抗骨增生丸为国家基本医疗保险药品目录收载品种,是由熟地黄、淫羊藿、骨碎补等9味中药制成的蜜丸,临床广泛用于增生性脊椎炎、颈椎综合症、骨刺等骨质增生症[1]。熟地黄、淫羊藿、骨碎补均为该复方制剂的主要药味,其主要活性成分毛蕊花糖苷为苯乙醇苷类化合物,淫羊藿苷和柚皮苷为黄酮类,功能主治与该制剂功能主治相一致。该制剂现行标准[2]仅对淫羊藿苷进行含量测定,未能全面控制其质量,且国内尚未见对抗骨增生丸中毛蕊花糖苷、柚皮苷和淫羊藿苷3种有效成分含量同时进行质量控制的报道及文献。笔者参考相关文献[2-7],采用HPLC法同时测定抗骨增生丸中3种成分,有利于产品质量控制和临床用药的安全有效。
1 仪器与试药安捷伦公司Agilent 1260高效液相色谱仪(VWD检测器),安捷伦公司LC solution工作站,安捷伦公司Agilent ZORBAX SB-C18(250 mm×4.6 mm,5 μm;填料:十八烷基硅烷键合硅胶)色谱柱,梅特勒-托利多仪器有限公司AG-135电子分析天平,山东济宁恒通超声电子设备有限公司HT-300BQ超声仪,岛津公司Shimadzu UV-2450紫外分光光度计。
对照品毛蕊花糖苷(批号111530-201512,含量96.7%)、柚皮苷(批号110722-201312,含量94.7%)、淫羊藿苷(批号110737-201516,含量94.2%)均购自中国食品药品检定研究院。
抗骨增生丸(大蜜丸,每丸重3 g)为吉林龙泰制药股份有限公司产品,批号150804、151102、151104。
甲醇、乙腈为色谱纯,水为超纯水,其他试剂为分析纯。
2 方法与结果 2.1 色谱条件采用Agilent C18(250 mm×4.6 mm,5 μm)色谱柱,流动相A为水,流动相B为甲醇,流动相C为乙腈,按表 1程序进行线性梯度洗脱,流速1.0 mL·min-1,检测波长270 nm,柱温30 ℃,进样量10 μL。
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表 1 梯度洗脱程序 Table 1 Gradient elution program |
分别取毛蕊花糖苷、柚皮苷、淫羊藿苷的对照品适量,精密称定,用50%甲醇水溶液溶解并定量稀释制成质量浓度分别为0.508、0.756、0.513 mg·mL-1的混合溶液,作为混合对照品储备溶液;精密量取混合对照品储备溶液2 mL置20 mL量瓶中,加50%甲醇水溶液稀释至刻度,即得混合对照品溶液。
2.2.2 供试品溶液样品剪碎,取约2 g,精密称定,置具塞锥形瓶中,精密加入50%乙醇水溶液50 mL,称量,超声处理(功率300 W,频率40 kHz)45 min,放冷,用50%乙醇水溶液补足减失的量,摇匀,滤过,续滤液作为供试品溶液。
2.2.3 阴性样品溶液按处方量制备缺熟地黄、淫羊藿和骨碎补的样品,同供试品溶液制备方法制备阴性样品溶液。
2.3 系统适用性试验精密量取混合对照品溶液、供试品溶液和阴性样品溶液各10 μL,分别注入色谱仪,记录色谱图,见图 1。结果理论塔板数按毛蕊花糖苷、柚皮苷和淫羊藿苷计算均不低于3 000,3种成分色谱峰与相邻峰之间分离度均大于1.5,对称因子在0.95~1.05内,样品中其他成分不干扰待测成分的测定。
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1.毛蕊花糖苷(verbascoside)2.柚皮苷(naringin)3.淫羊藿苷(icariin) 图 1 混合对照品(A)、样品(B)和阴性样品(C)的HPLC图谱 Figure 1 HPLC Chromatograms of mixed reference substances(A), sample(B), and negative sample without Rehmanniae Radix Praeparata, Epimedii Folium and Drynariae Rhizoma(C) |
精密量取“2.2.1”项下混合对照品储备溶液0.25、0.50、1.00、2.00、3.00、5.00 mL,分别置25 mL量瓶中,加50%甲醇稀释至刻度,即得系列混合对照品溶液;照上述色谱条件进样测定,记录色谱图;以峰面积Y对质量浓度X(μg·mL-1)进行线性回归,得到3种待测物的回归方程、相关系数,结果见表 2。
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表 2 3种成分的回归方程及线性范围 Table 2 Regression equations and linear ranges of three constituents |
以“2.4.1”项下浓度最低的混合对照品溶液逐级稀释,依法进行测定,当信噪比为3:1时,计算毛蕊花糖苷、柚皮苷和淫羊藿苷检测限分别为0.21、0.31和0.14 ng。
2.5 精密度试验和重复性试验取样品批号为150804的供试品溶液连续进样6次,记录色谱图,毛蕊花糖苷、柚皮苷和淫羊藿苷峰面积的RSD(n=6)分别为0.54%、0.69%和0.96%,表明本法精密度良好。取样品(批号150804),制备供试品溶液6份,进样分析,以外标法计算含量,毛蕊花糖苷、柚皮苷和淫羊藿苷平均含量分别为1.18、1.82和1.41 mg·丸-1,RSD分别为1.0%、0.8%和0.6%
2.6 稳定性试验取样品(批号150804),依法制成供试品溶液,每隔4 h进样1次,共7次,记录色谱图,毛蕊花糖苷、柚皮苷和淫羊藿苷峰面积的RSD(n=6)分别为0.78%、0.55%和0.81%,表明供试品溶液在24 h内稳定。
2.7 加样回收率取用本法已测知含量的样品(批号150804)剪碎,取约2.0 g共9份,精密称定;每3份为一组,分别精密加入混合对照品储备溶液4、5、6 mL,按供试品溶液制备方法处理,按上述色谱条件测定,计算回收率。结果见表 3,表明本方法准确度良好。
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表 3 回收试验结果 Table 3 Results of recovery test |
取3批样品(批号150804,151102,151104)各3份,按照本文方法制备供试品溶液并测定,以外标法计算含量,结果见表 4。
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表 4 3种成分的含量测定结果(mg·丸-1,n=3) Table 4 Determination results of three components(mg per pill, n=3) |
由于各成分性质差异较大,为了使毛蕊花糖苷、柚皮苷和淫羊藿苷3个成分都达到良好的分离,笔者分别考察了不同比例的乙腈-水、乙腈-0.1%醋酸水溶液等流动相系统[8-11],结果分离效果均不甚理想。如以乙腈-水(20:80)两相系统为流动相时,毛蕊花糖苷、柚皮苷出峰好,但淫羊藿苷保留时间过长,而且杂质分离效果差,峰形较差;经过进一步的对比研究,最终选择甲醇-乙腈-水三相系统为流动相梯度洗脱,可消除杂质对被测成分的干扰,各成分的色谱峰峰形对称,理论塔板数高,分离度好,缩短了多成分检测的分析时间。
3.2 检测波长选择取毛蕊花糖苷、柚皮苷、淫羊藿苷对照品溶液,以初始比例流动相为空白,在200~400 nm进行紫外扫描,兼顾多种成分的最大吸收,重点考察334、283、270 nm波长。实验发现,在283 nm波长处,毛蕊花糖苷吸收较低,334 nm波长处,柚皮苷吸收较低,而在270 nm波长处,3种成分都有较强吸收,因此,选择淫羊藿苷的最大吸收波长270 nm作为检测波长,可同时得到较好的色谱峰,并能满足定量测定的要求。
3.3 提取方法的选择笔者分别对回流提取法、冷浸法、超声法进行了考察[12-14]。结果显示,回流提取1 h基本提取完全,但提取温度较高,可能对其活性成分产生较大的影响,活性成分含量均有不同程度的降低[15];而冷浸法提取时,为获得较好的效果,需不定期振摇,且浸泡时间长,提取效率较低;超声法可在30 min内基本提取完全,具有提取时间短,提取温度低,提取率高等特点。综合提取方法及各检测成分的特点,最终选用超声提取法提取。对超声处理时间15、30、45、60 min进行考察,结果表明,超声处理30 min后各成分含量不再增加,考虑到样品的差异性,选择超声处理45 min。在提取溶剂方面,分别考察了乙醇、50%甲醇水溶液、50%甲醇水溶液、甲醇,结果表明50%甲醇水溶液和50%乙醇水溶液超声提取完全且杂质干扰峰较少,结果差异不大,但甲醇毒性较乙醇大,且从经济实用的角度,故提取溶剂选择50%乙醇水溶液。
3.4 小结本实验通过HPLC法梯度洗脱,能快速、准确地对抗骨增生丸中毛蕊花糖苷、柚皮苷和淫羊藿苷同时进行定量测定,可为抗骨增生丸质量标准进一步完善提供参考。
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