森林与环境学报  2016, Vol. 36 Issue (01): 67-72   PDF    
http://dx.doi.org/10.13324/j.cnki.jfcf.2016.01.011
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唐淑玲, 徐江宇, 江鸣涛, 林仙淋, 卓孝康, 彭东辉
TANG Shuling, XU Jiangyu, JIANG Mingtao, LIN Xianlin, ZHUO Xiaokang, PENG Donghui
毛稔叶片离体培养及植株再生研究
Plant regeneration in vitro from leaves of Melastoma sanguineum
森林与环境学报, 2016, 36(01): 67-72
Journal of Forest and Environment, 2016, 36(01): 67-72.
http://dx.doi.org/10.13324/j.cnki.jfcf.2016.01.011

文章历史

收稿日期: 2015-05-13
修订日期: 2015-07-07
毛稔叶片离体培养及植株再生研究
唐淑玲, 徐江宇, 江鸣涛, 林仙淋, 卓孝康, 彭东辉     
福建农林大学园林学院, 福建 福州 350002
摘要: 以毛稔叶片作为外植体,MS为基本培养基,研究不同种类激素的浓度配比对毛稔叶片离体再生的影响。结果表明,黑暗条件与光照12 h·d-1有利于毛稔愈伤组织形成,毛稔叶片愈伤组织最佳诱导培养基为MS+0.5 mg·L-1 6-BA+2.0 mg·L-1 2,4-D+0.1 mg·L-1 NAA,光照12 h·d-1诱导40 d,愈伤诱导率为96%;叶片形成的愈伤组织分化率极低,分化率随6-BA浓度升高而升高,愈伤组织分化最适培养基为MS+0.1 mg·L-1 NAA+2.0 mg·L-1 6-BA,分化率为10%;最适生根培养基为1/2 MS+0.1 mg·L-1 NAA,生根率为88.89%。
关键词: 毛稔    离体培养    愈伤组织    再生植株    
Plant regeneration in vitro from leaves of Melastoma sanguineum
TANG Shuling, XU Jiangyu, JIANG Mingtao, LIN Xianlin, ZHUO Xiaokang, PENG Donghui     
College of Landscape Architecture, Fujian Agriculture and Forestry University, Fuzhou, Fujian 350002, China
Abstract: The tissue culture and plant regeneration of Melastoma sanguineum was studied by using leaves as material. The explants were cultivated in MS medium added with different concentrations of hormones to examine their effects on regeneration. The results indicated as follows. The dark condition was benefit to callus induction as well as 12 h·d-1 light condition. The optimum medium for callus induction was MS+0.5 mg·L-1 6-BA+2.0 mg·L-1 2,4-D+0.1 mg·L-1 NAA with the induction rate of 96%, which inducted 40 days under 12 h·d-1 light condition. The differentiation rate increased as the concentration of 6-BA increased. The best medium for differentiation was MS+0.1 mg·L-1 NAA+2.0 mg·L-1 6-BA with a low differentiation rate of 10%. The best rooting medium was 1/2 MS+0.1 mg·L-1 NAA with the rooting rate of 88.89%.
Key words: Melastoma sanguineum Sims.    in vitro culture    callus    plant regeneration    

毛稔(Melastoma sanguineum Sims.)是野牡丹科(Melastomataceae)野牡丹属(Melastoma)的一种常绿大灌木[1],其植株挺拔,花大色艳,是优良的园林观赏植物,可作庭园孤植树或行道树,观赏效果良好[2, 3, 4]。野牡丹属植物种子极小,发芽率不高,发芽周期多在1个月左右[5]。目前,对毛稔的研究主要集中在药理作用[6]、无性繁殖[2, 5]及种间杂交[7]等方面,而组织培养快速繁殖技术研究相对较少,仅何长信等[8]利用毛稔种子进行组织培养,发现6-苄氨基腺嘌呤(6-benzylaminopurine,6-BA)对毛稔不定芽繁殖有显著影响。采用离体组织培养技术建立毛稔再生体系,可以缩短繁殖周期,提高繁殖系数及整齐度。本课题组对毛稔叶片离体培养与植株再生进行试验,旨在建立高效、优良的毛稔繁殖体系并探索适合毛稔叶片离体培养的优化条件,为其快速繁殖提供参考,对推动毛稔的广泛应用有重要意义。

1 材料与方法 1.1 试验材料

外植体来自福建农林大学园林学院组培实验室的毛稔无菌苗。培养温度为(25±1) ℃,光源为日光灯,光照强度1 800-2 500 lx。

1.2 试验方法 1.2.1 叶片愈伤组织诱导

试验采用L9(34)正交设计。选取长势一致的顶生新叶,切成0.5-1 cm2大小,叶背朝上接种于添加不同浓度6-BA、2,4-二氯苯氧乙酸(2,4-dichlorophenoxyacetic acid,2,4-D)、萘乙酸(1-naphthaleneacetic acid,NAA)(表 1)的MS培养基(蔗糖30 g·L-1,琼脂6.5 g·L-1,pH=5.8)中,对照组(CK)为不添加任何激素的MS培养基。将9个处理及对照组放于3个不同光照(0、6、12 h·d-1)条件下进行培养,20 d后全部转移至同一光照条件下(12 h·d-1)。每瓶接种外植体5个,每个处理10瓶,2个重复。40 d后统计愈伤组织的诱导率。

表 1 愈伤组织诱导L9(34)正交设计 Table 1 Orthogonal experiment design of callus induction
水平Levels 试验因素Factors
6-BA浓度Concentration of 6-BA2,4-D浓度Concentration of 2,4-DNAA浓度Concentration of NAA
mg·L-1mg·L-1mg·L-1
10.11.00.1
20.51.50.5
31.02.01.0
1.2.2 愈伤组织分化

利用 1.2.1 最佳诱导培养基诱导出的愈伤组织作为接种材料,将生长良好的愈伤组织切成0.5 cm2大小的小块,转接至以MS培养基(蔗糖30 g·L-1,琼脂6.5 g·L-1,pH=5.8)为基本培养基、添加不同浓度6-BA、NAA的分化培养基中,每瓶接种5个,每个处理6瓶,2次重复。30 d后统计愈伤组织分化率,筛选出最佳的分化培养基。愈伤组织分化培养基激素配比见表 2

表 2 愈伤组织分化培养基激素配比 Table 2 Hormones design of the mediums on callus differentiation
编号Number6-BA浓度Concentration of 6-BANAA浓度Concentration of NAA编号Number6-BA浓度Concentration of 6-BANAA浓度Concentration of NAA
mg·L-1mg·L-1mg·L-1mg·L-1
10.50.161.00.5
20.50.272.00.1
30.50.582.00.2
41.00.192.00.5
51.00.2
1.2.3 不定芽生根

利用 1.2.2 最佳分化培养基分化出的不定芽作为接种材料,在原培养基上继代增殖15 d后,挑选长势一致的不定芽接种在添加不同浓度NAA的MS、1/2 MS培养基(蔗糖30 g·L-1,琼脂6.5 g·L-1,pH=5.8)中进行生根培养。每瓶接种3个茎段,每个处理15瓶,2次重复。培养40 d后,统计生根率,筛选出最佳的生根培养基。生根培养基见表 3

表 3 生根培养基 Table 3 The mediums of rooting
编号Number基本培养基Basal mediumNAA浓度Concentration of NAA编号Number基本培养基Basal mediumNAA浓度Concentration of NAA
mg·L-1mg·L-1
1MS0.141/2 MS0.1
2MS0.251/2 MS0.2
3MS0.561/2 MS0.5
1.2.4 炼苗与移栽

将组培苗移出培养室,每隔3 d将瓶口逐步打开,早晚喷雾,保证一定湿度。炼苗9 d后,从培养瓶取出幼苗,用清水清洗幼苗并去掉部分须根,移栽到1/4黄心土+1/4沙土+1/2泥炭土(体积比)经过高压灭菌的基质中,放在温室大棚中,每天浇水1次,30 d后统计移栽成活率。

1.3 数据统计分析

参考伍成厚等[9]的方法计算愈伤组织诱导率和愈伤组织分化率,参考段超[10]的方法计算生根率。用Excel软件进行图表分析,用SPSS软件对试验数据进行显著性分析和多重比较。

2 结果与分析 2.1 毛稔叶片愈伤组织诱导

毛稔叶片在添加不同激素的培养基培养5 d后叶片开始反卷,10 d后由边缘切口处开始往叶片中部形成小球状愈伤组织;不添加任何激素的MS培养基中的叶片无法形成愈伤,最后干枯、死亡。通过观察发现,黄白色愈伤组织结构较松散,在后期生长中容易出现玻璃化,黄绿色的愈伤组织结构致密。个别愈伤组织在32 d时出现褐化,无法分化出不定芽。同时,个别愈伤组织出现红色斑点,且不断扩大,这类愈伤组织无法分化出不定芽,这种现象在野牡丹科植物组织培养中未见报道。

2.1.1 不同光照条件对愈伤组织诱导的影响

光照条件下毛稔叶片愈伤组织开始形成的时间为10 d,黑暗条件下叶片接种15 d后开始形成愈伤组织。黑暗条件下形成的愈伤组织结构松散,后期生长状况较好,颜色为黄绿、黄绿偏白,光照条件形成的愈伤组织颜色多为黄绿色,但容易出现褐化。不同光照条件下愈伤组织诱导率差别较大,黑暗条件平均诱导率为68.44%,光照6 h·d-1的平均诱导率为54.67%,光照12 h·d-1的平均诱导率为77.0%。第1、2、3、4组在3种光照条件下诱导率差别不大,第4组在黑暗和6 h·d-1光照条件下诱导率均最高(表 4)。

表 4 毛稔叶片愈伤组织诱导情况1) Table 4 The callus induction of M.sanguineum
光照时间Illumination time/(h·d-1)试验号Number处理数Treatment number愈伤组织诱导率Induction rate/%愈伤生长情况Callus growth condition评价Evaluation
0110048±2.83黄绿色,松散。Yellow-green, friable.+
210069±4.24黄绿偏白,个别愈伤上有红点,松散。Yellow-green with white, reddened individually, friable.+
310059±1.41愈伤面积较小,黄白,松散。Smaller areas, yellow-white, friable.++
410093±7.07黄绿偏白,个别有红点,松散。Yellow-green with white, reddened individually, friable.+++
510077±4.24黄绿色,松散。Yellow-green, friable.+++
610068±8.49黄白,致密。Yellow-white, compact.+++
710058±2.83仅叶片边缘形成白色愈伤,个别愈伤上有红点,致密。White callus formed on the margin, reddened individually, compact.++
810076±5.66仅叶片边缘形成少量黄白色愈伤,松散。A few yellow-white callus formed on the margin, friable.+++
910068±2.83仅叶片边缘形成少量黄白色愈伤,松散。A few yellow-white callus formed on themargin, friable.++
6110048±5.66叶片边缘形成愈伤,黄绿色,致密。Yellow-green callus formed on the border of leaves, compact.++
210073±4.24叶片边缘形成愈伤,黄绿偏白,松散。Yellow-green with white callus formed on the margin, friable.+++
310044±5.66叶片边缘形成少量黄褐色愈伤,较差,致密。A few tawny callus formed on the margin, compact.+
410089±4.24叶片边缘形成少量愈伤,黄绿偏白,个别出现球状白色愈伤,致密。A few yellow-green with white callus formed on the margin, compact.+++
510034±2.83黄绿偏黄,致密Yellow, compact.+
610043±7.07黄褐,长势较差,3个愈伤分化出不定芽,松散。Tawny friable callus with bad growth, adventitious buds induced from three callus.++
710046±0.00黄绿色,轻微玻璃化,个别愈伤红色,致密。Yellow-green, reddened individually, compact, a little vitrification.++
810053±4.24黄白偏黄,松散。Yellow-white, friable.++
910062±2.83黄白,松散。Yellow-white, friable.+++
12110056±0.00愈伤黄绿色,致密。Yellow-green, compact.+
210080±2.83愈伤黄绿色偏黄,致密。Yellow-green, compact.++
310055±4.24黄绿,少数玻璃化,松散。Yellow-green, friable, a little vitrification.+
410092±2.83形成的愈伤面积较大,黄绿偏白,个别愈伤上有红点,松散。Yellow-green with white, reddened individually, friable.++
510065±1.41黄绿偏黄,个别几个褐化,致密。Yellow-green, browned individually, compact.++
610096±5.66黄绿,个别愈伤上有红点,致密。Yellow-green, reddened individually, compact.+++
710078±2.83黄绿偏白,松散。Yellow-green with white, friable.+++
810084±0.00黄绿,个别偏白,2个愈伤分化出不定芽,致密。Yellow-green and some with white, compact, adventitious buds induced from two callus.+++
910087±4.24黄白,松散。Yellow-white, friable.++
1)+++表示好;++表示一般;+表示差。Notes: +++ good, ++ general, + bad.

用LSD法多重比较光照时间对毛稔叶片愈伤组织诱导率的影响,结果表明,6 h·d-1与12 h·d-1差异极显著(Sig.=0.000 < 0.01),与0 h·d-1差异显著(Sig.=0.020 < 0.05),0 h·d-1与12 h·d-1差异不显著(Sig.=0.075>0.05)。0与12 h·d-1条件下均有利于毛稔愈伤组织形成,最差的为6 h·d-1

2.1.2 不同激素组合对愈伤组织诱导的影响

对光照12 h·d-1的9个正交处理组进行极差分析,第4、6组愈伤诱导率与其他各组差异显著,第6组(0.5 mg·L-1 6-BA+2.0 mg·L-1 2,4-D+0.1 mg·L-1 NAA)愈伤诱导率最高,平均为96%,第3组(0.1 mg·L-1 6-BA+2.0 mg·L-1 2,4-D+1.0 mg·L-1 NAA)诱导率最低,平均为55%(表 5)。比较R值显示,3种不同激素对愈伤组织诱导影响的主次关系为6-BA>NAA>2,4-D。通过极差分析得出,在此光照条件下,最适宜毛稔叶片愈伤组织诱导的激素组合为0.5 mg·L-1 6-BA+2.0 mg·L-1 2,4-D+0.5 mg·L-1 NAA。通过组间效应检验,6-BA的Sig.=0.007 < 0.01,2,4-D的Sig.=0.443>0.05,NAA的Sig.=0.017 < 0.05,6-BA对毛稔叶片愈伤组织诱导率的影响极显著,NAA显著,2,4-D不显著。

表 5 不同激素对毛稔叶片愈伤组织诱导的影响1) Table 5 The effects of different concentration of hormones on callus induction
试验号Number6-BA浓度Concentration of 6-BA/(mg·L-1)2,4-D浓度Concentration of 2,4-D/(mg·L-1)NAA浓度Concentration of NAA/(mg·L-1)空列Blank愈伤组织诱导率Induction rate/%反正弦平方根Arcsine square-root
1111156±0.00ABa48.446 05
2122280±2.83BCDbcd63.434 95
3133355±4.24Aa47.869 59
4212392±2.83DEde73.570 06
5223165±1.41ABCab53.728 80
6231296±5.66Ee78.463 04
7313278±2.83ABCDbc62.027 90
8321384±0.00CDcd66.421 82
9332187±4.24CDEcd68.865 71
K1159.750 60184.044 00193.330 90171.040 60--
K2205.761 90183.585 60205.870 70203.925 90--
K3197.315 40195.198 30163.626 30187.861 50--
k153.250 2061.348 0064.443 6457.013 52--
k268.587 3061.195 1968.623 5767.975 30--
k365.771 8165.066 1154.542 1062.620 49--
R15.337 113.870 9214.081 4810.961 78--
1)同列数据后不同大写字母表示差异达0.01显著水平,同列数据后不同小写字母表示差异达0.05显著水平。Notes: different capital and small letters indicate P < 0.01 and P < 0.05.

用LSD法多重比较6-BA、NAA对毛稔叶片愈伤组织诱导率的影响。不同浓度水平的多重比较表明,0.1 mg·L-16-BA处理与0.5 mg·L-16-BA处理的差异极显著(Sig.=0.003 < 0.01),0.1 mg·L-16-BA处理与1.0 mg·L-16-BA处理的差异显著(Sig.=0.014 < 0.05),0.5 mg·L-1与1.0 mg·L-16-BA处理差异不显著(Sig.=0.381>0.05)。6-BA浓度为0.5、1.0 mg·L-1时均有利于毛稔叶片愈伤组织形成,0.1 mg·L-1效果较差。0.5 mg·L-1NAA处理与1.0 mg·L-1NAA处理差异极显著(Sig.=0.007 < 0.01),0.1 mg·L-1与1.0 mg·L-1差异显著(Sig.=0.026 < 0.05),0.1 mg·L-1与0.5 mg·L-1差异不显著(Sig.=0.476>0.05),NAA浓度为0.1、0.5 mg·L-1时可促进毛稔愈伤组织形成。

2.2 毛稔愈伤组织分化

在培养过程中发现,转接至分化培养基的愈伤组织第1周无明显变化,之后缓慢向四周进行增殖,结构逐渐变松散,15 d后开始分化出不定芽,芽体细弱。无法分化的愈伤组织逐渐褐化、死亡。

分化培养终期有6个处理组的愈伤组织已经分化出不定芽,但分化率不高(表 6),第7组培养基(MS+2.0 mg·L-1 6-BA+0.1 mg·L-1 NAA)分化不定芽最多,平均分化率10%,其次为第8组,即MS+2.0 mg·L-1 6-BA+0.2 mg·L-1 NAA,平均分化率6.67%,1、2、6组均未分化。通过主体间效应检验发现,6-BA对分化率有显著影响(Sig.=0.042 < 0.05)。用LSD法多重比较不同浓度水平6-BA对毛稔愈伤组织分化的影响,结果表明,6-BA浓度为2.0 mg·L-1时与0.5 、1.0 mg·L-1时差异显著(Sig.=0.012 < 0.05,Sig.=0.043 < 0.05),0.5 mg·L-1与1.0 mg·L-1差异不显著(Sig.=0.515>0.05)。

表 6 不同浓度6-BA和NAA配比对毛稔愈伤组织分化的影响1) Table 6 Effects of different combination of 6-BA with NAA on callus differentiation
编号Number处理数Treatment number分化率Differentiation rate/%愈伤生长状况Callus growth condition
1600.00±0.000a黄绿色,结构松散。Yellow-green, friable.
2600.00±0.000a黄绿色,结构致密。Yellow-green, compact.
3601.67±2.360ab黄绿色,结构致密。Yellow-green, compact.
4603.33±4.710ab黄绿色,多数愈伤结构松散。Yellow-green, friable.
5601.67±2.360ab黄绿色,结构致密。Yellow-green, compact.
6600.00±0.000a黄绿色,结构致密。Yellow-green, compact.
76010.00±9.430b黄绿偏白,结构松散。Yellow-green with white, friable.
8606.67±0.000ab黄绿偏白,结构松散,个别玻璃化。Yellow-green with white, friable, some vitrification.
9601.67±2.360ab黄绿偏白,结构松散。Yellow-green with white, friable.
1)同列数据后不同小写字母表示差异达0.05显著水平。Note: different small letters stand for P < 0.05.
2.3 毛稔不定芽生根培养

不定芽接种3 d后,基部伤口出现小团乳白色愈伤组织,6 d后第4组开始长出不定根,7 d后第2组开始长出不定根,其余各组从第8 d开始陆续长出不定根,根尖红色,随着根继续生长,红色变淡但不会消失。6组生根培养基的生根率相差不大(表 7)。MS+0.5 mg·L-1 NAA的生根率最低(70.56%),第4组生根率、生根数、平均根长均达到最大,生根率为88.89%。毛稔生根的最佳配方为处理4:1/2 MS+0.1 mg·L-1 NAA 。

表 7 毛稔生根培养结果1) Table 7 The root culture of M. sanguineum
编号Number基本培养基Basal mediumNAA浓度Concentration of NAA(mg·L-1)处理数Treatment number生根率Rooting rate%生根数Root numbersPieces平均根长Average root length/cm植株长势Growth condition长势评价Evaluation
1MS0.19080.00±6.28ABab62.1株高3.5 cm,新生芽细弱。3.5 cm tall, weak sprouts.+
2MS0.29085.55±1.58ABbc51.7株高2-2.5 cm。2-2.5 cm tall.++
3MS0.59070.56±0.78Aa52.4株高1.5-2.0 cm,新生芽强壮。1.5-2.0 cm tall, strong sprouts.++
41/2 MS0.19088.89±3.14Bc73.3株高2.5-2.8 cm,个别新生芽细弱。2.5-2.8 cm tall, some weak sprouts.+++
51/2 MS0.29083.34±4.72ABbc53.1植株长势差别大,株高2-2.5 cm。2-2.5 cm tall.+
61/2 MS0.59084.44±0.00ABbc62.7株高2.5-2.8 cm,新生芽强壮。2.5-2.8 cm tall, strong sprouts.+
1)同列数据后不同大写字母表示差异达0.01显著水平,同列数据后不同小写字母表示差异达0.05显著水平。+++表示好;++表示一般;+表示差。Notes: different capital and small letters stand for P < 0.01 and P < 0.05. +++ good, ++ general, + bad.
2.4 炼苗与移栽

炼苗后组培苗成活率达92%,移栽到1/4黄心土+1/4沙土+1/2泥炭土的基质中,30 d后移栽成活率达89.13%。

3 结论与讨论

研究表明,黑暗培养有利于诱导愈伤组织[11, 12]。马国华等[13]以多花野牡丹(M. affine D. Don.)和野牡丹(M. candidum D. Don.)的嫩叶为外植体,黑暗培养2周后形成黄绿色的愈伤组织,但无法观察到芽的形成。本课题组通过比较3种不同光照条件的愈伤组织诱导率发现,黑暗和12 h·d-1光照均能有效地诱导毛稔愈伤组织的形成,但12 h·d-1光照下愈伤容易褐化,黑暗条件下形成的愈伤后期生长较好。在毛稔叶片愈伤组织诱导中,可以采用一定时间的黑暗培养。

MS培养基对多花野牡丹、地菍(M. dodecandrum Lour.)、毛稔均适合[14]。分裂素及生长素影响植物组织培养方向,分裂素促进细胞分化与不定芽的发生,常用的分裂素为6-BA,浓度0.5-3.0 mg·L-1,生长素主要促进细胞生长、伸长及根的发生,生长素多用0.05-1.0 mg·L-1 NAA[15, 16]。通过正交试验发现,6-BA对毛稔叶片愈伤组织形成的影响最大,其次是NAA,2,4-D对其影响最小,12 h·d-1光照下适宜愈伤组织诱导的培养基为0.5 mg·L-1 6-BA+2.0 mg·L-1 2,4-D+0.1 mg·L-1 NAA,这与伍成厚等[9]的研究结果相似。出现红色愈伤组织的现象在野牡丹属植物组织培养中未见报道,这可能与激素浓度配比或光照时间有关。

植物愈伤组织分化受基因型、外植体的影响,常用的外植体为茎尖、幼嫩茎段,而叶片、花器官分化效果较差[16]。选择合适的培养基、激素、光照、温度等外界因素可以改善分化状况。梁钾贤等[17]发现,光质对甘蔗(Saccharum officinarum L.)愈伤组织分化影响显著,分化效果为红光>白光>蓝光,本试验未对光质进行探究,采用日光灯源。6-BA对毛稔愈伤组织分化有显著影响,分化过程中一定浓度分裂素结合低浓度的生长素才能在实现分化的同时又满足愈伤组织继续生长的需求,试验筛选出适宜毛稔愈伤组织分化的培养基为MS+2.0 mg·L-1 6-BA+0.1 mg·L-1 NAA ,这与胡松梅等[18]、蒋道松等[19]的愈伤组织分化的研究结果较一致,均以较高浓度的6-BA结合低浓度的NAA为最佳激素浓度组合。在毛稔不定芽生根试验中发现,低浓度无机盐可提高生根数,低浓度NAA促进根的发生,不定芽生根的最佳配方为1/2 MS+0.1 mg·L-1 NAA,这与角茎野牡丹(Tibouchina granulose Cogn.)[20]生根试验的结果相似。

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