亚热带农业研究 2021,Vol. 17Issue (4): 217-225   PDF   
DOI: 10.13321/j.cnki.subtrop.agric.res.2021.04.001
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林萍萍, 张慧, 徐良年, 邓祖湖, 王勤南, 赵新旺
LIN Pingping, ZHANG Hui, XU Liangnian, DENG Zuhu, WANG Qinnan, ZHAO Xinwang
基于SLAF-seq技术的甘蔗遗传多样性和选择信号分析
Analysis on genetic diversity and selection signal of sugarcane based on SLAF-seq technology
亚热带农业研究, 2021, 17(4): 217-225
Subtropical Agriculture Research, 2021, 17(4): 217-225.
DOI: 10.13321/j.cnki.subtrop.agric.res.2021.04.001

文章历史

收稿日期: 2021-10-09
基于SLAF-seq技术的甘蔗遗传多样性和选择信号分析
林萍萍1, 张慧1, 徐良年1, 邓祖湖1, 王勤南2, 赵新旺1,3     
1. 福建农林大学国家甘蔗工程技术研究中心, 福建 福州 350002;
2. 广东省科学院南繁种业研究所, 广东 广州 510310;
3. 广西大学广西甘蔗生物学重点实验室, 广西 南宁 530004
摘要[目的] 通过对不同甘蔗群体进行遗传多样性和选择性清除分析, 了解甘蔗基因组中受人工选择的区域及优良基因, 以期为甘蔗分子育种提供参考。[方法] 对83份甘蔗栽培种和24份细茎野生种共107份材料进行简化基因组测序, 以甘蔗割手密基因组为参考, 获得基因组SNP基因型数据, 分析群体遗传多样性、不同群组的分化系数(Fst), 并以此为基础进行选择信号扫描分析。[结果] (1) 栽培种与细茎野生种群体之间的Fst=0.216, 栽培种群体的核苷酸多样性(π=8.93×10-6)高于细茎野生种群体(π=6.11×10-6)。(2)选择性清除分析得到72个基因组区域, 对前5%的基因组区域进一步分析, 共检测到439个基因。对候选基因进行基因功能注释, 发现受选择基因主要富集在泛素蛋白转移酶活性过程、核苷酸结合过程和热反应过程等, 包括抗病蛋白RGA2、谷胱甘肽S-转移酶、钾转运蛋白等抗性基因。[结论] 107份甘蔗材料可分为两个亚群, 且抗性基因在甘蔗育种过程中得到了强烈的选择。
关键词甘蔗    遗传多样性    群体分化    选择信号    
Analysis on genetic diversity and selection signal of sugarcane based on SLAF-seq technology
LIN Pingping1, ZHANG Hui1, XU Liangnian1, DENG Zuhu1, WANG Qinnan2, ZHAO Xinwang1,3     
1. National Engineering Research Center for Sugarcane, Fujian Agriculture and Forestry University, Fuzhou, Fujian 350002, China;
2. Institute of Nanfan and Seed Industry, Guangdong Academy of Sciences, Guangzhou, Guangdong 510310, China;
3. Guangxi Key Laboratory of Sugarcane Biology, Guangxi University, Nanning, Guangxi 530004, China
Abstract: [Purpose] The mining of elite gene based on genetic diversity and selection signal of different sugarcane populations will provide new sights into the molecular breeding of sugarcane. [Method] Single nucleotide polymorphism (SNP) markers for the whole genome of 107 sugarcane materials (83 modern cultivated Saccharum spp. and 24 wild S.spontaneum L. populations) were generated through specific-locus amplified fragment sequencing. Using the genome of S.spontaneum as the reference, genetic diversity and coefficient of differentiation (Fst) of the samples were measured based on the SNP markers, and then were scanned for the selection signals. [Result] The coefficient of differentiation between the cultivated and wild populations was 0.216, and the nucleotide diversity of the cultivated group (π=8.93×10-6) was higher than that of the wild group (π=6.11×10-6). Referring to the S.spontaneum genome, 72 selective regions were obtained in the genomic regions, and 439 genes were further filtrated from the top 5% of the selective regions. Gene ontology enrichment analysis showed that the selected genes were enriched in the regions which regulated ubiquitin protein transferase activity, nucleotide binding and heat reaction, including many known resistance genes, such as resistance protein RGA2, glutathione S-transferase and potassium transporter, etc. [Conclusion] The 107 sugarcane materials can be divided into 2 subgroups, and the resistance genes were highly selected in the process of sugarcane breeding.
Key words: sugarcane    genetic diversity    group differentiation    selection signal    

甘蔗是热带、亚热带重要的经济作物[1]。由于甘蔗是非整倍的多倍体作物,遗传方式复杂且遗传多样性丰富,可为“高贵化”育种提供优良的亲本材料[2]。甘蔗倍性复杂且不易开花,主要以无性繁殖为主,使育种进展缓慢[3]。目前应用于遗传育种的分子标记有很多,单核苷酸多态性(single nucleotide polymorphisms, SNP)标记由于具有数量多、方便基因分型、覆盖范围广、效率高及可以大规模筛查的优势[4-6],得以普遍应用于探究遗传多样性。简化基因组测序技术(specific-locus amplified fragment sequencing, SLAF-seq)是一种高通量的测序技术,可简便、快速获得覆盖全基因组的SNP标记以及基因型。SLAF-seq技术具有构建文库简单快速、成本较低、准确性高、有效标记多等特点,已应用于甘薯[7]、大豆[8]、水稻[9]等作物遗传多样性分析和性状的QTL定位等研究。

研究甘蔗种质资源的遗传多样性可以挖掘控制优良性状的等位基因,通过人工选择使有利等位基因的基因频率不断提高,甚至固定下来。由于连锁,有利基因周围的基因组区域也随之稳定遗传。甘蔗细茎野生种(Saccharum spontaneum L.)俗称割手密,具有抗逆性强、适应性广等优良性状。推广种植的甘蔗栽培品种大多含有割手密血缘。在全基因组范围检测选择性清除信号,能扫描到与遗传进化有关的受选择基因或基因组区域[10-11]。目前利用SNP标记对甘蔗遗传多样性及选择性清除进行分析的相关研究相对较少。本研究以甘蔗近缘属割手密为参考基因组,对107份甘蔗材料进行简化基因组测序,分析不同群体的遗传多样性,并利用遗传分化指标(Fst)和核苷酸多态性(π)对不同群体进行选择性清除分析,进一步分析甘蔗基因组中受人工选择的区域及优良基因,以期为甘蔗分子育种提供参考。

1 材料与方法 1.1 试验材料

选用107份甘蔗材料进行简化基因组测序,包括83份栽培种及24份细茎野生种。其中,粤甘49在两次引种过程中表型有所差异,但性状都优良,分别编号为粤甘49-1、粤甘49-2。甘蔗叶片主要采自福建、海南、广西等地。取新鲜幼嫩无病害的叶片放于锡箔纸中,置-80 ℃冰箱备用。

1.2 试验方法 1.2.1 DNA的提取

采用2×CTAB法[12]提取甘蔗叶片DNA,并用1.0%琼脂糖凝胶电泳。使用紫外分光光度计测定DNA的纯度和浓度,选择单一、无拖带的DNA样品置于-20 ℃备用。

1.2.2 酶切建库及SNP标记的开发

以甘蔗近缘属割手密基因组(S.spontaneum AP85-441 genome, http://sugarcane.zhangjisenlab.cn/sgd/html/index.html)为参考,利用北京百迈客生物科技有限公司的酶切预测软件对割手密基因组进行最佳酶切方案预测,并对107份甘蔗DNA样品进行酶切。对得到的SLAF标签进行3′端加A处理,连接Dual-index测序接头,通过PCR目的片段的扩增、纯化、混样,选取目的片段,构建合格的测序文库。以水稻品种‘日本晴’作为对照进行测序,评估酶切的准确性。利用BWA软件[13]将测序后的数据比对到参考基因组上,并使用GATK和SAMtools[13]两种软件检测SNP。两种方法取交集以确认最终的SNP位点,并且以最小等位基因频率(minor allele frequency, MAF)大于0.05以及位点完整度大于0.5为标准进行数据过滤,获得高质量的SNP。

1.2.3 系统发育树构建与群体结构分析

采用MEGA 6软件[14],基于邻接法、Kimura 2-parameter模型和自展值重复1 000次,构建系统发育树。基于筛选出的SNP分别对材料进行群体结构和主成分(PCA)分析。(1)通过Admixture软件[15]分析群体结构。预先设定亚群数目(K值)为1~10进行聚类,并对聚类结果进行交叉验证。根据交叉验证错误率的谷值确定最优分群数。(2)通过EIGENSOFT软件进行PCA分析,对所有材料进行聚类。

1.2.4 Fst和π的计算及选择性清除分析

基于高质量的SNP,按照100 kb的窗口、10 kb的步长对染色体进行选择性清除区域检测。使用R语言的PopGenome软件包,计算Fst、π和多样性变化倍数(θπratio)等,并利用Fst值绘制曼哈顿图。在筛选选择性清除区域时,分别以Fst和π前5%分位数对应的数据作为阈值,取该区域的交集为选择性清除区域。

1.2.5 候选基因的检测与注释功能富集分析

将鉴定的选择性清除区域通过Interproscan软件[16]进行GO注释分析。在网站(http://plantregmap.cbi.pku.edu.cn/go.php)上进行GO富集分析,并与Swiss-Prot[17]、GO[18]和KEGG[19]等数据库进行对比得到注释信息。参考NCBI数据库(https://www.ncbi.nlm.nih.gov/)以及割手密基因组数据库,对受选择区域的基因进行功能注释,对候选基因进行GO功能富集分析。

2 结果与分析 2.1 测序数据统计与评估

通过对107份甘蔗基因组DNA进行SLAF酶切及建库,总共获得223.63 Mb序列数据。其中,云南82-29获得的数据量(4.66 Mb)最大,湛蔗80-101等样品的数据量(0.27 Mb)最小(表 1)。107份材料测序结果显示,GC含量在42.08%~45.69%之间,平均44.11%;测序碱基质量值Q30在89.41%~93.08%之间,平均90.93%,说明碱基测序错误率较低,获得的数据可靠。本研究中第42个样品即新台糖26号的碱基含量分布和质量分布见图 1。通过序列分析,从107份甘蔗材料中共获得7 869 726个高质量的SNP。根据SNP在染色体上的分布,绘制SNP在染色体上的分布图(图 2)。由图 2可知,开发的SNP标记在染色体上分布比较均匀,Chr7D的SNP位点相对较多,Chr8C的SNP位点相对较少。

表 1 SLAF-seq基因组测序数据统计表 Table 1 Summary of genomic sequences generated by SLAF-seq
编号 名称 $\frac{\text { 总读长 }}{\mathrm{Mb}} $ 编号 名称 $\frac{\text { 总读长 }}{\mathrm{Mb}} $ 编号 名称 $\frac{\text { 总读长 }}{\mathrm{Mb}} $
1 川蔗83-181 2.37 23 德蔗03-83 1.04 45 福农41 1.04
2 川蔗85-421 1.65 24 福农81-745 1.78 46 桂糖42 1.50
3 赣蔗72-12 0.85 25 桂糖73-167 1.51 47 柳城05-136 3.19
4 赣蔗82-660 2.73 26 闽糖86-2121 1.52 48 粤糖93-159 3.31
5 桂糖69-156 2.43 27 闽糖86-62 1.52 49 云瑞10-701 0.27
6 桂糖87-7 2.37 28 闽糖86-887 1.53 50 云蔗09-1601 0.27
7 华南65-12 2.40 29 闽糖88-101 1.53 51 中蔗1 0.27
8 内江57-416 1.52 30 粤糖71-210 1.53 52 中蔗2 0.27
9 内江61-380 1.53 31 粤糖83-271 1.53 53 桂糖49 1.53
10 内江81-762 1.53 32 云蔗89-351 1.50 54 中糖13-01 0.27
11 农林8号 1.53 33 CP65-357 2.16 55 云瑞12-263 1.50
12 粤农73-204 1.47 34 CP80-1827 1.07 56 粤甘51 1.53
13 粤农79-780 3.31 35 赣江18 2.05 57 粤甘52 1.53
14 粤糖63-237 3.31 36 赣蔗14 1.44 58 中蔗13 0.27
15 粤糖64-395 3.31 37 闽糖46-202 1.53 59 云蔗11-3208 1.50
16 粤糖65-1279 3.31 38 湛江74141 2.14 60 云蔗11-1074 0.27
17 粤糖81-342 3.31 39 粤糖89-240 2.05 61 云瑞11-450 0.27
18 粤糖85-177 0.27 40 云蔗89-7 0.27 62 德蔗12-88 1.84
19 粤糖85-5 3.31 41 新台糖25号 1.24 63 福农09-7111 2.38
20 粤糖86-05 1.80 42 新台糖26号 1.84 64 中糖1201 2.14
21 湛蔗80-101 0.27 43 福农09-12206 1.78 65 中糖1202 2.14
22 川蔗89-103 1.07 44 福农09-4095 1.04 66 中蔗10号 0.27
67 云蔗11-1204 0.27 81 粤甘48 3.31 95 陵水4号 2.68
68 福农09-6201 3.47 82 粤甘50 1.53 96 陇川割手密 1.67
69 粤甘49-1 3.31 83 粤甘53 3.31 97 蛮耗1号 1.53
70 福农11-2901 3.47 84 福建89-Ⅰ-7 1.98 98 蛮耗2号 1.52
71 粤甘49-2 3.31 85 福建89-Ⅱ-11 2.05 99 四川79-Ⅰ-1 3.34
72 桂糖10-701 1.78 86 广东48号 2.73 100 四川79-Ⅰ-4 1.58
73 闽糖11-610 1.52 87 广东50号 1.95 101 崖城11号 3.19
74 桂糖11-1076 1.28 88 贵州Ⅱ-26 1.81 102 崖城12号 3.31
75 新台糖22 1.07 89 贵州Ⅱ-4 1.51 103 云南12 1.80
76 中蔗6号 0.27 90 海南92-75 2.68 104 云南24 0.27
77 福农10-14405 1.04 91 海南92-76 2.68 105 云南76-Ⅱ-35 1.80
78 云瑞10-187 0.27 92 湖南割手密 2.49 106 浙江割手密 0.27
79 福农10-0574 3.37 93 江西79-17 2.49 107 云南82-29 4.66
80 桂糖13-386 3.19 94 江西79-25 1.47
图 1 新台糖26号的碱基含量及测序质量分布 Figure 1 Base distribution and quality distribution of Xintaitang 26 reads
每个条带代表一条染色体,横坐标为染色体长度,颜色越深代表SNP标记数越多。 图 2 SNP标签在甘蔗染色体上的分布 Figure 2 Distribution of SNPs on the chromosomes of sugarcane
2.2 甘蔗系统发育分析及群体结构划分

为了从基因水平上分析栽培种群体与细茎野生种群体的遗传结构,利用筛选出的7 869 726个高质量的SNP,通过Admixture软件进行107份甘蔗材料群体结构分析(图 3)。根据交叉错误率确定最优分群。当K从1到2时,交叉错误率逐渐减小;从2到10时,交叉错误率逐渐增大(图 3C)。说明K=2时,交叉错误率最小。因此,107份甘蔗群体可分为2个亚群,一个为栽培种群体,另一个为细茎野生种群体(图 3D)。

A.进化树分析,Ⅰ为栽培种群体、Ⅱ为细茎野生种群体;B.群体主成分分析;C.群体结构交叉验证错误分析;D.群体结构。 图 3 107份甘蔗材料遗传结构的分析 Figure 3 Genetic structure analysis of 107 sugarcane varieties

利用SNP信息,构建107份甘蔗材料的进化树(图 3A)。从进化树可见,细茎野生种群体、栽培种群体分别聚在一起,说明栽培品种间的序列相似性较高,与细茎野生种存在一定的差异。利用R软件绘制主成分分析图(图 3B),发现2个亚群在PC1轴上的分布存在差异。该结果与聚类分析结果相一致。周珊等[20]研究表明,甘蔗不同亚群间存在遗传渗透,尤其是栽培种群体中混有细茎野生种的遗传成分。细茎野生种将优良的抗性基因渗入栽培品种中,通过品种间不断地杂交、人工选择及自然选择,丰富了甘蔗遗传背景,培育出抗逆性强和产量高的优良品种[21],与本研究遗传多样性的分析结果相类似。

2.3 甘蔗群体遗传分化分析

为了探究甘蔗群体的分化,本研究分析了栽培种群体和细茎野生种群体的Fst值,并利用100 kb滑动窗口对基因组区域Fst值进行分析(图 4)。从图 4可见,栽培种群体与细茎野生种群体之间Fst=0.216,栽培种群体的核苷酸多样性(π=8.93×10-6)高于细茎野生种群体(π=6.11×10-6)。可能是因为栽培种遗传背景较为复杂,除了割手密血缘外,还有热带种血缘或者大茎野生种血缘[22],导致栽培种群体遗传多样性可能高于细茎野生种群体,深层次原因需进一步研究。

红点和蓝点分别表示Fst和多样性变化倍数大于95%群体间筛选出的基因组区域。 图 4 甘蔗栽培种与细茎野生种群体间的差异基因组区域 Figure 4 Different genomic regions between cultivated sugarcane population and wild S.spontaneum population
2.4 差异化的候选区域及候选基因

利用群体间的群体分化系数以及核苷酸多样性比率进行选择性清除分析。使用100 kb的滑动窗口以及10 kb步长分别计算群体分化系数和核苷酸多样性比率,并取基因组前5%的交集区域作为选择清除区域(图 5)。以割手密基因组为参考,分析107份甘蔗差异基因组区域中的基因。从图 5可见,在栽培种群体和细茎野生种群体中共检测到72个受选择区域,其中439个基因具有强烈选择信号。进一步对选择性扫描的区域进行基因功能注释,发现富集的基因组区域中包含UBA3、CBP2、GSTU8等与抗性相关的基因(表 2图 5)。

红色、蓝色线分别表示基因组前1%、前5%水平的阈值线;对受选择区域的基因进行功能注释分析获得箭头所示基因。 图 5 甘蔗栽培种与细茎野生种群体分化系数在染色体上的整体分布 Figure 5 Global Fst distribution between cultivated sugarcane population and wild S.spontaneum population
表 2 甘蔗栽培种与细茎野生种群体间高差异基因组区域前5% SNP的部分基因 Table 2 Partial candidate genes from highly different genomic regions between cultivated sugarcane population and wild S.spontaneum population (top 5% of SNPs in each region)
基因 染色体 位置 候选基因 GO注释
Sspon.01G0033470-2D 1 111219659-111227834 OsJ_13430 GO: 0009408
Sspon.01G0033500-2D 1 111217204-111219144 ACL1.3 GO: 0006633
Sspon.01G0033530-2D 1 111127144-111129385 PGRL1A GO: 0009536
Sspon.01G0033510-1P 1 111200463-111207212 F7G19.11 GO: 0004674
Sspon.01G0033520-2D 1 111155342-111156460 GA20ox1B GO: 0009908
Sspon.02G0000460-3C 2 2402793-2408367 UBA3 GO: 0008641
Sspon.02G0053560-1C 2 106441771-106446792 RGA2 GO: 0000166
Sspon.02G0035310-1B 2 18525265-18530875 LPEAT1 GO: 0006655
Sspon.02G0042810-3D 2 80975917-80986304 CBP2 GO: 0004185
Sspon.03G0038920-1C 3 8492372-8492695 GSTU8 GO: 0004364
Sspon.03G0020470-2B 3 86271808-86276213 F12L6 GO: 0004662
Sspon.04G0011340-3D 4 37616777-37619659 P0461D06.12 GO: 0071805
Sspon.06G0001910-2B 6 4859815-4863368 PP7 GO: 0004721
Sspon.06G0001930-2B 6 4867047-4874968 At1g72550 GO: 0004812
Sspon.06G0001920-2B 6 4864031-4864450 CP12-3 GO: 0009536
Sspon.07G0030710-1C 7 10597468-10601220 At2g40280 GO: 0032259
Sspon.07G0026060-2D 7 16041735-16045639 SCL9 GO: 0006351

通过富集的基因进行GO注释和富集分析发现,两个群体受选择基因主要富集在泛素蛋白转移酶活性过程、核苷酸结合过程、对热的反应过程、磷酸蛋白酶活性过程、复制后修复过程、丝氨酸/苏氨酸蛋白激酶活性过程、谷胱甘肽转移酶活性过程、钾离子跨膜转运过程和丝氨酸型羧肽酶活性过程等通路。其中,位于2号染色体的候选区域锚定在10.63~10.64 Mb之间,基因Sspon.02G0053560-1C与野生土豆抗病蛋白RGA2同源[23],说明抗性基因在选择性清除中受到选择。

3 讨论 3.1 野生种质是拓宽甘蔗遗传基础的有效途径

本研究通过简化基因组测序对107份甘蔗材料进行全基因组SNP标记的开发,获得7 869 726个高质量的SNP,并进行群体遗传结构分析。利用Admixture软件对甘蔗自然群体的群体结构分析表明,K=2时交叉错误率最小。因此,107份甘蔗材料划分成2个亚群,分别为栽培种群体和细茎野生种群体。该结果与进化树和主成分分析结果一致,说明甘蔗群体结构分析结果较可靠。值得注意的是,栽培种群体结构存在细茎野生种血缘的渗透现象。郎荣斌等[24]研究显示,甘蔗是多倍体植物且为非整倍体,遗传背景复杂,经过多年人工杂交,有较为明显的血缘渗透,大多数推广的栽培种中混有细茎野生种的遗传成分。本研究选用了83份栽培种和24份细茎野生种,之中的栽培品种是我国近50年育成及推广应用的品种,细茎野生种是我国甘蔗育种中应用最多的野生资源[25]。因此,该107份材料在一定程度上能反映我国甘蔗育成品种的遗传多样性。同时也说明利用甘蔗野生种质资源可以拓宽甘蔗遗传基础,是提高遗传多样性的有效途径[26]

3.2 我国甘蔗栽培品种遗传多样性良好

本研究表明,栽培种群体的核苷酸多样性(π=8.93×10-6)高于细茎野生种群体(π=6.11×10-6),可能是因为栽培种遗传背景较为复杂[27]。田春艳等[28]研究统计,我国现有甘蔗栽培品种中超过90%的甘蔗含有POJ2878的血缘,栽培品种中大多数的血缘来自于热带种、细茎野生种和印度种。通过甘蔗的“高贵化”育种[29],将细茎野生种作为父本,与热带种进行杂交并回交以选育出优良的品种,说明大多数甘蔗栽培材料含有细茎野生种血缘,提高了栽培群体的核苷酸多样性。

3.3 抗性基因在甘蔗育种中受到选择

甘蔗栽培品种在选育和生产过程中,经常受干旱[30]、寒害[31]、黑穗病[32]和花叶病[33]等胁迫,一定程度上制约了甘蔗的生产。在甘蔗抗性性状的遗传改良方面,细茎野生种使甘蔗种质的开发取得突破性的进展。利用分子标记挖掘细茎野生种优良的抗性基因有利于提升甘蔗抗逆水平。通过对107份材料进行选择性清除分析发现,抗性基因在育种过程中持续受到选择。如沈怿丹[34]研究表明,GST家族在作物抗旱、耐盐、耐高温等环境胁迫上起重要作用,并且朱丹等[35]发现在干旱、高温胁迫中薄荷GSTU8基因上调表达;殷龙飞等[36]研究发现,GRAS家族在调控植物信号传导的过程中具有重要作用,在干旱胁迫下作物茎叶部和根部调控SCL9基因的表达,SCL9基因是GRAS家族的成员之一。本研究中抗性基因在甘蔗育种过程中得到了强烈的选择,这能够为甘蔗抗逆分子育种提供候选基因,并为后续关联分析挖掘优良基因提供参考。

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