刀鲚 (Coilia nasus),又名长颌鲚,俗称刀鱼、毛刀鱼,属于鲱形目(Clupeiformes),鳀科(Engraulidae),鲚属(Coilia),为江海洄游性鱼类,主要分布于我国黄渤海和东海一带,凡通海的江河均有分布,以长江下游产量最高。长江刀鲚以肉质细嫩、鲜肥、时令性强而著称,并与长江鲥鱼、 河豚并称 “长江三鲜” [1, 2]。近几年来,由于过度捕捞及生态环境恶化等诸多因素的影响,长江刀鲚资源急剧衰退,产量呈逐年下降趋势、且个体小型化严重,刀鲚在长江中已不能形成优势种群[1]。因此,刀鲚人工全繁殖技术的突破,实现苗种规模化生产,进而推进该鱼的产业化养殖生产,可以促进渔业产业结构的调整[1];同时通过增殖放流,可以保护其渔业资源。
目前,有关刀鲚的繁养技术研究还处于初级阶段[3, 4, 5, 6, 7],近几年,国内许多科研院所纷纷立项开展该相关技术的研究,主要集中于诸如灌江纳苗、长江沿岸拉网捕苗进行养殖试验等,偶有刀鲚池塘繁殖成功的个别报道[1],但未见刀鲚全人工繁殖试验报道;同时有关刀鲚胚胎发育的研究报道仅见朱栋良[3]和XU等[7]分别对天然繁殖和人工繁殖所得的受精卵作过简要观察,但全人工繁殖所得的刀鲚受精卵也有一定特殊性。上海市水产研究所奉贤基地采用2011年室内集约化人工繁育、经过2年仿生态养殖的子一代刀鲚作为亲本,于2013年5-6月进行挑选和催产,获得该鱼全人工繁育成功。本文就刀鲚的全人工繁殖试验进行总结,并选择其中一批优质受精卵进行对胚胎发育时序和特点的系统观察研究,以期为刀鲚全人工繁育和养殖生产以及发育进化研究提供科学依据。
1 材料与方法 1.1 亲鱼培育采用上海市水产研究所奉贤基地于2011年用人工养成的刀鲚亲本经过室内集约化人工繁育获得且经过生态养成的2龄子一代刀鲚成鱼作为人工繁殖的后备亲本,亲本采用模拟自然生态洄游培育模式:在5-12月进行外塘养殖,放养密度为200尾/667 m2,每667 m2投放3 kg小规格脊尾白虾,接种糠虾;每日投饵1次,饵料为虾用颗粒饲料,主要投喂给脊尾白虾摄食,每月换水一次,采用当地河口半咸水(盐度5~8);到11-12月进行拉网移池,及时清除野杂鱼和敌害生物,此时池塘用水盐度提高到10~15,池塘内小规格脊尾白虾投放量提高到每667 m2投放6 kg,其他管理措施同前;到次年2-3月,池塘内水逐渐换成淡水;到3-5月,定期进行拉网锻炼,一般要锻炼2~3次。
1.2 亲鱼挑选、催产、产卵及孵化5月中上旬,水温20~25 ℃时,亲本雌鱼腹部陆续膨大,此时即可挑选催产用亲本,挑选亲本标准:雌鱼后腹部膨大且柔软,泄殖孔微红;雄鱼,轻压泄殖孔有少量精液流出,且遇水不散;挑选好的亲本采用圆桶运输放入催产池;整个挑选和运输过程中操作要轻柔不离水;催产池采用10~20 m2的圆型或者方型池子,催产亲本放养密度为1~2尾/m2,遮光调控,连续微充气,一般催产亲鱼雌雄比为2/3~3/4,催产水温为22~24 ℃;采用胸鳍基部注射法注射激素,催产激素为促黄体素释放激素A2(LHRH-A2),将激素溶解于0.9%的生理盐水,现配现用;催产剂量:雌鱼30 μg/kg,雄鱼减半;采用自然受精方式,效应时间为18~33.5 h,派专人观察亲本交配以确定产卵时间,交配时,雄鱼追逐雌鱼,部分鱼会从水面掠过,此后能发现水池中有卵;采用静水充气孵化,水温为23~24 ℃。
1.3 胚胎发育观察取5月27日催产、5月28日产卵受精所得优质的受精卵作为胚胎发育观察的材料,受精后15 min 取部分受精卵(约1 000粒)移至实验室圆形孵化桶内(10 L)单独孵化,密度为100粒/L,孵化桶置于带自动温控的水浴容器,温度控制为23~24 ℃,孵化桶内放置1个气石,并连续微充气;每次随机取样30粒,取样间隔时间分别为:受精后0~2 h内间隔15 min,3~7 h以后间隔30 min,7 h以后间隔1 h;采用Olympus BX-53型号的双目显微镜,Olympus DP26摄影模块CCD以及CellSens Standard图像处理软件对受精卵进行观察、测量及摄影,同时记录胚胎发育的各期典型特征,以50%个体出现新特征作为各发育时期的时序。刀鲚胚胎发育阶段和时期的划分参考文献[8, 9]的方法,并按照刀鲚的特点略作修改。所有数据经SPSS 17.0软件处理,用Mean±SD表示。
2 结果 2.1 催产和孵化2013年分4批催产子一代2龄雌鱼亲本60尾,在22.4~23.8 ℃条件下,经过18~33.5 h的催产效应时间,55尾雌鱼亲本自然交配产卵,催产率为80.0%~95.8%,平均催产率为91.7%,共计产卵32万粒;获得受精卵25.8万粒,受精率为40.0%~85.5%,平均受精率为80.6%;孵化获得22.3万尾的初孵仔鱼,孵化率为65.0%~90.4%,平均孵化率为86.4%(表 1);平均每尾雌鱼产卵5 818粒。
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表 1 刀鲚全人工繁殖情况表 Tab. 1 Data of artificial propagation of Coilia nasus |
成熟卵子浮于水面,卵径为(779.61±33.49)μm(n=10)。卵遇水受精后,卵膜吸水膨胀,受精卵弹性增强,呈球形,卵径为(909.86±24.02)μm (n=20),卵周隙较大且均匀(208.00±58.21)μm (n=10),油球大且单个,直径为(498.27±15.07)μm (n=20)。受精卵均质浮性、无粘性,卵膜薄且透明(图版-1)。
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图版 刀鲚的胚胎发育 1.受精卵; 2.胚盘原基期; 3.胚盘期; 4.2细胞期; 5.4细胞期; 6.8细胞期; 7.16细胞期; 8.32细胞期; 9.64细胞期; 10.多细胞期; 11.囊胚早期; 12.囊胚中期; 13.囊胚晚期; 14.原肠早期; 15.原肠中期; 16.原肠晚期; 17.神经胚期; 18.胚孔封闭期; 19.眼基出现期; 20.肌节出现期; 21.眼囊出现期; 22.尾芽出现期; 23.尾鳍出现期; 24.耳囊出现期; 25.肌肉效应期; 26.晶体出现期; 27.心跳期; 28.耳石出现期; 29.尾颤期; 30.出膜前期; 31.初孵仔鱼。 1.Fertilized egg; 2. Blastodisc rudiment; 3. Blastodisc formation; 4. 2-cell; 5. 4-cell; 6. 8-cell; 7. 16-cell; 8. 32-cell; 9. 64-cell; 10. Multicellular; 11. Early blastula; 12. Mid blastula; 13. Late blastula; 14. Early gastrula; 15. Mid gastrula; 16. Late gastrula; 17. Neurula; 18. Closure of blastopore; 19. Appearance of optic rudiment; 20. Appearance of myomere; 21. Appearance of optic vesicle; 22. Appearance of tail bud; 23. Appearance of tail fin; 24. Appearance of otocyst; 25. Muscular contraction; 26. Appearance of lens; 27. Heart pulsation; 28. Appearance of otolithes; 29. Tail fibrillation; 30. Pre-hatching stage; 31. Newly hatched larva. Plate Embryonic development of Coilia nasus |
刀鲚受精卵在温度为(23.64±0.36) ℃(n=30)条件下,历时28 h、经历7个阶段30个时期仔鱼孵化出膜(表 2)。
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表 2 刀鲚胚胎发育过程 Tab. 2 The embryonic development of Coilia nasus |
受精卵受精后,原生质开始向卵球一极集中,原生质不断集中最终形成高凸透明的胚盘(高度约为卵黄的1/3),此极即为胚胎的动物极,另一极为植物极(图版-2~3)。
2.3.2 卵裂阶段受精1 h后,隆起的胚盘顶部中央出现分裂沟,分裂沟逐渐向下延伸,最后完成第1次经裂;第2次经裂,分裂沟与第1次垂直;第3次经裂,2条分裂沟平行分裂;到第5次分裂后,分裂球排列开始不整齐,大小出现差异;第6次分裂包括经裂和纬裂,分裂球分层;随着分裂球体积越来越小、数量越来越多,但界面清晰可见,进入多细胞期(图版-4~10)。
2.3.3 囊胚阶段受精3 h 40 min后,随着分裂球继续分裂,分裂球体积变小、数量增加、界面变模糊,原来胚盘高高隆起,形成帽状囊胚;随后囊胚层外沿细胞开始向外扩展,胚层逐渐趋向扁平,胚层高度不断降低,最终形成新月形囊胚,约占整个胚胎的1/3(图版-11~13)。
2.3.4 原肠期阶段受精6 h 55 min后,囊胚边缘细胞开始向植物极移动,胚盘下包,形成裙边,裙边内卷,内外胚层分化,胚环、胚盾相继出现,随着胚盾不断伸展,胚体雏形形成,卵黄呈梨形(图版-14~16)。
2.3.5 神经胚阶段受精11 h后,囊胚层细胞下包至卵黄底部,植物极部分卵黄囊露出胚环外,形成卵黄栓,胚盾背中线纵向凹陷形成神经沟;随着卵黄外露部分不断减少,在卵黄栓末端形成圆形的胚孔,胚孔越来越小,卵黄被全部包起,但胚孔位置仍留有凹陷,直至封闭,胚体匍伏在卵黄上(图版-17,18)。
2.3.6 器官形成阶段受精13 h 45 min后,进入器官形成期,首先胚体前段膨大、隆起,然后胚体头部出现1对蚕豆形眼原基;然后出现4~6对明显的肌节;随着眼基膨大,椭圆形眼囊形成,脑开始分化,肌节增加;受精17 h后,胚体后端腹面形成圆锥状尾芽,脑泡形成,胚体下包4/5,肌节增加到20对;随着尾芽伸长,在尾的边缘,表皮外突成皮褶的鳍,形成尾鳍;然后在后脑两侧出现小泡状耳囊;继而受精21 h 35 min后,胚体背部肌肉出现微弱间隙性抽动,肌节继续增加到50对;眼囊逐渐变圆形,视杯扩大,视杯口出现圆形晶体;受精23 h 5 min后,在脑下方的咽部出现围心腔和心脏,心脏开始有规律的博动,然后在耳囊内出现两颗微小而发亮的耳石,心跳60~85次/分,胚体肌肉抽动幅度增大;受精25 h后,尾末端出现1~2次/分的颤动(图版-19~29)。
2.3.7 出膜阶段受精26 h后,耳石和鳍膜更清晰可见,尾部甩动强烈;受精28 h后,随着胚体扭动频率增加,卵膜在靠近胚体头部处逐渐隆起,最后卵膜溶解破裂,胚体头部先行出膜,随着尾部剧烈摆动,仔鱼摆脱卵膜(图版-30)。
2.4 初孵仔鱼刚孵出的仔鱼,整个身体弯曲,像个“逗号”,尾部微微颤动;数分钟后,身体后半段伸直,但背部略弯,身体前段弯曲匍匐于卵黄囊上,全长2 056.37~2 074.74 μm,体长2 021.13~2 016.43 μm,体高684.51~742.36 μm;卵黄囊大且近椭圆形,靠油球浮于水面,油球呈球形,油球长径487. 36~543.49 μm,短径466.28~476.19 μm;脑缺刻明显,眼晶体无色素,两个耳囊内各有两个大小相似、晶莹明亮的耳石,有肛凹雏形,鳍膜明显,由背部延伸至尾部,心跳90~110次/分,肌节48~50对。初孵仔鱼全身透明,体圆而粗短(图版-31)。
3 讨论 3.1 刀鲚全人工繁育特点于2007年采捕野生的刀鲚苗种,经过4年的室内水泥池养殖,于2011年进行室内集约化人工繁育,获得成功,然后将所得的子一代经过2年仿洄游的生态养殖,培育至2013年4-5月性成熟,并于2013年5-6月对子一代亲本进行挑选、催产和人工繁育;在世界范围内首次实现刀鲚全人工繁殖。另外,刀鲚应激反应强烈,有“离水即死”的说法[1],人工催产和授精操作非常困难,如在检查催产后的雌鱼是否产卵时很容易引起死亡,往往亲本还没到催产的效应时间,因人为操作而出现大量死亡,使得人工繁殖期间亲本的成活率很低,即使有些亲本能存活到人工产卵和授精,所产的卵质量也较低,进而导致受精率和孵化率下降,同时也会影响孵化的鱼苗质量,给苗种培育带来很大的困难。本研究采用定期拉网锻炼降低亲本对人为操作带来的应激,同时采用注射30 μg/kg剂量的LHRH-A2激素催产并对水温、光照等生态环境因子进行控制,实现亲鱼在室内水泥池中自行交配产卵受精,降低了亲本死亡率,同时也提高了受精卵的质量(受精率为80.6%),获得了大批量的受精卵,取得良好的效果。这种在人工控制环境下的室内水泥池内亲本能自行交配产卵受精的现象在其他一些鱼类中也有发现过,如美洲鲥(Alosa sapidissima)[10, 11]和松江鲈鱼(Trachidermus fasciatus)[12]。
野生刀鲚初次性成熟年龄为2龄[1],人工繁养的刀鲚也能在2龄时性成熟,本研究用亲本采用仿生态洄游培育模式:秋季逐步提高培育用水的盐度,冬季采用当地河口半咸水(盐度为10~15),春季逐步降盐,夏季在淡水养殖,此亲本培育模式获得了较好的效果:初次性成熟的亲本比率非常高。另外,由于子一代刀鲚初次性成熟,亲本个体相对较小,体重在15~25 g范围内,体长在15~25 cm范围内,这也导致了雌鱼个体产卵绝对数量较少,平均每尾产卵5 818粒,相对于自然条件下2~4龄亲本2~7万粒的怀卵量[3]要低得多。
3.2 刀鲚胚胎发育特点相对于与其他一些洄游性鱼类,如美洲鲥[10, 11]、松江鲈鱼[12]、暗纹东方鲀(Fugu obscurus)[13]和日本鳗鲡(Anguilla japonica)[14, 15],刀鲚胚胎发育虽然有着相似的特性:胚胎发育属于典型的硬骨鱼类的端黄卵盘状卵裂[16],发育进程按其主要形态特征发生顺序分为7个阶段30个时期;但刀鲚胚胎亦有其自身的特点:(1)刀鲚卵为浮性无粘性,在其他溯河繁殖洄游鱼类中与鲥鱼(Macrura reevesii)相一致(卵浮性无粘性)[17, 18],但美洲鲥卵沉性无粘性[10, 11],暗纹东方鲀卵沉性微粘性[13];(2)其受精卵属于偏小型卵,其卵径为(909.86±24.02)μm,略小于日本鳗鲡 [1.0~1. 2 mm[14]和(0.94±0.15) mm [15]]和暗纹东方鲀(1.118~1.274 mm) [13],明显小于鲥鱼(1.37~2.20 mm)[17, 18]、美洲鲥[2.85~3.28 mm[10]和(4.03±0.25) mm[11]]和松江鲈鱼(1.50~1.78 mm)[12];(3)刀鲚初孵仔鱼个体较小,其全长为2 056.37~2 074.74 μm,明显小于日本鳗鲡 [3.1~3.7 mm[14]和(3.32±0.02) mm [15]]、暗纹东方鲀(2.47~2.86 mm) [13]、鲥鱼 (2.75 mm) [17, 18]和美洲鲥(8.16~9.06 mm[10]和6.75 mm[11]),另外刀鲚初孵仔鱼发育不完全,眼晶体色素没有形成,内脏很多器官还没有形成,所以仔鱼需要较长时间的进一步发育才能开口摄食、消化吸收、建立自主巡游的模式,这种现象与日本鳗鲡[15]类似。
3.3 全人工繁殖的刀鲚胚胎发育特点对鱼类胚胎心跳和肌肉效应进程顺序的影响全人工繁殖的刀鲚胚胎虽然有野生刀鲚胚胎发育的特性,但亦有一些区别:(1)其发育进程中肌肉效应期出现心跳之前,与XU等[8]的刀鲚胚胎肌肉效应期出现心跳之后的研究结果不同,这种研究结果出现前后不一样的现象在其他洄游性鱼类也有发现,如有些研究人员观察到美洲鲥[10]和日本鳗鲡[14]的胚胎发育进程中肌肉效应期出现在心跳之前,而另外一些研究人员观察到美洲鲥[11]和日本鳗鲡[15]的肌肉效应期出现在心跳之后,具体原因还需要进一步研究;(2)全人工繁殖的刀鲚受精卵卵径为(909.86±24.02)μm及初孵仔鱼全长为2 056.37~2 074.74 μm,明显小于朱栋良[3]对长江刀鲚自然繁殖所得受精卵的卵径1.1~1.2 mm、初孵仔鱼全长2.5 mm的研究结果以及XU等[8]人工繁殖刀鲚的卵径(1.15±0.15)mm、初孵仔鱼全长(2.85±0.20)mm的研究结果,原因可能是本研究所用的亲本是初次性成熟且个体较小;(3)胚胎孵化时长虽然与孵化时水温密切相关,但还与其他很多环境条件有关[9, 19, 20],如光照强度、光照周期、溶解氧等,刀鲚胚胎发育也出现了这样的现象,本研究在23.64 ℃条件下刀鲚胚胎需28 h孵化出膜,而自然繁殖的受精卵孵化需要32 h(25~27 ℃)[3],人工繁殖的受精卵孵化需要42.0~45.8 h(22 ℃)[8]。
[1] | 魏广莲,徐钢春,顾若波,等.刀鲚的生物学及人工养殖研究进展[J].长江大学学报:自然科学版, 2012,7(9): 31-35,41.WEI G L, XU G C, GU R B. Research progress of biology and artificial culture of Coilia nasus[J]. Journal of Yangtze University:Natural Science, 2012,7(9): 31-35,41. |
[2] | 唐雪,徐钢春,徐跑,等.野生与养殖刀鲚肌肉营养成分的比较分析[J].动物营养学报,2011,23(3):514-520.TANG X, XU G C, XU P, et al. A comparison of muscle nutrient composition between wild and cultured Coilia nasus[J].Chinese Journal of Animal Nutrition,2011,23(3):514-520. |
[3] | 朱栋良.长江刀鱼的天然繁殖与胚胎发育观察[J].水产科技情报,1992,19(2):49-51.ZHU D L. Natural Propagation and embryonic development of Coilia nasus (Engraulidae) in Yangtze River[J].Fisheries Science and Technology Information,1992,19(2):49-51. |
[4] | LI Y,XIE S,LI Z,et al.Gonad development of ananadromous fish Coilia nasus (Engraulidae) in lower reach of Yangtze River China[J].Fisheries Science,2007,73(6):1224-1230. |
[5] | 闻海波,张呈祥,徐钢春,等.长江刀鲚与池塘人工养殖刀鲚性腺发育的初步观察[J]. 动物学杂志,2009,44(4):111-117.WEN H B, ZHANG C X, XU G C, et al. Development of gonads in Coilia nasus from the Yangtze River and artificial pond[J].Chinese Journal of Zoology, 2009,44 (4):111-117. |
[6] | 徐钢春,徐 跑,顾若波,等.池养刀鲚(Coilia nasus) 鱼种的摄食与生长[J]. 生态学杂志,2011,30(9):2014-2018.XU G C,XU P,GU R B, et al. Feeding habits and growth characteristics of pond-cultured Coilia nasus fingerlings[J]. Chinese Journal of Ecology, 2011,30(9):2014-2018. |
[7] | XU G, TANG X, ZHANG C, et al.First studies of embryonic and larval development of Coilia nasus (Engraulidae) under controlled conditions[J]. Aquaculture Research, 2011, 42(4):593-601. |
[8] | 顾若波,徐钢春,闻海波,等.似刺鳊鲄的胚胎及胚后发育[J].中国水产科学,2008,15(3):414-424.GU R B,XU G C,WEN H B,et al. Embryonic and post-embryonic development of Paracanthobrama guichenoti[J]. Journal of Fishery Sciences of China, 2008,15(3):414-424. |
[9] | 施永海,张根玉, 朱雅珠,等. 河口区养殖菊黄东方鲀的胚胎发育[J].大连海洋大学学报,2010,25(3):238-242.SHI Y H, ZHANG G Y, ZHU Y Z, et al. Embryonic development in cultured tawny puffer Takifugu flavidus in an estuary[J]. Journal of Dalian Ocean University, 2010, 25(3): 238-242. |
[10] | 洪孝友,朱新平,陈昆慈,等. 美洲鲥胚胎及仔稚鱼的发育[J].水生生物学报,2011,35 (1):153-162.HONG X Y, ZHU X P, CHEN K C, et al. Study on the development of the embryo and larva of American Shad, Alosa sapidissima[J]. Acta Hydrobiologica Sinica,2011,35 (1):153-162. |
[11] | 徐钢春,张呈祥,郑金良, 等. 美洲鲥的人工繁殖及胚胎发育的研究[J]. 海洋科学, 2012, 36(7): 89-96.XU G C, ZHANG C X, ZHENG J L, et al. Artificial propagation and embryonic development of American Shad, Alosa sapidissima[J]. Marine Sciences, 2012, 36(7): 89-96. |
[12] | 王金秋, 潘连德, 梁天红, 等. 松江鲈鱼(Trachidermus fasciatus)胚胎发育的初步观察[J]. 复旦学报:自然科学版, 2004, 43(2): 250-254.WANG J Q, PAN L D, LIANG T H, et al. Preliminary study on embryonic development of the roughskin sculpin, Trachidermus fasciatus (Scorpaeniformes:Cottidae)[J]. Journal of Fudan University:Natural Science, 2004, 43(2): 250-254. |
[13] | 胡亚丽,华元渝.暗纹东方鲀胚胎发育的观察[J].南京师大学报:自然科学版,1996,18(4):139-144.HU Y L, HUA Y Y. Observation on the embryonic development of fugu obscurus[J]. Journal of Nanjing Normal University: Natural Science,1996,18(4):139-144. |
[14] | 谢骏,余德光,王广军,等.人工诱导池塘养殖鳗鲡成熟产卵以及胚胎和仔鱼发育[J].水产学报,2005, 29(5):688-694.XIE J, YU D G, WANG G J, et al. Spawning and development of embryo and larva in cultivated Anguilla japonica by artificial induction[J]. Journal of Fisheries of China, 2005,29(5):688-694. |
[15] | 柳凌,张洁明,郭峰,等.人工条件下日本鳗鲡胚胎及早期仔鱼发育的生物学特征[J].水产学报,2010,34(12): 1800-1811.LIU L,ZHANG J M,GUO F,et al. Biological characteristics of embryo and larval development in Japanese Eel under artificial incubation[J]. Journal of Fisheries of China, 2010,34(12): 1800-1811. |
[16] | 楼允东.组织胚胎学[M].北京:中国农业出版社,1980:303-343.LOU Y D. Histology and embryology[M].Beijing:China Agricultural Press,1980:303-343. |
[17] | 邱顺林, 刘琳, 王鸿泰. 鲥鱼的早期发育[J]. 水产学报, 1987, 11(1): 45-52.QIU S L, LIU L, WANG H T. Early development of Tenualosa reevesii[J]. Journal of Fisheries of China, 1987, 11(1): 45-52. |
[18] | 陆桂, 钟展烈, 赵长春, 等.钱塘江鲥鱼的自然繁殖及人工繁殖[C]. 上海水产学院论文, 1964(1): 1-28.LU G, ZHONG Z L, ZHAO C C, et al. Natural propagation and artificial propagation of Tenualosa reevesii in the Qiantang River[C]. Proceedings of Shanghai Fisheries University, 1964(1): 1-28. |
[19] | KAMLER E. Ontogeny of yolk-feeding fish: an ecological perspective [J]. Reviews in Fish Biology and Fisheries, 2002, 12: 79-103. |
[20] | SHI Y H, ZHANG G Y, LIU J Z, et a1.Effects of photoperiod on embryos and larvae of tawny puffer,Takifugu flavidus[J]. Journal of the World Aquaculture Society, 2012, 43(2):278-285. |