期刊检索:
  药物分析杂志   2017, Vol. 37 Issue (3): 427-431.  DOI: 10.16155/j.0254-1793.2017.03.09
0

成分分析

引用本文 [复制中英文]

杨志欣, 王祺茹, 李霞, 单柏松, 刘佳佳, 王海威, 王艳宏. RP-HPLC-DAD同时测定复方石韦胶囊中4个黄酮成分的含量[J]. 药物分析杂志, 2017, 37(3): 427-431. DOI: 10.16155/j.0254-1793.2017.03.09.
[复制中文]
YANG Zhi-xin, WANG Qi-ru, LI Xia, SHAN Bai-song, LIU Jia-jia, WANG Hai-wei, WANG Yan-hong. Simultaneous determination of four flavonoids in Fufang Shiwei capsules by RP-HPLC-DAD[J]. Chinese Journal of Pharmaceutical Analysis, 2017, 37(3): 427-431. DOI: 10.16155/j.0254-1793.2017.03.09.
[复制英文]

基金项目

黑龙江省自然科学基金(H2016057);国家教育部春晖计划(Z2008-1-15016);黑龙江省教育厅骨干教师基金(No.1251G058);黑龙江中医药大学“优秀创新人才支持计划”项目(2012)

第一作者

杨志欣, Tel:13384662573;E-mail:zhixin.y@163.com

通信作者

王艳宏, Tel:13204516819;E-mail:wang.yanhong@163.com

文章历史

收稿日期:2016-03-24
RP-HPLC-DAD同时测定复方石韦胶囊中4个黄酮成分的含量
杨志欣 , 王祺茹 , 李霞 , 单柏松 , 刘佳佳 , 王海威 , 王艳宏     
黑龙江中医药大学药学院, 哈尔滨 150040
摘要目的:建立RP-HPLC-DAD方法,同时测定复方石韦胶囊中苦参酮、槐属二氢黄酮G、异黄腐醇、三叶豆紫檀苷4个黄酮含量。方法:采用C18色谱柱(250 mm×4.6 mm,5 μm),以甲醇-水为流动相梯度洗脱,流速1 mL·min-1,检测波长300 nm。结果:苦参酮、槐属二氢黄酮G、异黄腐醇、三叶豆紫檀苷线性范围分别为0.34~6.84 μg(r= 0.999 3)、0.16~3.27 μg(r= 0.999 5)、0.04~0.85 μg(r= 0.999 1)、0.19~3.70μg(r= 0.999 8);精密度、重复性良好,RSD均小于2.0%;在室温条件下供试溶液12 h内稳定;平均加样回收率(n=6)在99.2%~101.5%(RSD ≤ 2.2%)。3批样品中上述4个成分平均含量依次为94.84~98.85、44.73~47.79、11.16~13.26、54.17~58.74 μg·粒-1结论:所建立的分析方法可用于复方石韦胶囊中4个黄酮成分的含量测定。
关键词复方石韦胶囊    苦参酮    槐属二氢黄酮G    异黄腐醇    三叶豆紫檀苷    黄酮类成分    高效液相色谱    
Simultaneous determination of four flavonoids in Fufang Shiwei capsules by RP-HPLC-DAD
YANG Zhi-xin, WANG Qi-ru, LI Xia, SHAN Bai-song, LIU Jia-jia, WANG Hai-wei, WANG Yan-hong    
College of Pharmacy, Heilongjiang University of Chinese Medicine, Harbin 150040, China
Abstract: Objective: To establish a method for simultaneous determination of four flavonoids in Fufang Shiwei capsules.Methods: Analysis was carried out on a Diamonsil C18 column(250 mm×4.6 mm, 5 μm)using methanol-water as mobile phase at the flow rate of 1 mL·min-1 for gradient elution and the detection wavelength was 300 nm.Results: The calibration curves of the four analytes exhibited good linearity over the range of 0.34-6.84 μg(r= 0.999 3) for kurarinone, 0.16-3.27 μg(r=0.999 5) for sophoraflavanone G, 0.04-0.85 μg(r= 0.999 1) for isoxanthohumol, and 0.19-3.70 μg(r= 0.999 8) for trifolirhizin. The precision and the repeatability were good with RSD value less than 2.0%. The sample solution was stable in 12 h at room temperature. The average recoveries(n=6) ranged from 99.21% to 101.54%(RSD ≤ 2.19%). The average contents of 3 batches of samples were 94.84-98.85 μg per capsule for kurarinone, 44.73-47.79 μg per capsule for sophoraflavanone G, 11.16-13.26 μg per capsule for isoxanthohumol and 54.17-58.74 μg per capsule for trifolirhizin, respectively.Conclusion: The method is suitable for simultaneous determination of four flavonoids in Fufang Shiwei Capsules.
Key words: Fufang Shiwei capsules    kurarinone    sophoraflavanone G    isoxanthohumol    trifolirhizin    flavonoids    HPLC    

复方石韦制剂其方源自清·李用粹的《证治汇补》中的石韦散,经化裁以石韦、黄芪、苦参、萹蓄组方,临床上用于小便不利、尿频、尿急、尿痛及下肢水肿等淋症[1-2],其片剂形式收载于2010年版、2015年版中国药典一部中。按照药典[3-4]要求,仅采用RP-HPLC测定苦参碱、黄芪甲苷的含量。现有的研究尚有针对苦参碱、氧化苦参碱等生物碱[1, 5-7]、绿原酸、香草酸等有机酸类成分[7-8]进行测定的报道。然而,随着化学成分及药理活性研究的深入,黄酮类化学成分越来越不容忽视[9-11]。复方石韦制剂中亦含有较大量黄酮[12-15],其中苦参酮、槐属二氢黄酮G、异黄腐醇以及三叶豆紫檀苷等均具有显著的杀虫、抗菌[16-22]作用,这对于淋症的治疗有重要意义。然而,至今仅有针对芦丁进行含量测定的报道[7]。鉴于此,本文建立了同时测定复方石韦胶囊中苦参酮、槐属二氢黄酮G、异黄腐醇以及三叶豆紫檀苷含量的HPLC方法,该内容国内外未见相关报道。

1 仪器与试药 1.1 仪器

Waters 2695-2996型高效液相色谱仪(Waters公司);Diamonsil C18色谱柱(4.6 mm×250 mm,5 μm;填料:十八烷基硅烷键合硅胶;北京迪马科技有限公司);Milli-Q纯水机(Millipore公司);FA2004万分之一分析电子天平(上海良平仪器仪表有限公司);SB-5200D超声波清洗机(宁波新芝生物科技股份有限公司)。

1.2 试药

复方石韦胶囊(陕西东泰制药有限公司,批号20150706、20150918、20151204,规格为0.5 g·粒-1);苦参酮、槐属二氢黄酮G、异黄腐醇、三叶豆紫檀苷的对照品均为实验室自制,采用乙酸乙酯提取苦参干燥根,提取物经正相硅胶柱层析、ODS反相柱层析分离纯化,经UV、IR、MS及NMR鉴定结构,HPLC检测面积归一化法计算纯度均大于98%;甲醇为色谱纯,水为超纯水;其余试剂均为分析纯。

2 方法与结果 2.1 色谱条件

采用Diamonsil C18色谱柱(4.6 mm×250 mm,5 μm),以甲醇(A)-水(B)为流动相,梯度洗脱(0~14 min,12%A→30%A;14~24 min,30%A→45%A;24~44 min,45%A→65%A;44~54 min,65%A;54~59 min,65%A→70%A;59~69 min,70%A;69~75 min,70%A→75%A;75~90 min,75%A→90%A),流速1 mL·min-1,柱温30 ℃,检测波长300 nm,进样量20 μL。

2.2 溶液的制备 2.2.1 混合对照品储备液

分别取苦参酮、槐属二氢黄酮G、异黄腐醇和三叶豆紫檀苷的对照品适量,精密称定,用甲醇制成每1 mL分别含苦参酮0.342 mg、槐属二氢黄酮G 0.1635 mg、异黄腐醇0.0425 mg及三叶豆紫檀苷0.185 mg的溶液,即得。

2.2.2 供试品溶液

取本品10粒,除去胶囊壳,内容物混匀,精密称定,研细;取粉末适量(约3.5 g),精密称定,加入乙酸乙酯140 mL,称量,超声(功率300 W,频率25 kHz)处理30 min,放冷,再称量,用乙酸乙酯补足减失的量,摇匀,滤过,以40 mL乙酸乙酯分2次洗涤残渣,过滤,合并滤液,回收溶剂至干,残渣加甲醇约3 mL使溶解,并转移至5 mL量瓶中,加甲醇稀释至刻度,摇匀,0.45 μm滤膜过滤,取续滤液,即得。

2.3 方法学考察 2.3.1 空白试验

按“2.1”项下色谱条件,分别将空白溶剂(甲醇)、混合对照品储备液及供试品溶液各20 μL注入液相色谱仪,记录色谱图,结果见图 1。三叶豆紫檀苷、异黄腐醇、苦参酮和槐属二氢黄酮G的保留时间分别为35.75、50.82、63.48和69.44 min,且溶剂对样品含量测定无干扰。

1.三叶豆紫檀苷(trifolirhizin) 2.异黄腐醇(isoxanthohumol) 3.苦参酮(kurarinone) 4.槐属二氢黄酮G(sophoraflavanone G) 图 1 空白溶剂(A)、混合对照品(B)及复方石韦胶囊(C)HPLC色谱 Figure 1 HPLC chromatograms of solvent blank(A), mixed reference substances(B)and Fufang Shiwei Capsules(C)
2.3.2 线性关系考察

精密吸取按“2.2.1”项下方法制备的混合对照品储备液0.5、1.0、2.0、4.0、6.0、8.0、10 mL,分别置10 mL量瓶中,以甲醇定容至刻度,摇匀,即得系列质量浓度的混合对照品溶液。分别吸取上述系列混合对照品溶液各20 μL,按“2.1”项下色谱条件进样测定,记录峰面积。以峰面积(Y)对进样质量(X)进行线性回归,得回归方程,结果见表 1

表 1 回归方程和线性关系 Table 1 Regression equations and linear correlation
2.3.3 精密度试验

取同一供试品溶液,按照“2.1”项下色谱条件连续进样6次,记录色谱图及峰面积。结果苦参酮、槐属二氢黄酮G、异黄腐醇和三叶豆紫檀苷峰面积的RSD分别为0.54%、0.97%、1.51%和0.69%,表明精密度符合要求。

2.3.4 稳定性试验

取同一供试品溶液分别于0、2、4、6、8、12 h分别进样20 μL,测定苦参酮、槐属二氢黄酮G、异黄腐醇和三叶豆紫檀苷的峰面积并计算RSD,结果分别为0.68%、0.73%、1.18%和0.75%,表明供试品溶液可在12 h内测定而对结果没有影响。

2.3.5 重复性试验

取同一批复方石韦制剂,按“2.2.2”项下方法平行制备6份供试品溶液,按“2.1”项下条件进样测定各成分的峰面积,计算苦参酮、槐属二氢黄酮G、异黄腐醇和三叶豆紫檀苷平均含量分别为96.56、47.32、12.11、58.26 µg·粒-1,RSD分别为1.4%、0.98%、1.6%、1.2%。结果表明本法重复性良好。

2.3.6 加样回收率试验

取已知含量的复方石韦胶囊粉末6份,每份约1.75 g,精密称定。分别精密加入混合对照品储备液1.0 mL,按“2.2.2”项下方法制备供试溶液,按“2.1”项下色谱条件进样测定,记录色谱峰峰面积,计算加样回收率,结果见表 2。4个成分的平均回收率在99.2%~101.5%之间,RSD在1.3%~2.2%之间,表明回收率符合要求。

表 2 4个成分的加样回收率实验结果 Table 2 Recovery of four components
2.4 样品含量测定

取3批复方石韦胶囊样品各3份,分别按“2.2.2”项下方法制备供试品溶液,按“2.1”项下色谱条件进行测定,记录色谱图及峰面积,由回归方程计算4个成分的含量,结果见表 3

表 3 复方石韦胶囊中4个黄酮成分的平均含量测定结果(μg·粒-1n=3) Table 3 Contents of 4 components in Fufang Shiwei capsules(μg per capsule, n=3)
3 讨论

针对黄酮类成分的提取,预实验中考察了不同的提取溶剂,如甲醇、乙醇、80%甲醇、80%乙醇水溶液、乙酸乙酯、石油醚;不同的提取方法,如回流、超声、渗滤法;不同的溶剂量,如20倍、30倍、40倍、50倍。结果表明,以乙酸乙酯为提取溶剂(40倍量)超声30 min的效果最佳,待测成分提取率高、杂质少。

4个黄酮成分在200~600 nm全波长扫描,分别在299.3 nm(苦参酮)、296.4 nm(槐属二氢黄酮G)、291.7 nm(异黄腐醇)和309.5 nm(三叶豆紫檀苷)处有最大吸收波长,且吸收峰为较对称峰形,在300 nm处4个黄酮成分吸收均较强,因此在本试验条件下测定波长选择300 nm。流动相分别考察了乙腈-水、甲醇-水梯度洗脱系统,结果后者即可实现较好的分离,且可降低成本。

本研究建立了灵敏、准确的HPLC-DAD法同时检测复方石韦胶囊中苦参酮、槐属二氢黄酮G、异黄腐醇以及三叶豆紫檀苷4种黄酮成分,为提高该制剂的质量控制提供了有价值的参考。

参考文献
[1]
甘蓉. 复方石韦胶囊质量标准研究[J]. 辽宁中医杂志, 2011, 38(2): 328.
GAN R. The study on quality standard of complex prescription capsules of Folium Pyrrosiae[J]. Liaoning J Tradit Chin Med, 2011, 38(2): 328.
[2]
李云章. 山庄牌复方石韦片[J]. 中草药, 1997, 28(3): 190.
LI YZ. Compound Shiwei tablets villa brand[J]. Chin Tradit Herb Drugs, 1997, 28(3): 190.
[3]
中国药典2010年版. 一部[S]. 2010: 907.
ChP 2010. Vol Ⅰ[S]. 2010:907
[4]
中国药典2015年版. 一部[S]. 2015: 1220.
ChP 2015.Vol Ⅰ[S]. 2015:1220
[5]
苏静州, 刘明言, 董海荣. HPLC法测定复方石韦片中苦参碱和氧化苦参碱的含量[J]. 中草药, 2005, 36(3): 383.
SU JZ, LIU MY, DONG HR. Content of matrine and oxymatrine in compound Shiwei tablets by HPLC[J]. Chin Tradit Herb Drugs, 2005, 36(3): 383.
[6]
陈亚飞, 田颂九, 孙曾培. 复方石韦片中生物碱的分离测定[J]. 药物分析杂志, 2002, 22(2): 94.
CHEN YF, TIAN SJ, SUN ZP. Separation and determination of alkaloids in compound Shiwei tablets[J]. Chin J Pharm Anal, 2002, 22(2): 94.
[7]
刘晓星, 索志荣, 郑建斌, 等. RP-HPLC法同时测定复方石韦胶囊中5种成分的含量[J]. 药物分析杂志, 2005, 25(12): 1547.
LIU XX, SUO ZR, ZHENG JB, et al. RP-HPLC determination of 5 components in Fufang Shiwei capsules[J]. Chin J Pharm Anal, 2005, 25(12): 1547.
[8]
刘丽欣, 王岳. HPLC法测定复方石韦片中绿原酸的含量[J]. 现代中西医结合杂志, 2008, 26(9): 4130.
LIU LX, WANG Y. HPLC determination of chlorogenic acid in compound Shiwei tablets[J]. Mod J Integr Tradit Chin Wes Med, 2008, 26(9): 4130.
[9]
赵雪巍, 刘培玉, 刘丹, 等. 黄酮类化合物的构效关系研究进展[J]. 中草药, 2015, 46(21): 3264.
ZHAO XW, LIU PY, LIU D, et al. Research progress in structureactivity relationship of flavoniods[J]. Chin Tradit Herb Drugs, 2015, 46(21): 3264. DOI:10.7501/j.issn.0253-2670.2015.21.025
[10]
范红艳, 任旷, 王艳春, 等. 苦参总黄酮对醋酸铅诱导雄性小鼠睾丸损伤的影响[J]. 中药材, 2014, 37(12): 2279.
FAN HY, REN K, WANG YC, et al. Effects of total flavonoids from sophora flavescens on the testicular damage induced by lead acetate in male mice[J]. J Chin Med Mater, 2014, 37(12): 2279.
[11]
杨进华, 刘红星, 黄初升, 等. 异戊烯基黄酮化合物的研究进展[J]. 化工技术与开发, 2015, 44(3): 14.
YANG JH, LIU HX, HUANG CS, et al. Reasearch advances of prenly flavones[J]. Technol Dev Chem Ind, 2015, 44(3): 14.
[12]
赵慧娟, 孙文基. 苦参中黄酮类化合物的化学成分及药理研究进展[J]. 中药材, 2005, 28(3): 247.
ZHAO HJ, SUN WJ. Research progress in the chemical constituents and pharmacological activities of flavonoids from Sophorae Flavescentis Radix[J]. J Chin Med Mater, 2005, 28(3): 247.
[13]
袁春玲, 郭伟英. 超声循环法提取扁蓄总黄酮[J]. 中草药, 2006, 37(9): 1336.
YUAN CL, GUO WY. Ultrasonic and circulated extraction of total flavones from polygonum aviculare[J]. Chin Tradit Herb Drugs, 2006, 37(9): 1336.
[14]
辛博, 马生军, 谢景, 等. 生长年限对黄芪药材中黄酮及皂苷类成分含量积累的影响[J]. 中药材, 2015, 38(7): 1366.
XIN B, MA SJ, XIE J, et al. Influence of different growing years on accumulation of flavonoids and saponins in Astragali Radix[J]. J Chin Med Mater, 2015, 38(7): 1366.
[15]
周超, 何轶, 鲁静, 等. 黄芪异黄酮对照提取物的制备及其在黄芪药材含量测定中的应用[J]. 药物分析杂志, 2014, 34(3): 523.
ZHOU C, HE Y, LU J, et al. Studies on the preparation of isoflavones reference extract and application on the assay of Astragalus Radix[J]. Chin J Pharm Anal, 2014, 34(3): 523.
[16]
CHA JD, MOON SE, KIM JY, et al. Antibacterial activity of sophoraflavanone G isolated from the roots of Sophora flavescens against methicillin-resistant Staphylococcus aureus[J]. Phytother Res, 2009, 23(9): 1326. DOI:10.1002/ptr.v23:9
[17]
KIM CS, PARK SN, AHH SJ, et al. Antimicrobial effect of sophoraflavanone G isolated from Sophora flavescens against Mutans streptococci[J]. Anaerobe, 2013, 19: 17. DOI:10.1016/j.anaerobe.2012.11.003
[18]
CHA JD, JEONG MR, JEONG SI, et al. Antibacterial activity of sophoraflavanone G isolated from the roots of Sophora flavescens[J]. J Microbiol Biotechnol, 2007, 17(5): 858.
[19]
TSUCHIYA H, LINUMA M. Reduction of membrane fluidity by antibacterial sophoraflavanone G isolated from Sophora exigua[J]. Phytomedicine, 2000, 7(2): 161. DOI:10.1016/S0944-7113(00)80089-6
[20]
KUROYANAGI M, ARAKAWA T, HIRAYAMA Y, et al. Antibacterial and antian drogen flavonoids from Sophora flavescens[J]. Nat Prod, 1999, 62(12): 1595. DOI:10.1021/np990051d
[21]
SOHN HY, SON KH, KWON GS, et al. Antimicrobial and cytotoxic activity of 18 prenylated flavonoids isolated from medicinal plants: Morus alba L., Morus mongolica Schneider, Broussnetia papyrifera (L.)Vent, Sophora flavescens Ait. and Echinosophora koreensis Nakai[J]. Phytomedicine, 2004, 11(7-8): 666. DOI:10.1016/j.phymed.2003.09.005
[22]
郑永权, 姚建仁, 邵向东. 苦参杀虫抑菌活性成分研究[J]. 农药学学报, 1999, 1(3): 91.
ZHENG YQ, YAO JR, SHAO XD. Study on bioactive compounds from Sophora flavescens Ait[J]. Chin J Pest Sci, 1999, 1(3): 91.