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  药物分析杂志   2017, Vol. 37 Issue (7): 1314-1319.  DOI: 10.16155/j.0254-1793.2017.07.24
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孔蓉, 毛柯, 袁艳娟, 乔红群, 丁逸梅. LC-MS/MS法测定QT脂质体注射液用镀膜胶塞中PFOS和PFOA的迁移[J]. 药物分析杂志, 2017, 37(7): 1314-1319. DOI: 10.16155/j.0254-1793.2017.07.24.
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KONG Rong, MAO Ke, YUAN Yan-juan, QIAO Hong-qun, DING Yi-mei. Determination of migration of PFOS and PFOA in the coated stopper of QT liposome injection by LC-MS/MS[J]. Chinese Journal of Pharmaceutical Analysis, 2017, 37(7): 1314-1319. DOI: 10.16155/j.0254-1793.2017.07.24.
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第一作者

孔蓉, Tel:18751973465;E-mail:18751973465@163.com

通信作者

丁逸梅, Tel:13851670425;E-mail:jsyws@njtech.edu.cn

文章历史

收稿日期:2016-07-15
LC-MS/MS法测定QT脂质体注射液用镀膜胶塞中PFOS和PFOA的迁移
孔蓉 1, 毛柯 2, 袁艳娟 2, 乔红群 1,2, 丁逸梅 1,2    
1. 南京工业大学药学院, 南京 211816;
2. 南京工业大学江苏省药物研究所, 南京 210009
摘要目的:建立LC-MS/MS法测定QT脂质体注射液用镀膜胶塞中全氟辛基磺酸(PFOS)和全氟辛酸(PFOA)的迁移。方法:采用Symmetry C18(150 mm×3.0 mm,5μm),以0.01 mol·mL-1乙酸铵-乙腈(55:45)为流动相。采用电喷雾离子源(ESI)、负离子模式检测方式进行定量分析。结果:QT脂质体注射液用镀膜胶塞中PFOS和PFOA在8~200 ng·mL-1范围内线性良好(r分别为0.999 8、0.999 9);最低检测限分别为2.000、2.074 ng·mL-1;平均回收率(n=9)分别为103.7%、105.9%,RSD分别为7.2%、7.5%;日内精密度RSD分别为2.5%、3.0%,日间精密度RSD分别为2.4%、3.1%;QT脂质体注射液用镀膜胶塞中PFOS和PFOA均未检出。结论:QT脂质体注射液样品中均未有PFOS和PFOA迁移。本方法准确、灵敏,经方法学验证,可用于测定QT脂质体注射液用镀膜胶塞中PFOS和PFOA的迁移。
关键词全氟辛酸    全氟辛基磺酸    液相色谱-质谱联用技术    聚四氟乙烯    镀膜胶塞    药包材迁移    
Determination of migration of PFOS and PFOA in the coated stopper of QT liposome injection by LC-MS/MS
KONG Rong1, MAO Ke2, YUAN Yan-juan2, QIAO Hong-qun1,2, DING Yi-mei1,2    
1. School of Pharmaceutical Sciences, Nanjing Tech University, Nanjing 211816, China;
2. Jiangsu Provincial Institute of Material Medica, Nanjing Tech University, Nanjing 210009, China
Abstract: Objective: To establish a LC-MS/MS method for the determination the migration of PFOS and PFOA in the coated stopper of QT liposome injection.Methods: A Waters symmetry C18 (150 mm×3. 0 mm, 5μm) was applied with the mobile phase of 0. 01 mol·mL-1 ammonium acetate-acetonitrile (55:45). Electrospray ionization(ESI) Source was employed and the analytes were detected under the negative ionization method.Results: The calibration curves of PFOS and PFOA were linear in the range of 8-200 ng·mL-1 (r=0. 999 8, 0. 999 9, respectively); the lowest detection limits were 2. 000, 2. 074 ng·mL-1, respectively; the average recoveries (n=9) were 105. 9% and 103. 7% with RSD of 7. 2% and 7. 5% respectively; RSDs of intra-day were 2. 5%, 3. 0% and inter-day were 2. 4%, 3. 1%, respectively; PFOS and PFOA were not detected in QT liposomes.Conclusion: There were no PFOS and PFOA migration in the QT liposome injection. This method is accurate, sensitive and reproducible, which can be applied to the determination of PFOS and PFOA in the coated stopper of QT liposome injection.
Key words: PFOA    PFOS    LC-MS/MS    polytetrafluoroethylene    coated rubber plug    migration of pharmaceutical packaging materials    

聚四氟乙烯(polytetrafluoroethene,PTFE),俗称”塑料王”,商标名Teflon。作为一种特种工程塑料,近年来聚四氟乙烯一直是用量最大的氟塑料,由于其抗酸抗碱、高度的化学稳定性、极强的耐高低温性能[1]等具有广泛的应用。

药品与药品包装材料之间可能会发生渗透、溶出、吸附等问题,所以包装材料尽量采用化学惰性的材料,聚四氟乙烯包装材料因其耐酸碱、不易与药品发生反应,同时具有良好的阻隔性而广泛的用于药品包装领域。在聚四氟乙烯聚合过程中加入全氟辛酸(pentadecafluorooctanoic acid,PFOA)和全氟辛基磺酸类物质,可以起到均分散的作用[2]。然而随着人们对全氟辛酸和全氟辛基磺酸类物质的毒理学[3]、环境行为[4]和迁移检验[5]的研究的不断深入,全氟类化合物已造成严重的环境累积和污染,成为继有机氯农药、二英之后日益引起重视的新型持久性有机污染物[6-7]。研究表明,全氟辛基磺酸具有肝脏毒性,影响脂肪代谢;生物学和医学研究表明,全氟辛酸是一类生物积累的非降解物质,它对动物的生长发育、神经系统、免疫系统和生殖系统等会造成不同程度的损害[8]。因此,全氟化合物环境污染问题在世界范围内引起高度的重视[9]。2006年12月27日,欧洲议会和部长理事会联合发布《关于限制全氟辛基磺酸销售及使用的指令》[10](2006 /122/EC指令)规定全氟辛基磺酸(ammonium perfluorooctanesulfonate,PFOS)作为配制品成分的,其浓度或质量等于或超过0.005%的不得销售,纺织品及其他涂层材料限量为1 μg·m-2;挪威要求PFOA限量为0.005%,纺织品及其他涂层材料限量为1 μg·m-2[11-12]。2016年1月4日,美国FDA在联邦公报上发布对《联邦食品、药品和化妆品法案》21 CFR part 176进行了修订的规则,删除§176.170第(a)(5)表中3项全氟化合物,意即禁止在食品接触材料中使用这3类长链全氟化合物[13]。全氟化合物对环境污染的程度超出人们的预想,对于全氟化合物问题的研究已经成为分析科学等领域所关注的研究热点之一。我国的科技工作者对该类物质也进行了初步研究,但是与国际发展动态相比仍较落后,特别是检测技术力量比较薄弱[14],因此加强PFOA和PFOS的分析、测定、监督和控制是一项十分紧迫的任务。

PFOA的结构式见图 1,十五氟辛酸,化学式为C8HF15O2,相对分子质量为414.07,呈强酸性,在水中能完全解离与强氧化剂及还原剂不起反应。有较高界面活性,与纯碱反应生成盐;与伯醇、仲醇反应生成酯。

图 1 全氟辛酸结构式 Figure 1 Structure of PFOA

PFOS的结构式见图 2,十七氟辛烷磺酸,分子式为C8H4F17NO3S,分子量为500.13,它是完全氟化的阴离子,以盐的形式广泛使用或渗入较大的聚合物。

图 2 全氟辛基磺酸结构式 Figure 2 Structure of PFOS

本文所研究的是QT脂质体注射液用镀膜胶塞中的PFOA及PFOS的迁移,其胶塞是镀聚四氟乙烯膜(Polytetrafluoroethene,Teflon)胶塞,目前国内的研究多集中于PFOA和PFOS在生物体内含量的检测[15-16],而鲜有对药用镀聚四氟乙烯膜中的全氟辛酸及全氟辛基磺酸的迁移同时检测的报道。由于本实验中的检测灵敏度较高,全氟辛酸及全氟辛基磺酸的灵敏度均为10 ng·mL-1,故采用高灵敏度、高选择性的高效液相色谱-质谱/质谱(LC-MS/MS)的方法同时检测QT脂质体注射液用镀膜胶塞中的PFOA及PFOS,对建立药品包装材料中PFOA和PFOS的迁移研究具有一定的参考借鉴意义。

1 仪器与试药

Waters Quattro Micro三重四极杆质谱仪,Waters 2695液相色谱仪(沃特斯中国有限公司),含在线真空脱气机、四元梯度泵、恒温自动进样器、柱温箱、电喷雾离子源(ESI);Masslynx4.0数据分析系统。Waters Symmetry C18色谱柱(填料:十八烷基硅烷键合硅胶;150 mm×3.0 mm,5 μm;沃特斯中国有限公司)。

QT脂质体注射液(规格20 mL:40 mg,批号:20160225);药用镀聚四氟乙烯膜氯化丁基橡胶/聚异戊二烯橡胶塞(规格:抗生素瓶塞;批号:3128010603,新加坡西氏医药服务公司);PFOS对照品(100 μg·mL-1甲醇溶液,SIGMA-ALDRICH公司,批号SZBE008XV);PFOA对照品(SIGMA-ALDRICH公司,纯度96%,批号MKBT7500V);甲醇溶液(Honeywell公司,HPLC Grade,AH230-4HC);乙腈溶液(Honeywell公司,HPLC Grade,AH015-4HC);乙酸铵(Aladdin公司,纯度99.99%,Lot#k1516011)。

2 方法与结果 2.1 LC-MS条件 2.1.1 色谱条件

色谱柱:Waters Symmetry C18柱(150 mm×3.0 mm,5μm);流动相:0.01 mol·mL-1乙酸铵-乙腈(55:45);流速:0.4 mL·min-1,分流进样;进样量:20μL;柱温:40 ℃。

2.1.2 质谱条件

电喷雾离子(ESI)源,负离子模式检测;毛细管电压:3.0 kV;锥孔电压:30 V;源温:120 ℃;脱溶剂区温度:350 ℃碰撞气(氩气);压力:1.0×10-4 mbar;脱溶剂气流速:400 L·h-1;气帘气流速:50 L·h-1

2.2 溶液配制

PFOA储备液:取PFOA对照品10 mg至100 mL量瓶中,用甲醇溶解、稀释、定容,制成100 μg·mL-1的储备液;

PFOA与PFOS混合对照品溶液:精密量取PFOA100 μg·mL-1的储备液、PFOS100 μg·mL-1的储备液各1 mL至100 mL量瓶中,加甲醇溶解定容,制成1 μg·mL-1的PFOA与PFOS的混合溶液;再精密量取1 μg·mL-1的PFOA与PFOS的混合溶液1 mL至100 mL量瓶中,制成10 ng·mL-1PFOA与PFOS的混合溶液,摇匀,作为混合对照品溶液;

空白溶液:精密量取QT脂质体注射液1 mL,置10 mL量瓶中,加甲醇稀释、定容,摇匀,作为空白溶液。

2.3 专属性试验

精密量取“2.2”中PFOA与PFOS混合对照品溶液、空白溶液各20μL,注入液相色谱仪,进样测定,结果无干扰,见图 3~4

a.PFOA碎片离子峰(fragment ion peak of PFOA)b.PFOA碎片离子峰(fragment ion peak of PFOS); 图 3 PFOA与PFOS混合对照品溶液二级质谱图 Figure 3 The MS/MS spectra of PFOS、PFOA mixed reference solution

图 4 空白溶液二级质谱图 Figure 4 The MS/MS spectra of blank solution
2.4 线性试验及灵敏度试验

精密量取“2.2”中PFOA储备液,加甲醇稀释、定容制成2 μg·mL-1的PFOA储备液,再分别移取不同体积的上述储备液加甲醇稀释、定容制成浓度约为8.0、10.0、25.0、50.0、100.0、200.0 ng·mL-1的标准曲线溶液,分别进样,记录离子流图。以浓度C(ng·mL-1)为横坐标,母离子峰面积A为纵坐标,进行线性回归,得回归方程为:

A=42.52C-19.25 r=0.999 9

结果表明PFOA在8.296~207.4 ng·mL-1范围内线性良好。

精密量取PFOS储备溶液,加甲醇稀释、定容制成2 μg·mL-1的PFOS储备液,再分别移取不同体积的上述储备液加甲醇稀释、定容制成浓度约为8.0、10.0、25.0、50.0、100.0、200.0 ng·mL-1的标准曲线溶液,分别进样,记录离子流图。以浓度C(ng·mL-1)为横坐标,母离子峰面积A为纵坐标,进行线性回归,得回归方程为:

A=44.10C-2.872 r=0.999 8

结果表明PFOA在8.000~200.0 ng·mL-1范围内线性良好。

以信噪比S/N=3为最低检出限,信噪比为S/N=10为定量限。结果表明PFOA、PFOS在本色谱条件下检出限分别为2.074 ng·mL-1、2.000 ng·mL-1,定量限分别为8.296 ng·mL-1、8.000 ng·mL-1

2.5 回收率试验及进样精密度试验

分别精密量取QT脂质体注射液1.0 mL,置10 mL量瓶中,再分别精密加入不同浓度的PFOA对照品储备液0.05 mL,加入甲醇稀释、定容,摇匀,制成浓度分别约含PFOA为10.0、50.0、200.0 ng·mL-1的溶液。进样测定,结果平均回收率为105.9%,RSD为7.5%。

分别精密量取QT脂质体注射液1.0 mL,置10 mL量瓶中,再分别精密加入不同浓度的PFOS对照品储备液0.05 mL,加入甲醇稀释、定容,摇匀,使制成浓度分别约含PFOS为10.0、50.0、200.0 ng·mL-1的溶液。进样测定,结果平均回收率为103.7%,RSD为7.2%。

取工作曲线中间浓度的混合对照品溶液,连续进样5针,结果表明,该液质条件下PFOA与PFOS的日内进样精密度良好,RSD分别为2.5%、3.0%。

取工作曲线中间浓度的混合对照品溶液,于不同天重复进样,结果表明,该液质条件下PFOA与PFOS的日间进样精密度良好,RSD分别为2.4%、3.1%。

2.6 重复性试验与中间精密度试验

取QT脂质体注射液,按回收率试验方法,精密量取PFOA对照品储备液适量,加入甲醇稀释定容,制成浓度含PFOA 51.85 ng·mL-1的供试品溶液(n=6);再精密量取PFOS对照品储备液适量,加入甲醇稀释定容,制成浓度含PFOS 50 ng·mL-1的供试品溶液(n=6)进样测定,结果供试品溶液中检测出的PFOA与PFOS平均含量分别为51.19、49.25 ng.mL-1

于不同天不同操作人员,按上述方法制成供试品溶液(n=3),进样测定,结果供试品溶液中检出的PFOA与PFOS的RSD分别为1.5%、1.1%。

2.7 样品测定及结果

分别按“2.2”中PFOA与PFOS混合对照溶液的方法,制得对照品溶液;精密量取QT脂质体注射液1 mL,置10 mL量瓶中,加甲醇稀释、定容,摇匀,作为供试品溶液;分别精密量取混合对照品溶液和供试品溶液各20μL,分别注入LC-MS/MS,记录离子流图,按外标法以母离子峰面积计算。结果见表 1

表 1 PFOA与PFOS迁移测定结果 Table 1 Migration assay results of PFOA and PFOS
3 讨论 3.1 定量离子的选择

PFOA(A)和PFOS(B)的二级质谱图见图 5,从图中可以看出PFOA母离子[M-H]- m/z 412.968 1的主要碎片峰有m/z368.978 3、339.201 6、293.181 9、265.148 7、253.218 1,由于m/z368.978 3的灵敏度最高,故选用m/z 368.978 3作为PFOA的检测离子;同理PFOS母离子[M-H]- m/z 498.929 8的主要碎片峰有m/z 169.988 7、103.973 1、61.988 4,故选用m/z 498.929 8作为PFOS的检测离子。

图 5 PFOA(A)和PFOS(B)的二级质谱图 Figure 5 The MS/MS spectra of PFOA(A)and PFOS(B)
3.2 检测方法的建立

本实验中PFOA与PFOS限度为10 ng·mL-1,检测浓度极低,且二者结构中均无共轭双键,无紫外吸收,因此采用LC-MS/MS方法测定QT脂质体注射液胶塞中PFOA、PFOS的迁移。另本实验所用样品为脂质体注射液,其中含有氢化卵磷脂、双硬脂酰磷脂酰胆碱、胆固醇等强脂溶性辅料,这些辅料很难从色谱柱上洗脱下来,基线持续上扬,使得PFOA及PFOS响应降低,故本实验采用三通阀切换将油性基质分流,不进质谱仪。

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