森林与环境学报  2019, Vol. 39 Issue (6): 584-592   PDF    
http://dx.doi.org/10.13324/j.cnki.jfcf.2019.06.004
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丁文沙, 魏志超, 孟李群, 刘志刚, 刘爱琴
DING Wensha, WEI Zhichao, MENG Liqun, LIU Zhigang, LIU Aiqin
生物炭对杉木人工林土壤细菌多样性的影响
Effects of biochar on soil bacterial diversity in Chinese fir plantations
森林与环境学报,2019, 39(6): 584-592.
Journal of Forest and Environment,2019, 39(6): 584-592.
http://dx.doi.org/10.13324/j.cnki.jfcf.2019.06.004

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收稿日期: 2019-04-11
修回日期: 2019-09-23
生物炭对杉木人工林土壤细菌多样性的影响
丁文沙1,2 , 魏志超1,2 , 孟李群1,2 , 刘志刚1,2 , 刘爱琴1,2     
1. 福建农林大学林学院, 福建 福州 350002;
2. 福建省杉木种质创新工程研究中心, 福建 福州 350002
摘要:为揭示施用生物炭对杉木人工林土壤微生物多样性的影响规律,以不同发育阶段杉木人工林土壤为研究对象,分析测定施用不同生物炭的杉木人工林土壤微生物多样性、物种组成、物种丰度及土壤理化性质。结果表明:生物炭处理使杉木人工林土壤化学性质发生改变,木炭处理使幼龄林和中龄林土壤pH值分别减少0.01和增加0.05;竹炭处理使幼龄林和中龄林土壤pH值分别增加0.05和0.09。施用生物炭后杉木人工林土壤细菌丰度发生改变,改变了成熟林中绿弯菌门和变形菌门的相对丰度,木炭和竹炭处理后分别使绿弯菌门相对丰度与对照相比减少了58.34%和54.31%,使变形菌门相对丰开放科学标识码(OSID码)度与对照相比分别上升了53.23%和70.63%。冗余分析发现,土壤化学性质与土壤细菌群落结构间存在显著相关性,说明施用生物炭会通过改变土壤化学性质影响土壤细菌群落结构,预选结果显示土壤全磷(TP)和土壤全碳(TC)对细菌群落分布影响最显著。本研究为添加生物炭对杉木人工林土壤细菌种类、群落结构及其功能的影响机制提供理论依据。
关键词生物炭    杉木人工林    土壤细菌多样性    土壤性质    
Effects of biochar on soil bacterial diversity in Chinese fir plantations
DING Wensha1,2 , WEI Zhichao1,2 , MENG Liqun1,2 , LIU Zhigang1,2 , LIU Aiqin1,2     
1. College of Forestry, Fujian Agriculture and Forestry University, Fuzhou, Fujian 350002, China;
2. State Forestry Administration Engineering Research Center of Chinese Fir, Fuzhou, Fujian 350002, China
Abstract: In order to reveal the effects of biochar addition on soil bacteria dynamics in Chinese fir plantations, high-throughput sequencing was performed on the different development stages of the plantation soil, which was treated without biochar (CB) and with two different types of biochar, namely Chinese fir biochar (CM) and bamboo biochar (CZ), and the diversity and composition of the bacteria were analyzed. The results showed that biochar could change the basic properties of soil; CM and CZ made the soil pH decrease by 0.01 and increase by 0.05 compared with that of CB in a young forest, respectively, and increase by 0.05 and 0.09 compared with that of CB in a middle-aged forest, respectively. Applying biochar changed the relative abundance of bacteria in the soil of the Chinese fir plantation; CM and CZ decreased the relative abundance of Chlorobacteria by 58.34% and 54.31% compared with that of CB, respectively, and increased the relative abundance of Proteobacteria by 53.23% and 70.63% compared with that of CB, respectively. Redundancy analysis showed that the soil chemical properties had a significant correlation with the soil bacteria community. The forward selection results showed that total phosphorus and total carbon had the most significant correlation with the soil bacteria community, which showed that the biochar affected the soil bacteria community by changing the soil chemical properties. This study provided a theoretical basis for the effect of different types of biochar on soil bacteria species, community structure, and function in Chinese fir plantations.
Key words: biochar     Cunninghamia lanceolata plantation     soil bacteria     soil properties    

杉木[Cunninghamia lanceolata (Lamb.) Hook.]广泛分布于中国南方地区,是一种重要的造林速生树种,具有材质好、生长快、纹理直、加工方便等特点,是主要的建筑、家具用材[1]。然而杉木养分吸收多、归还少,凋落物分解缓慢,导致土壤理化性质恶化和肥力低下,有研究表明,杉木连栽导致杉木人工林地力衰退的现象日趋突出,尤其是连栽导致土壤细菌功能活性下降,多样性指数降低[2]。目前针对杉木连栽地力衰退研究主要从施肥、栽培制度等营林措施方面入手[3]。微生物是土壤中不可缺少的活性部分,它参与土壤中有机质的分解、养分循环与平衡、土壤污染物质修复等过程[4]

生物炭是农林废弃物在低氧或厌氧的条件下,通过高温裂解,将碳素锁住的一种富含孔隙、具有芳香烃结构的高碳固体物质[5]。生物炭可通过提高土壤养分含量来维持土壤结构和养分平衡,从而促进作物对养分吸收,进而提高作物产量[6]。目前的研究表明,生物炭对土壤生态系统功能的影响十分复杂,不仅影响土壤物理及化学性质,同时能够影响土壤微生物群落区系组成[7]。土壤中微生物群落的多样性影响了土壤转化和保存不同养分的能力,往往与土壤肥力存在明显的相关性。生物炭通过影响土壤环境,间接影响土壤微生物数量、种类[8]。虽然目前添加生物炭对土壤微生物活力的影响已有较多报道,但研究者在其对土壤细菌影响方面的观点却不一致[9-10]。因此,生物炭对土壤细菌的影响机制目前并不明确,特别是生物炭对不同林龄杉木人工林土壤细菌结构及多样性的影响方面的研究鲜有报道。鉴于此,本研究基于高通量测序技术对聚合酶链式反应(polymerase chain reaction,PCR)所扩增的16S rDNA序列的V3+V4区域进行测定,对施用生物炭处理后的杉木人工林土壤细菌群落进行培养,加大测序的深度和覆盖度,为添加生物炭对杉木人工林土壤细菌种类、群落结构及其功能的影响机制提供理论依据,对杉木人工林不同发育阶段林木生产能力及生态系统恢复等具有重要的科学价值和现实意义。

1 材料与方法 1.1 试验地概况

试验地位于三明市莘口镇福建农林大学教学林场(北纬26°09′,东经117°28′),该林场多为山地丘陵,平均海拔400 m, 土壤类型为粉砂岩发育的山地红壤,气候为中亚热带季风气候,年平均降水量1 620 mm。选择立地条件相近的杉木幼龄林(2005年造林,7年生,林分密度为1 317株·hm-2)、中龄林(1995年造林,17年生,林分密度为911株·hm-2)、成熟林(1978年造林,34年生,林分密度为894株·hm-2)3个发育阶段杉木人工林,其表层土壤性质见表 1[11]

表 1 杉木人工林林地土壤基本性质 Table 1 The basic properties of soil in Chinese fir plantation
发育阶段
Plantation stage
全碳含量
Total carbon/(g·kg-1)
全氮含量
Total nitrogen/(g·kg-1)
pH值
pH value
全磷含量
Total phosphorus/(g·kg-1)
全钾含量
Total potassium/(g·kg-1)
水解性氮含量
Dissolved organic nitrogen/(mg·kg-1)
有效磷含量
Available phosphorus/(mg·kg-1)
速效钾含量
Available potassium/(mg·kg-1)
幼龄林
Young forest
21.56 1.09 4.17 0.59 20.65 172.78 7.39 91.3
中龄林
Medium age forest
17.79 1.08 4.07 0.6 21.94 188.36 10.59 91.34
成熟林
Mature forest
24.4 1.08 4.03 0.53 20.85 151.75 8.94 86.14
1.2 样地设置

每个发育阶段杉木人工林均选择2代杉木林,经1代杉木人工林采伐完成后均经过炼山处理,施炭前,该3种林地经营管理方式相同。设计施用木炭(CM)、竹炭(CZ)和不施炭(CB)处理,样地大小为20 m×20 m,每个处理重复3次,3个林龄共设27块样地。2012年12月,对标准样地进行施炭处理,采用人工撒施的方式,按照12 t·hm2的标准施炭。试验所用生物炭为个体农户传统土窑生产,其中竹炭以毛竹为材料,木炭以杉木为原材料,表 2为所施生物炭的基本理化性质[11]

表 2 生物炭基本理化性质 Table 2 The basic physical and chemical properties of biochar
生物炭类型
Biochar type
氮含量
Nitrogen/(g·kg-1)
碳含量
Carbon/(g·kg-1)
磷含量
Phosphorus/(g·kg-1)
钾含量
Potassium/(g·kg-1)
pH值
pH value
灰分含量
Ash content/%
碳氮比
C/N/%
木炭Chinese fir biochar 7.75 753.20 0.77 21.32 8.44 7.79 97.24
竹炭Bamboo biochar 8.58 664.30 2.01 32.10 9.56 12.72 78.26
1.3 土壤取样方法

2015年12月,即施炭后第3年,在不同发育阶段杉木人工林样地内,采用“S”型布点,利用取土钻采集0~20 cm土层土壤,同一样地土壤混合均匀后,用冰袋保存带回室内。一部分通过2 mm筛,放入4 ℃冰箱中冷藏保存,用于土壤细菌测定;另一部分经风干过筛后用于测定土壤化学性质。

1.4 土壤化学性质测定

土壤pH值采用水土比为2.5:1,用pH计进行测定;全磷(total phosphorus,TP)、全钾(total potassium,TK)使用马弗炉碱熔法消煮,TP含量采用钼锑抗比色法测定,TK含量采用火焰光度计测定;水解性氮(dissolved organic nitrogen,DON)含量采用碱解-扩散法测定;速效钾(available potassium,AK)含量用乙酸铵浸提-火焰光度计测定;有效磷(available phosphorus,AP)含量用氟化铵-盐酸浸提测定[12];土壤全氮(total nitrogen,TN)、全碳(total carbon,TC)含量采用CN元素分析仪(德国元素分析系统有限公司,vario MAX cube CN型)测定;土壤铵态氮(NH4+)、硝态氮(NO3-)含量使用流动分析仪(AA3型,德国)进行测定[13]

1.5 土壤微生物测定 1.5.1 DNA提取

土壤采样完成后使用DNA提取试剂盒(DNeasy PowerSoil HTP 96 Kit,Mobio,USA)提取DNA,并在提取完成后取5~10 μL DNA进行1.0%琼脂糖凝胶电泳,分析其完整性;测定DNA浓度使用微量分光光度计(ND-1000,NanDrop Technologies,USA)。

1.5.2 16S rDNA的扩增与测序

样品经过富集菌体后,使用纯化试剂盒(DP304,天根生化科技有限公司,中国)提取纯化基因组DNA。提取的细菌基因组DNA使用细菌V3+V4区通用引物序列,经PCR扩增基因组上16S rDNA的V3+V4区序列(扩增片段为465 bp左右)。PCR反应条件为94 ℃ 2 min; 94 ℃ 30 s,57 ℃ 30 s,72 ℃ 30 s,30个循环; 72 ℃ 5 min,4 ℃保存,然后进行2%的琼脂糖凝胶电泳检测。将400~500 bp区域的片段纯化回收,测定DNA浓度,然后将这些片段加接头建库测序,使用illuminaMiSeq测序仪与illumina建库。其中,测序引物序列为Primer-F:5′-CCTACGGGNGGCWGCAG-3′; Primer-R:5′-GGACTACHVGGGTATCTAAT-3′。

1.5.3 细菌数据分析

利用Mothur软件对tag序列进行去冗余处理,并对tags在97%的相似度下进行操作分类单位(operational taxonomic unit,OUT)聚类,统计各个土壤样品每个OUT中的丰度信息。

1.6 统计分析

根据OUT聚类结果,使用物种指数方法计算土壤细菌群落的功能多样性,即Alpha多样性,包括chao1、Ace、Shannon以及Simpson指数等。:利用Excel 2016软件进行基础数据整理与制图;用SPSS 20软件对土壤基本化学性质、土壤细菌Alpha多样性和细菌群落丰度等进行统计和单因素方差分析;利用LSD在置信度为95%下检验显著性;用Canoco 4.5软件对土壤性质养分含量及土壤细菌群落相对丰度做冗余分析(redundancy analysis,RDA),得到其中的相关关系。

2 结果与分析 2.1 生物炭对杉木人工林土壤化学性质的影响

表 3可见,生物炭能明显改善杉木人工林土壤化学性质,总体上施用竹炭效果优于木炭,对不同发育阶段土壤化学性质的影响表现为杉木幼龄林优于中龄林和成熟林。施炭处理会使土壤pH值及AK、DON、NH4+、TC、TN、AP、TK和TP含量改变,但在不同发育阶段间存在差异。

表 3 不同施炭处理的杉木人工林土壤基本性质 Table 3 The basic properties of soil in Chinese fir plantation with different treatments
发育阶段
Plantation stage
处理方式
Treatment
pH值
pH value
速效钾含量AK
/(mg·kg-1)
有效磷含量AP
/(mg·kg-1)
水解性氮含量
DON/(mg·kg-1)
铵态氮含量NH4+
/(g·kg-1)
硝态氮含量NO3-
/(g·kg-1)
全氮含量TN
/(g·kg-1)
全碳含量TC
/(g·kg-1)
全钾含量TK
/(g·kg-1)
全磷含量TP
/(g·kg-1)
幼龄林 CB 4.16±0.01Aab 125.09±4.57Aa 13.94±3.71Aa 113.13±61.46Ab 26.13±1.74Aa 6.94±0.11ABa 1.98±0.10Ab 27.60±0.85Ab 7.00±0.85Bb 0.14±0.00Ca
Young CM 4.15±0.04Ab 98.38±15.63Aab 9.40±1.21Ab 155.07±2.43Aab 21.82±4.85Aa 7.14±0.25ABa 2.29±0.14Ba 31.88±4.42Aab 8.85±1.20Aa 0.17±0.02Ba
forest CZ 4.21±0.05Aa 58.65±12.29Ab 15.79±1.48Aa 186.49±26.73Aa 28.57±1.21Aa 7.04±1.19Aa 2.53±0.01Aa 34.26±1.63Aa 6.30±1.13Bb 0.14±0.04Ba
中龄林 CB 4.02±0.09ABa 63.37±12.28Ba 9.22±0.00Aa 153.15±9.51Aa 19.94±3.25Aa 5.92±0.03Ba 2.14±0.22Aa 22.13±3.02Aa 9.70±0.14Aa 0.29±0.01Ba
Medium CM 4.07±0.08Aa 78.89±13.37ABa 7.21±1.69ABa 114.97±39.01Aa 21.49±7.77Aa 6.22±0.66Ba 1.97±0.17Aa 18.83±3.01Ba 9.15±0.35Aa 0.37±0.07Aa
age forest CZ 4.11±0.06Ba 78.37±4.52Aa 6.35±0.68Ba 169.0±2.41Aa 24.21±2.64Aa 6.49±0.31Aa 2.12±0.03Ba 22.62±3.15Aa 9.45±0.64Aa 0.29±0.03Aa
成熟林 CB 3.95±0.03Ba 65.45±4.11Ba 9.35±1.97Aa 129.06±4.95Ac 23.05±1.35Aa 8.17±0.47Aa 1.99±0.02Aa 22.19±0.13Aa 8.60±0.14Ab 0.42±0.11Aa
Mature CM 4.01±0.00Aa 66.25±4.86Ba 5.40±1.38Bb 139.56±19.64Abc 23.09±0.81Aa 7.83±0.96Aa 2.00±0.09Aa 23.77±1.93Ba 9.80±0.14Aab 0.27±0.02ABb
forest CZ 3.88±0.00Ca 70.73±5.58Aa 7.69±0.00Bab 204.8±4.96Aa 21.45±0.35Aa 7.28±0.69Aa 2.24±0.03Ba 27.83±.49Aa 10.15±0.21Aa 0.29±0.09Ab
注:同列数据后相同字母表示差异不显著;小写字母表示同一发育阶段不同处理差异显著(P<0.05);大写字母表示同一处理不同发育阶段差异显著(P<0.05)。Note: the same letter in the same column indicates no significant difference; different lowercase letters indicate significant differences among different treatments in the same plantation stage (P<0.05); and different capital letters indicate significant differences among different plantation stages with the same treatment (P<0.05).

施用木炭处理后,AK、AP、TN、TC、NO3-和TP含量在不同发育阶段存在显著差异,AK、AP、TN和TC含量在幼龄林土壤中最高,NO3-含量在成熟林土壤中最高,TP含量在中龄林土壤中最高;施用竹炭处理后,AP、TN、TC、TK和TP含量在不同发育阶段存在显著差异,AP、TN和TC含量表现为幼龄林>成熟林>中龄林,TK和TP含量表现为成熟林>中龄林>幼龄林。说明施炭处理对土壤中AP、TN和TC含量在幼龄林中影响最显著,对土壤中TK和TP含量在成熟林中影响最大。

2.2 生物炭对杉木人工林土壤细菌多样性分析 2.2.1 土壤细菌绝对丰度分析

通过对不同林龄以及不同生物炭处理的土壤样品进行高通量测序,各样品均按照97%相似性对非重复序列(不含单序列)进行OTU聚类分析。通过对高通量测序获得的原始数据进行整理、去噪和去除嵌合体处理,得到了56 651~83 575条有效序列,有效序列百分比均在92%以上,OUT数量集中在5 670~7 252之间,表明对照组和处理组样本中物种分布均匀,可用于多样性分析。

2.2.2 生物炭对杉木人工林土壤细菌多样性的影响

表 4为施用不同生物炭不同发育阶段杉木人工林土壤的群落丰富度指数,如Chao1、Ace指数,群落多样性指数,如Shannon、Simpson指数。不施炭处理以及生物炭处理的土壤Chao1、Ace和Shannon指数在各发育阶段无显著差异;中龄林中Ace指数在不同处理间存在显著差异,表现为竹炭处理显著高于不施炭处理及木炭处理,说明在中龄林中,竹炭处理能显著增加土壤微生物群落。在不施炭处理及木炭处理时,不同发育阶段的Simpson指数存在显著差异,表现出幼龄林>中龄林>成熟林,说明施炭处理对幼龄林土壤细菌多样性的影响明显高于对中龄林和成熟林的影响。覆盖率代表着各样本的文库覆盖率,其数值越高,则样本中序列被测出的概率越高,即没有被测出的概率越低[14]。由表 4可知,各样本覆盖率均在95%以上,说明对样本中的细菌覆盖率较高,测序深度适合,足以满足细菌多样性的分析需求。

表 4 土壤细菌高通量测序多样性信息 Table 4 The pyrosequencing diversity information of soil bacteria
发育阶段
Plantation stage
处理方式
Treatment
Chao1指数
Chao1 index
Ace指数
Ace index
Shannon指数
Shannon index
Simpson指数
Simpson index
覆盖率
Coverage rate/%
幼龄林 CB 12 392.89±787.99Aa 16 061.78±811.45Aa 6.83±0.25Aa 0.009±0.006Aa 95.2±0.2
Young forest CM 11 206.27±703.78Aa 14 224.82±658.01Aa 6.71±0.25Aa 0.019±0.016Aa 95.4±0.6
CZ 11 500.61±1 359.15Aa 14 665.79±2 027.32Aa 6.75±0.32Aa 0.010±0.006Aa 96.1±0.6
中龄林 CB 12 054.71±836.34Aa 15 794.00±1 003.14Aab 6.82±0.04Aa 0.005±0.001Ba 95.3±0.5
Medium age forest CM 11 236.02±241.19Aa 14 598.59±244.92Ab 6.79±0.11Aa 0.006±0.002Ba 96.0±0.5
CZ 12 959.92±1 820.50Aa 17 121.86±1 870.46Aa 6.85±0.33Aa 0.006±0.003Aa 95.2±0.6
成熟林 CB 10 798.72±698.02Aa 13 972.42±595.01Aa 6.63±0.23Aa 0.007±0.003Ba 96.0±0.6
Mature forest CM 11 376.50±1 116.75Aa 14 863.89±1 829.79Aa 6.86±0.24Aa 0.005±0.003Ba 95.4±0.9
CZ 11 641.87±48.61Aa 15 029.07±496.26Aa 6.74±0.11Aa 0.009±0.006Aa 95.9±0.6
注:同列数据后相同字母表示差异不显著;小写字母表示同一发育阶段不同处理差异显著(P<0.05);大写字母表示同一处理不同发育阶段差异显著(P<0.05)。Note: the same letter in the same column indicates no significant difference; different lowercase letters indicate significant differences among different treatments in the same plantation stage (P<0.05); and different capital letters indicate significant differences among different plantation stages with the same treatment (P<0.05).
2.3 生物炭对杉木人工林土壤细菌物种组成的影响 2.3.1 土壤细菌门水平物种分析

通过聚类分析后,将土壤细菌种类在门分类水平上进行统计,其中至少有一个处理的丰度在2%以上的主要有6种,如表 5所示,分别为泉古菌门(Crenarchaeota)、酸杆菌门(Acidobacteria)、放线菌门(Actinobacteria)、绿弯菌门(Chloroflexi)、变形菌门(Proteobacteria)和疣微菌门(Verrucomicrobia)。6种细菌门累计丰度均在87%以上,能够较好地代表土壤中主要细菌门丰度的变化。酸杆菌门与变形菌门细菌是土壤中细菌丰度最高的两种细菌门,酸杆菌门丰度在不同发育阶段和不同处理间均无显著差异,除中龄林外,在各发育不同处理间整体表现出施炭处理的相对丰度低于不施炭处理。变形菌门在各阶段的不同处理间无显著差异,但在同一处理中的不同发育阶段间存在显著差异。不施炭处理时,幼龄林、中龄林与成熟林间变形菌门相对丰度存在显著差异,具体表现为幼龄林>中龄林>成熟林;木炭处理和竹炭处理后变形菌门相对丰度在不同发育阶段也存在显著差异,表现为幼龄林>成熟林>中龄林,说明施炭处理对中龄林土壤中变形菌门相对丰度影响不同于幼龄林和成熟林,且施炭处理对变形菌门丰度影响在幼龄林中效果最显著。施炭处理对土壤中绿弯菌门相对丰度有抑制作用,在幼龄林和中龄林的不同处理间绿弯菌门相对丰度无明显差异;在成熟林中,施炭处理与不施炭处理间绿弯菌门丰度存在显著差异,木炭处理与竹炭处理分别比对照低58.34%和54.31%,说明竹炭处理对绿弯菌门相对丰度影响高于木炭处理及不施炭处理。泉古菌门、放线菌门和疣微菌门在不同发育阶段和不同处理间均无明显差异。P/A值是变形菌门与酸杆菌门的比值,变形菌门与酸杆菌门作为土壤细菌总数量中所占丰度超过70%的细菌门,两者之间的比值在一定程度上表示土壤的肥力程度,一般情况下P/A数值越低,代表土壤肥力越高[15]。在杉木人工林幼龄林和成熟林中,施炭处理的P/A值均高于不施炭处理;在中龄林中,施炭处理与对不施炭处理的P/A值无显著差异。说明施炭处理对杉木人工林幼龄林和成熟林土壤肥力有促进作用,而对中龄林无明显影响。

表 5 生物炭处理后杉木人工林土壤细菌优势门丰度 Table 5 The abundance of soil bacteria superiority phylum after biochar treatment in Chinese fir plantation
发育阶段
Plantation stage
处理方式
Treatment
土壤细菌类群丰度Abundance/% P/A 累计丰度
Cumulative abundance/%
酸杆菌门
Acidobacteria
放线菌门
Actinobacteria
绿弯菌门
Chloroflexi
变形菌门
Proteobacteria
疣微菌门
Verrucomicrobia
泉古菌门
Crenarchaeota
幼龄林 CB 33.98±12.1Aa 7.02±2.8Aa 6.52±3.2Aa 41.44±14.6Aa 1.86±0.7Aa 0.73±0.003Aa 1.42±0.51Aa 92
Young CM 31.51±6.1Aa 5.23±1.0Aa 5.04±2.1Aa 46.29±6.1Aa 2.38±1.3Aa 0.22±1.0Aa 1.53±0.29Aa 91
forest CZ 31.25±12.7Aa 6.72±3.3Aa 4.52±4.1Aa 45.18±16.1Aa 1.51±1.3Aa 0.85±1.0Aa 1.79±0.87Aa 91
中龄林 CB 40.90±8.2Aa 6.40±1.9Aa 6.59±1.7Aa 31.03±9.7ABa 0.71±0.4Aa 2.62±1.8Aa 0.81±0.22Aa 88
Medium CM 43.52±8.3Aa 5.61±2.1Aa 6.28±0.3Aa 27.88±7.1Ba 1.80±0.1Aa 1.85±1.9Aa 0.67±0.15Aa 87
age forest CZ 43.16±1.5Aa 4.91±1.0Aa 8.03±2.1Aa 27.08±3.4Ba 1.96±1.5Aa 1.68±1.0Aa 0.63±0.05Ba 87
成熟林 CB 47.11±6.6Aa 5.17±0.7Aa 9.17±2.1Aa 23.05±2.7Ba 2.17±0.9Aa 1.95±1.8Aa 0.50±0.06Aa 89
Mature CM 42.65±6.6Aa 4.62±0.9Aa 3.82±2.1Ab 35.32±4.8ABa 1.86±0.4Aa 1.76±0.9Aa 0.85±0.12Aa 90
forest CZ 37.69±2.7Aa 5.30±0.4Aa 4.19±2.0Aab 39.33±0.8ABa 1.39±0.4Aa 1.42±0.5Aa 1.05±0.04ABa 89
注:同列数据后相同字母表示差异不显著;小写字母表示同一发育阶段不同处理差异显著(P<0.05);大写字母表示同一处理不同发育阶段差异显著(P<0.05)。Note: the same letter in the same column indicates no significant difference; different lowercase letters indicate significant differences among different treatments in the same plantation stage (P<0.05); and different capital letters indicate significant differences among different plantation stages with the same treatment (P<0.05).
2.3.2 土壤细菌纲水平物种分析

在细菌纲水平上,主要检测到13种主要纲(相对丰度至少在1个样品中大于2%,其余的归为其他),其中有9种在各处理及各龄林中均被检测到,分别为酸杆菌纲(Acidobacteriia)、DA052、索利氏菌纲(Solibacteres)、放线菌纲(Actinobacteria)、纤线杆菌纲(Ktedonobacteria)、α-变形菌纲(α-proteobacteria)、β-变形菌纲(β-proteobacteria)、δ-变形菌纲(δ-proteobacteria)、γ-变形菌纲(γ-proteobacteria)。如图 1所示,在各发育阶段的杉木人工林土壤中,酸杆菌纲、DA052、α-变形菌纲、γ-变形菌纲所占比重最大。在不施炭处理土壤中,酸杆菌纲、DA052的相对丰度在各发育阶段中表现出幼龄林>成熟林>中龄林,α-变形菌纲和γ-变形菌纲表现为幼龄林>中龄林>成熟林。在幼龄林中,施炭处理对α-变形菌纲、γ-变形菌纲、索利氏菌纲的相对丰度有促进作用;对DA052纲、放线菌纲、纤线杆菌纲、β-变形菌纲有抑制作用。在中龄林中,施木炭处理后酸杆菌纲丰度与对照相比提高了37.39%,其余各纲的丰度与不施炭处理间无显著差异,竹炭处理后酸杆菌纲、DA052和纤线杆菌纲的相对丰度都有提高。成熟林中,木炭处理使酸杆菌纲、DA052、索利氏菌纲、放线菌纲、α-变形菌纲、β-变形菌纲、δ-变形菌纲、γ-变形菌纲比不施炭处理的相对丰度提高;竹炭处理后酸杆菌纲、DA052、放线菌纲和纤线菌纲的相对丰度分别比不施炭处理低;而索利氏菌纲、α-变形菌纲、β-变形菌纲、δ-变形菌纲、γ-变形菌纲则分别比不施炭处理高。在3个发育阶段中不同处理间对土壤细菌丰度的影响不同是由于不同发育阶段土壤基本性质不同造成的。

图 1 不同土壤样品细菌纲水平物种组成 Fig. 1 Community composition of bacteria at the class level in different soil samples
2.4 土壤化学性质与细菌群落结构冗余分析

土壤性质对土壤细菌的群落结构和群落多样性有着重要作用,图 2为土壤性质与门水平和纲水平上土壤细菌的冗余分析, 红色箭头代表土壤性质及化学组分含量,箭头越长代表影响越显著。由图 2可知,在门水平上变形菌门丰度与土壤TP呈负相关与TN和TC呈正相关;绿弯菌门与土壤可溶性氮呈负相关,放线菌门和疣微菌门与土壤pH值和AP、AK、NH4+和pH值呈正相关, 与TK呈负相关。在纲水平上,DA052与纤线杆菌纲与NO3-呈现正相关,与DON呈负相关;酸杆菌纲,放线菌纲、β-变形菌纲、γ-变形菌纲与pH值、NH4+呈正相关,与TK呈负相关;α-变形菌纲、δ-变形菌纲、索利氏菌纲与AP、TC呈正相关,与TP呈负相关。Forward Selection结果显示在土壤细菌门水平上,TP对细菌的群落分布影响最为显著(F=27.635,P=0.003),其次是TC(F=26.294,P=0.002);在细菌纲水平上,对细菌的群落分布影响最显著的土壤因子是TP(F=13.995,P=0.002)和TC(F=11.255,P=0.003)。

注:Ktedon代表纤线杆菌属;Acido代表酸杆菌纲;Soli代表索利氏菌纲;Actin代表放线菌纲;Alpha代表α-变形菌纲;Beta代表β-变形菌纲;Delta代表δ-变形菌纲;Gamma代表γ-变形菌纲。 Note: Ktedon indicates Ktedonobacteria; Acido indicates Acidobacteriia; Soli indicates Solibacteres; Alpha indicates α-proteobacteria; Beta indicates β-proteobacteria; Delta indicates δ-proteobacteria; Gamma indicates γ-proteobacteria. 图 2 土壤化学性质与细菌群落结构冗余分析 Fig. 2 RDA between the abundance of bacteria and the chemical properties of soil
3 讨论与小结

生物炭富含C、N、P、K等多种营养元素,本试验结果表明, 施加生物炭使土壤中C、N、P等元素的含量以及pH值增加,这与陈义轩等[16]的试验结果一致,其原因是生物炭本身的TC、TN、TP含量较高,且生物炭呈碱性,施用生物炭会增高土壤pH值以及土壤有机碳和TN、TP含量[17]。本研究中NH4+和NO3-含量与土壤细菌群落组成显著相关,是因为生物炭表面积巨大,表面有丰富的正负电荷,具有很强的吸附力,因此能吸附固定一些矿物和有机质,从而影响土壤养分和元素含量,且生物炭对土壤中的NH4+和NO3-有吸附固定的作用[18]。在本研究中,土壤pH值与土壤TC等土壤性质与土壤细菌群落组成呈显著的相关性,说明生物炭通过影响土壤性质从而对土壤细菌群落组成和丰度造成影响。

土壤细菌群落组成也与土壤性质相关,目前大多数研究都表明生物炭对土壤细菌类群丰度存在影响。本研究结果表明,生物炭会使土壤pH值和一些土壤元素含量发生变化,进而影响土壤细菌群落组成。在幼龄林和成熟林中,施用生物炭后酸杆菌门细菌丰度较不施炭处理低,与姚钦[19]的研究结果一致,说明土壤施用生物炭后,对酸杆菌门群落丰度有一定的抑制作用,其原因是酸杆菌门细菌更适合在低pH值土壤环境中生长[20];在两个不同生物炭的处理间,酸杆菌门细菌丰度都表现出上升的趋势,与施炭后pH值变化趋势一致,而木炭pH值较竹炭低,因此木炭对酸杆菌门细菌抑制作用比竹炭弱[21];在施用生物炭后变形菌门相对丰度显著提高,说明施加生物炭对变形菌门群落丰度有促进作用,这与大部分研究结果一致,其原因可能是生物炭孔隙大,且具有多孔性,有利于微生物的生长和繁殖,进而增加细菌丰度,且其相对丰度与土壤TC、TN呈正相关,其原因是变形菌门大多数菌群都具有固氮的作用[22]。施用生物炭后,绿弯菌门细菌丰度显著降低,生物炭对土壤中绿弯菌门细菌丰度有抑制作用,与一些研究结果不同,其原因可能是有些木质原料制备的生物炭可利用性营养物质较低, 氮素不足而不能支撑细菌生长代谢过程, 从而降低细菌相对丰度[23]。在中龄林中,施炭处理后各细菌门丰度的变化趋势与成熟林和幼龄林均表现出相反的趋势,说明生物炭对不同发育阶段土壤细菌丰度的影响不同,其原因可能是中龄林的土壤TC含量低于幼龄林和成熟林,从而进一步影响土壤本底理化性质以及微生物群落,而造成这种本底差异的原因可能是由于中龄林阶段处于杆材期,林木竞争力大,天然整枝强度大,凋落物较多,进一步影响土壤理化性质与土壤微生物群落组成[24]。本研究与目前已有许多研究都表明不同来源生物炭对不同土壤细菌群落组成有不同影响[25-26]。在本研究中,木炭和竹炭对土壤中一些细菌纲丰度的影响不同,如木炭的添加促进了酸杆菌纲的细菌丰度,而竹炭的添加却抑制了酸杆菌纲细菌的相对丰度,其原因可能是因为施加的生物炭具有不同的理化性质并对不同土壤细菌的影响不同[16]

不同生物炭对不同发育阶段土壤细菌多样性影响不同,主要表现为细菌群落的丰富度和多样性,影响程度也与生物炭种类密切相关, 因此会提高土壤中细菌的丰度。有研究表明施用生物炭对土壤微生物多样性无明显影响[27],也有研究认为施用生物炭会使土壤细菌OUT数和细菌丰富度指数(Chao1)提高[28],还有研究表明生物炭会使细菌多样性降低[29]。在本研究中,两种生物炭的施用都对细菌多样性和细菌丰富度没有显著影响,其原因可能是生物炭中的金属离子等无机盐会抑制微生物的生命代谢活动,使得微生物群落丰富度受到影响[30]

由于生物炭自身属性,施用生物炭能明显改善杉木人工林土壤化学性质,使杉木人工林土壤pH值以及土壤C、N、P含量提高,且总体上施用竹炭效果大于木炭;生物炭对不同发育阶段土壤化学性质的影响表现为杉木幼龄林优于中龄林和成熟林;施用生物炭能改变细菌群落丰度,使杉木人工林土壤中酸杆菌门、放线菌门、绿弯菌门和泉古菌门的细菌丰度下降,变形菌门和疣微菌门的细菌丰度提高;竹炭对土壤细菌丰度的影响高于木炭的影响,且土壤化学性质与土壤细菌群落间存在显著相关性,泉古菌门与土壤TP呈负相关与TN和TC呈正相关;绿弯菌门与DON呈负相关,放线菌门和疣微菌门与土壤pH值和AP、AK、NH4+呈正相关, 与TK呈负相关,其中TP和TC对土壤细菌群落分布影响最大。

综上所述,生物炭通过改变土壤理化性质进而影响土壤细菌群落分布,且施用竹炭对杉木土壤理化性质以及土壤细菌影响更明显,对土壤质量改善作用更明显。

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