素B的含量,较全面地检测了其异黄酮主要成分,并根据测定所得含量结果,对数据进行聚类分析[15],反映不同产地川射干药材异黄酮类成分的区别。该方法简便可行,为川射干种植、栽培和质量评价及控制提供科学依据。

1 仪器与试药

1100型高效液相色谱仪(安捷伦公司);Sartorius BP 211D型电子天平(十万分之一,赛多利斯公司);KQ-500E型超声波清洗器(昆山市超声波仪器有限公司);Millipore Milli Q Integral 3超纯水机(默克密理博公司)。

对照品:射干苷(中国食品药品检定研究院,批号111632-200501);野鸢尾苷(江苏永健医药科技有限公司,批号151228,纯度大于98.0%);射干苷元(成都曼思特生物制品有限公司,批号MUST-14091601,纯度大于98.0%);鸢尾甲黄素A、鸢尾甲黄素B、鸢尾甲苷A、鸢尾甲苷B(自制,HPLC峰面积归一化法测定纯度均大于98.0%)。

甲醇为色谱纯(用于配制流动相,Fisher公司)和分析纯(用于制备对照品溶液,成都市科龙化工试剂厂),乙醇及冰醋酸为分析纯(成都市科龙化工试剂厂),水为超纯水。

川射干购于四川、重庆、贵州、云南、广西等地,由四川省中医药科学院舒光明研究员鉴定为鸢尾科植物鸢尾Iris tectorum Maxim.的干燥根茎。

2 方法与结果 2.1 混合对照品溶液的制备

精密称取射干苷、鸢尾甲苷A、鸢尾甲苷B、野鸢尾苷、鸢尾苷元、鸢尾甲黄素A、鸢尾甲黄素B的对照品适量,加70%甲醇水配制成每1 mL含射干苷0.049 6 mg,鸢尾甲苷A 0.007 2 mg,鸢尾甲苷B 0.011 8 mg,野鸢尾苷0.008 8 mg,鸢尾苷元0.032 4 mg,鸢尾甲黄素A 0.011 0 mg,鸢尾甲黄素B 0.011 4 mg的混合溶液,即得。

2.2 供试品溶液的制备

取川射干粉末(过3号筛)约0.25 g,精密称定,置具塞锥形瓶中,精密加入70%乙醇水25 mL,密塞,称量,超声处理(功率250 W,频率50 kHz)1 h,放冷,再称量,用70%乙醇水补足减失的量,摇匀,滤过,精密量取续滤液1 mL,置10 mL量瓶中,加70%乙醇水稀释至刻度,摇匀,即得。

2.3 色谱条件和系统适用性试验

色谱柱:Kromasil C18(4.6 mm×150 mm,5 μm);柱温:35 ℃;流动相:甲醇-0.5%醋酸水,梯度洗脱(0 min,30%甲醇;20 min,30%甲醇;27 min,38%甲醇;65 min,38%甲醇);流速:1 mL·min-1;检测波长:266 nm。按照上述色谱条件,取混合对照品溶液和5号样品(四川青神)的供试品溶液分别进样10 μL进行分析,色谱图见图 1

1.射干苷(tectoridin)2.鸢尾甲苷A(iristectorin A)3.鸢尾甲苷B(iristectorin B)4.野鸢尾苷(iridin)5.鸢尾苷元(tectorigenin)6.鸢尾甲黄素A(iristectorigenin A)7.鸢尾甲黄素B(iristectorigenin B) 图 1 对照品(A)及5号样品(B)色谱图 Figure 1 HPLC chromatograms of reference substances(A)and sample No. 5(B)
2.4 线性关系考察

精密吸取“2.1”项下混合对照品溶液0.5、1、2、5、10、15、20 μL,按照上述色谱条件进样测定;以进样量X(μg)为横坐标,峰面积Y为纵坐标,计算回归方程,结果见表 1

表 1 线性关系试验结果 Table 1 Results of linear relation test
2.5 精密度试验

精密吸取5号样品的供试品溶液10 μL,按上述色谱条件连续进样6次,记录峰面积;结果射干苷、鸢尾甲苷A、鸢尾甲苷B、野鸢尾苷、鸢尾苷元、鸢尾甲黄素A、鸢尾甲黄素B峰面积的RSD(n=6)分别为0.62%、0.82%、0.89%、0.77%、0.76%、0.94%、1.0%,表明仪器精密度良好。

2.6 稳定性试验

精密吸取5号样品的供试品溶液10 μL,室温下分别于0、2、4、6、12、24 h进样测定,记录峰面积;结果射干苷、鸢尾甲苷A、鸢尾甲苷B、野鸢尾苷、鸢尾苷元、鸢尾甲黄素A、鸢尾甲黄素B峰面积的RSD(n=6)分别为0.72%、0.91%、0.84%、0.92%、0.85%、1.0%、1.3%,表明供试品溶液在24 h内稳定性良好。

2.7 重复性试验

取同一批川射干(5号样品)粉末6份,每份0.25 g,按照“2.2”项下方法制备供试品溶液,进样10 μL,记录峰面积,计算含量及其RSD;射干苷、鸢尾甲苷A、鸢尾甲苷B、野鸢尾苷、鸢尾苷元、鸢尾甲黄素A、鸢尾甲黄素B平均含量(n=6)分别为46.45、6.02、9.24、6.41、12.56、3.24、7.13 mg·g-1,RSD分别为0.75%、1.8%、1.4%、1.3%、0.98%、1.4%、1.6%。

2.8 加样回收率试验

取已知含量的川射干(5号样品)约0.125 g,共6份,精密称定,分别精密加入含射干苷0.232 1 mg·mL-1,鸢尾甲苷A 0. 031 9 mg·mL-1,鸢尾甲B 0.046 2 mg·mL-1,野鸢尾苷0.032 1mg·mL-1,鸢尾苷元0.062 5 mg·mL-1,鸢尾甲黄素A 0.016 7 mg·mL-1,鸢尾甲黄素B 0.035 7 mg·mL-1的混合对照品的70%乙醇溶液25 mL,按照“2.2”项下方法制备供试溶液,进样10 μL,计算回收率;结果射干苷、鸢尾甲苷A、鸢尾甲苷B、野鸢尾苷、鸢尾苷元、鸢尾甲黄素A、鸢尾甲黄素B平均回收率(n=6)分别为99.7%(RSD=0.57%)、97.7%(RSD =2.0%)、98.2%(RSD=1.3%)、98.2%(RSD=1.1%)、98.8%(RSD=0.81%)、103.0%(RSD=2.2%),103.6%(RSD =2.3%)。

2.9 检测下限与定量下限

按“2.3”项色谱条件进样10 μL,取基线噪声的3倍值时测得的量作为检测下限,基线噪声的10倍值时测得的量作为定量下限;结果射干苷、鸢尾甲苷A、鸢尾甲苷B、野鸢尾苷检测下限约为0.23 ng,定量下限约为0.77 ng;鸢尾苷元、鸢尾甲黄素A、鸢尾甲黄素检测下限测约为0.19 ng,定量下限约为0.63 ng。

2.10 样品测定结果

取川射干粉末约0.25 g,按照“2.2”项下方法制备供试品溶液,按“2.3”项色谱条件进样10 μL,测定15批不同产地川射干中射干苷、鸢尾甲苷A、鸢尾甲苷B、野鸢尾苷、鸢尾苷元、鸢尾甲黄素A、鸢尾甲黄素B的含量,记录峰面积,采用外标法计算各样品中各成分的含量平均值,结果见表 2

表 2 样品含量测定结果(n=2) Table 2 Results of content determination of samples
2.11 聚类分析

使用SPSS 19.0软件对15批不同产地川射干样品的7个指标性异黄酮成分的含量进了系统聚类分析,结果见图 2。15批样品一共分为两大类,其中样品1~5为第2大类,其余10个样品为第1大类。随着阈值的减少,15批样品又可分为A、B、C三大类,三部分能够明显区分开。第1大类随着阈值的减小继续分为A、B两大类,其中样品7~8号属于B大类,其余样品属于A大类;第2大类分为两类,其中2号及4号样品属于一类,其余属于一类。结果显示样品中7份指标成分含量相近的样品被聚在一起。也有部分产地相近的样品被聚在一类,如A大类中12号及13号样品被分在一组,这2批样品均来之贵州产地;B大类中7号及8号样品被分在一组,这2批样品均来自重庆产地。

图 2 15批不同产地川射干样品聚类分析图 Figure 2 The dendrogram of 15 samples from different habitats
3 讨论 3.1 色谱条件的优化

流动相系统考察了甲醇-水、乙腈-水、甲醇-水(含冰醋酸)、乙腈-水(含冰醋酸),结果不加冰醋酸的系统,苷元部分拖尾严重,影响分离效果,加冰醋酸的系统分离效果良好,考虑成本,选择甲醇-水(含冰醋酸)为流动相溶剂。由于所有成分均为异黄酮化合物,紫外吸收基本一致,最大吸收均为266 nm,所以采用266 nm作为检测波长。

3.2 提取方法考察

药材提取考察了不同提取溶剂如甲醇、乙醇、50%乙醇水、70%乙醇水,考察了不同的提取方法如水浴回流、渗滤、超声,同时还考察了不同提取时间如30、45、60、90 min。结果表明,采用《中华人民共和国药典》方法[1]为佳,即采用70%乙醇水为提取溶剂,超声提取1 h,异黄酮成分基本提取完全,色谱峰数量及响应值均不再增加,工艺简单易操作。

3.3 结论

通过含量测定及聚类分析结果可以看出,不同产地川射干之间异黄酮成分存在不同差异,四川地区的样品黄酮苷元部分含量较高,云南、贵州地区的样品黄酮苷部分含量较高,这可能与产地气候、土壤、海拔等有一定关系,都可能在一定程度上反映川射干内在质量,更加接近川射干异黄酮成分真实情况,为川射干的种植、栽培提供了理论依据。

参考文献
[1]
中华人民共和国药典2015年版. 一部[S]. 2015: 38
ChP 2015. Vol Ⅰ[S]. 2015: 38
[2]
杨勇勋, 董小萍. 川射干的化学成分研究[J]. 中药与临床, 2010, 1(1): 20.
YANG YX, DONG XP. Studies on chemical constituents of Rhizoma Iridis Tectori[J]. Pharm Clin, 2010, 1(1): 20.
[3]
邱庆浩, 张志国, 王建华, 等. 川射干中异黄酮类化学成分研究[J]. 中药材, 2009, 32(9): 1392.
QIU QH, ZHANG ZG, WANG JH, et al. Stuies on the isoflavonoids of Iris tectorum[J]. J Chin Med Mater, 2009, 32(9): 1392.
[4]
袁崇均, 王笳, 陈帅, 等. 川射干化学成分研究[J]. 天然产物研究与开发, 2008, 20(3): 444.
YUAN CJ, WANG J, CHEN S, et al. Study on the chemical constituents of Iris tectorum Maxim.[J]. Nat Prod Res Dev, 2008, 20(3): 444.
[5]
谢国勇, 陈雨洁, 温锐, 等. 德国鸢尾化学成分研究[J]. 中国中药杂志, 2014, 39(5): 846.
XIE GY, CHEN YJ, WEN R, et al. Chemical constituents from rhizomes of Iris germanica[J]. China J Chin Mater Med, 2014, 39(5): 846.
[6]
张琳, 张妮. 川射干的化学及药理研究进展[J]. 陕西中医学院学报, 2014, 37(5): 91.
ZHANG L, ZHANG L. Progress in chemical and pharmacological studies on Iris tectorum Maxim.[J]. J Shaanxi Coll Tradit Chin Med, 2014, 37(5): 91.
[7]
潘静. 川射干化学成分及体外抗肿瘤活性的研究[D]. 武汉: 湖北中医学院, 2009
PAN J. Studies on the Chemical Constituents and Antitumor Activities of Iris tectorum Maxim. [D]. Wuhan: Hubei College of Traditional Chinese Medicine, 2009 http://cdmd.cnki.com.cn/Article/CDMD-10507-2009157994.htm
[8]
刘建英, 金丽. 射干化学成分及药理活性研究进展[J]. 药学服务与研究, 2008, 8(1): 358.
LIU JY, JIN L. Advances in research on phytochemical constituents and pharmacology of Belamcanda chinensis[J]. Pharm Care Res, 2008, 8(5): 358.
[9]
韩晓静. 川射干异黄酮的相关药效学研究[D]. 武汉: 湖北大学, 2006
HAN XJ. The Research of Pharmacodynamics on the Isoflavone Components in Iris tectorum Maxim. [D]. Wuhan: Hubei University, 2006 http://www.wanfangdata.com.cn/details/detail.do?_type=degree&id=Y935051
[10]
冯汉林, 严启新. 射干提取物抗雌激素缺乏大鼠骨质疏松的研究[J]. 现代药物与临床, 2012, 27(3): 209.
FENG HL, YANG QX. Anti-osteoporosis of different extracts from Belamcandae Rhizoma in estrogen deficiency rats[J]. Drugs Clin, 2012, 27(3): 209.
[11]
严启新. 射干总黄酮抗骨质疏松的研究[D]. 广州: 中山大学, 2004
YAN QX. Study on Anti-osteoporosis of the Total Flavonoids from Belamcanda chinensis[D], Guzhou: Zhongshan University, 2004 http://www.wanfangdata.com.cn/details/detail.do?_type=degree&id=Y680024
[12]
于颖. 川射干异黄酮类化学成分的神经保护作用[D]. 泰安: 泰山医学院, 2013
YU Y. Protective Effect of Isoflavones from Rhizomes of Iris tectorum on Nerve Cells[D]. Tai'an: Taishan Medical University, 2013 http://www.wanfangdata.com.cn/details/detail.do?_type=degree&id=Y2441048
[13]
张媛媛, 秦民坚, 束盼, 等. 射干药材的指纹图谱研究[J]. 药学与临床研究, 2009, 17(1): 18.
ZHANG YY, QING MJ, SHU P, et al. Study on HPLC fingerprint of Rhizoma Belamcandae[J]. Pharm Clin Res, 2009, 17(1): 18.
[14]
秦民坚, 吉文亮, 王峥涛, 等. 不同采收期鸢尾中4种异黄酮含量的动态变化[J]. 中国天然药物, 2005, 3(4): 245.
QIN MJ, JI WL, WANG ZT, et al. The content change of 4 isoflavones in different harvesting stages of Iris tectorum[J]. Chin J Nat Med, 2005, 3(4): 245.
[15]
张晓瑞, 邹桂欣, 李国信, 等. 基于射干药效物质基础的聚类分析[J]. 海峡药学, 2014, 26(10): 64.
ZHANG XR, ZOU GX, LI GX, et al. Cluster analysis based on efficacy material basis of Belamcanda[J]. Strait Pharm J, 2014, 26(10): 64. DOI:10.3969/j.issn.1006-3765.2014.10.028