农药学学报  2019, Vol. 21 Issue (3): 315-326   PDF    
气相色谱-串联质谱法快速检测当归中102种农药残留
闫君1, 赵波1, 张文1, 瓦晓霞2, 王小乔1, 陈婷1     
1. 兰州市食品药品检验所,兰州 730050;
2. 甘肃省中医药大学 基础医学院,兰州 730030
摘要: 建立了当归中102种农药残留的快速检测方法。样品采用优化的QuEChERS前处理方法,利用气相色谱-串联质谱 (GC-MS/MS) 检测,动态多反应监测 (dMRM) 模式,基质匹配外标法定量。结果表明:在样品前处理过程中,经对提取溶剂、提取体系、净化体系的组成和用量进行筛选优化后,样品采用乙腈、1.0 g氯化钠、4.0 g无水硫酸镁、1.0 g柠檬酸钠和0.5 g柠檬酸二钠盐提取,无水硫酸镁800 mg、PSA 150 mg、C18 150 mg净化,通过基质匹配外标法校正,当归中基质效应对目标化合物的定性、定量影响明显减弱。在0.02~0.64 mg/kg范围内,102种农药的质量浓度与对应的峰面积间呈良好的线性关系,R2均大于0.99,检出限为0.002 5~0.025 mg/kg,定量限为0.005~0.05 mg/kg;在0.04、0.08和0.32 mg/kg 3个添加水平下,102种农药的平均回收率为52 %~128%,RSD为1.0%~10 %。该方法快速简便、耗时短,具有良好的灵敏度、正确度和精密度,为提高当归中农药安全水平,降低健康风险提供了一种快速、高效、可靠的分析手段。
关键词: QuEChERS     气相色谱-串联质谱     动态多反应监测     当归     快速筛查     农药残留    
Rapid detection of 102 pesticides residues in Angelica sinensis using gas chromatography-tandem mass spectrometry
YAN Jun1, ZHAO Bo1, ZHANG Wen1, WA Xiaoxia2, WANG Xiaoqiao1, CHEN Ting1     
1. Lanzhou Institutes for Food and Drug Control, Lanzhou 730050, China;
2. Basic Medical College, Gansu University of Chinese Medicine, Lanzhou 730030, China
Abstract: Established a rapid determination method for 102 kinds of pesticide residues in angelica sinensis of genuine medicinal materials in Gansu. Optimized the QuEChERS pretreatment method, used pattern detection with gas chromatography-tandem mass spectrometry (GC-MS/MS), dynamic multi response monitoring (dMRM), and matrix matching external standard method, studied the influence of extraction agent, extraction system, composition and dosage of purification system on sample extraction and purification in the pre-treatment process of angelica pesticide residues, as well as the influence of matrix effect on the detection results. Optimized and used acetonitrile, 1.0 g sodium chloride, 4.0 g anhydrous magnesium sulfate, 1.0 g sodium citrate, 0.5 g disodium citrate for extraction, and 800 mg anhydrous magnesium sulfate, 150 mg PSA, 150 mg C18 for purification. The influence of matrix effect on qualitative and quantitative on target compounds in angelica significantly reduced by the correction with matrix matching external standard method. The methodological validation indicators was well that 102 kinds of pesticide residues show a good linear relationship within the range of 0.02 mg/kg to 0.64 mg/kg, and the R2 was greater than 0.99. Method detection limit is from 0.002 5 mg/kg to 0.025 0 mg/kg. Method quantitative limit is from 0.005 0 mg/kg to 0.050 0 mg/kg. The average recovery rate was from 52% to 128%, and the RSD was from 1.0 % to 10%. The method was rapid, simple, time-consuming and has good sensitivity, accuracy and precision, provided a fast, efficient and reliable analytical method for improve the level of pesticide safety in angelica sinensis and reduce health risks.
Key words: QuEChERS      gas chromatography-tandem mass spectrometry (GC-MS/MS)      dynamic multi response monitoring (dMRM)      Angelica sinensis      rapid screening      pesticide residues     

当归具有润肠、调经止血和补血活血等功效[1],在中医临床中广泛应用。调查发现,为保证当归产量,农药滥用现象普遍存在,而农药滥用也是中药材中农药残留超标的主要原因[2]。为控制农药残留,保证当归产业持续健康发展,建立适用于当归中农药多残留的快速检测方法势在必行。

在2015版《中国药典》通则2341《农药残留测定法》中记载,采用气相色谱-串联质谱 (GC-MS/MS) 技术最多可检测74种农药的残留,分析时间长达40 min[3]。目前,中药材中农药残留检测所用GC-MS/MS检测方法,多采用多反应监测模式 (MRM),而将灵敏度高、定量准确的动态多反应监测模式 (dMRM) 应用于中药材中农药残留检测尚未见报道。MRM模式需分时间段扫描,在不同时间段内扫描特定离子对,每个时间段内至少扫描1种化合物,当检测时间短且化合物多时,每个时间段内就要同时扫描多种化合物,单位时间段内扫描离子越多,驻留时间则越短,数据采集的灵敏度越低。与MRM相比,dMRM单位时间内仅扫描1种化合物,根据色谱分析时间对每个组分的保留时间窗口进行动态分配,仅当组分流出时才被采集,减少了同时扫描不同离子对的数目,提高了分析效率,适合一针分析、检测多个化合物。

当归中含有大量的黄酮类、多糖类、内酯类及挥发油等化合物,这些化合物在样品前处理中会产生较严重的基质效应,从而影响待测物定性与定量的准确性[4]。鉴于此,本研究基于GC-MS/MS的dMRM监测模式,以102种农药残留为目标化合物,优化QuEChERS前处理方法,采用基质匹配标准溶液校准降低基质干扰,建立了一种快速、高效、可靠的当归中农药残留的检测方法。

1 材料与方法 1.1 仪器、药剂与试剂

7890B-7000D气相色谱-串联质谱联用仪和HP-5MS UI气相色谱柱 (30 m × 0.25 mm,0.25 μm)(美国Agilent公司);移液枪 (德国Eppendorf公司);Centrifuge 5810R高速离心机 (德国Eppendorf公司);ME204/02电子天平 (瑞士梅特勒公司);EVA50A氮吹仪 (中国北京普立泰科仪器有限公司);KS501摇床 (德国IKA公司);VORTEX-5涡旋混匀器 (中国其林贝尔仪器制造有限公司);MS 205DU 电子天平(精确至0.1 mg,瑞士梅特勒公司);0.22 μm有机滤膜 (中国天津博纳艾杰尔科技有限公司)。

102种农药标准品 (见表1,纯度 ≥ 95%,Dr Ehrenstorfer,德国)。乙腈、正己烷 (色谱纯,德国Merck公司),丙酮 (色谱纯,天津科密欧公司),无水硫酸镁、氯化钠、柠檬酸钠和柠檬酸二钠盐倍半水合物 (分析纯,国药集团化学试剂有限公司);试验用水为Milli-Q超纯水;N-丙基乙二胺吸附剂 (PSA)和十八烷基键合硅胶吸附剂 (C18)(Supelco公司, 美国)。

表 1 102种农药保留时间及气相色谱-串联质谱检测参数 Table 1 Retention time and GC-MS/MS detection parameters of 102 pesticides

1.2 试验方法 1.2.1 样品前处理

当归Angelica sinensis采集自甘肃省岷县药材市场,粉碎研磨成粉后过三号筛,混匀,按四分法留样200 g,避光保存,备用。

提取:称取2 g (精确至0.01 g) 当归样品于50 mL离心管中,加入5.0 mL超纯水,涡旋30 s后,静置30 min;加入10.00 mL乙腈,剧烈振荡10 min,加入QuEChERS盐包 (1.0 g氯化钠、4.0 g无水硫酸镁、1.0 g柠檬酸钠和0.5 g柠檬酸二钠盐倍半水合物) 6.5 g,涡旋1 min,静置5 min,于3 900 r/min下离心5 min,取上清液,待净化。

净化:取5.0 mL上清液,转入QuEChERS净化管 (800 mg无水硫酸镁、150 mg PSA、150 mg C18) 中,混匀,涡旋1 min,于3 900 r/min下离心5 min;取2.0 mL上清液于7 mL离心管中,于40 ℃水浴中氮气吹干;加入2.0 mL正己烷,涡旋溶解,过0.22 μm有机滤膜后,待测定。

1.2.2 气相色谱-串联质谱检测条件

 气相色谱条件:程序升温过程为初始温度60 ℃,保持1 min,以40 ℃/min升温至170 ℃,再以10 ℃/min升温至310 ℃并保持3 min;载气为氦气,流速1.2 mL/min;进样量1.0 μL;不分流进样。

质谱条件:电子轰击 (EI) 离子源;电子能量70 eV;离子源温度250 ℃;气相色谱-串联质谱传输线温度280 ℃;dMRM扫描模式;溶剂延迟3.5 min;Agilent MassHunter工作软件, 其他条件见表1

1.2.3 标准溶液配制及标准曲线绘制

 农药单一标准溶液配制:分别准确称取10 mg(精确至0.1 mg)各农药标准品,用丙酮溶解并定容至10 mL,配成质量浓度约为 1 000 mg/mL的农药单一标准储备液,于4 ℃避光保存。

农药混合标准溶液配制:移取一定体积的102种农药单一标准储备液,用正己烷稀释并定容至25 mL,配成质量浓度为 8 mg/L左右的混合标准溶液,于 –18 ℃避光保存,用于质谱离子对确认和保留时间的确定。

基质匹配混合标准工作溶液配制:取当归空白样品,按1.2.1节的方法制得空白基质溶液。量取农药混合标准溶液1.0 mL,用样品空白基质提取液稀释至10 mL,配制系列质量浓度的基质匹配混合标准工作溶液,现配现用。

取基质匹配混合标准工作溶液,按1.2.2节的条件测定,以各种农药的定量离子峰的峰面积响应值为 (y) 为纵坐标,以其质量浓度 (x) 为横坐标绘制标准曲线,得到102种农药残留的线性方程及决定系数R2

2 结果与分析 2.1 dMRM方法的建立

取农药标准溶液在m/z 50~500范围内全扫描,使用NIST标准库匹配检索,确证目标物的保留时间和特征离子碎片。创建不同碰撞能量方法,获得在不同碰撞能量下的子离子扫描数据,选取最优的碰撞能量。

在确定保留时间、离子对和碰撞能量的基础上以化合物的保留时间为中心,调整向前和向后扫描时间长度,当单位时间内组分流出较多时可适当缩短扫描时间长度,使得离子对驻留时间延长,进而改善峰形,提高灵敏度。优化后的结果见表1;当归中102种农药在动态多反应监测模式扫描下的总离子流图见图1

图 1 当归中102种农药在动态多反应监测模式扫描下的总离子流图 (0.08 mg/kg) Fig. 1 Total ion chromatograms of 102 pesticides (0.08 mg/kg) using dMRM mode in Angelica sinensis

2.2 前处理条件优化

选取具有代表性的16种农药 (氯氰菊酯、敌敌畏、氟虫腈、三唑醇、腐霉利、丙溴磷、氰戊菊酯、甲霜灵、二甲戊灵、联苯肼酯、甲基毒死蜱、苯醚甲环唑、倍硫磷、毒死蜱、马拉硫磷、甲拌磷) 混合标准溶液,在添加水平为0.08 mg/kg条件下,对前处理条件进行优化。

2.2.1 提取条件优化

在样品提取前加入5.0 mL超纯水涡旋30 s,再静置30 min,提高了样品的分散程度,增大了比表面积,同时乙腈可以与水互溶,增加了其渗透性,提取率明显增高。乙腈的溶解性好,渗透力强,适用农药极性范围相对广泛,故提取溶剂选用乙腈。分别考察了3种提取方式对提取效果的影响:加入1.0 g氯化钠、5.5 g无水硫酸镁 (A);加入1.0 g氯化钠、4.0 g无水硫酸镁、1.0 g柠檬酸钠和0.5 g柠檬酸二钠盐倍半水合物 (B);加入1.5 g NaAc·3H2O、5.0 g无水硫酸镁 (C)。

结果(图2)表明:B组的回收率最好,回收率在75%~110%之间的农药数量为15个,而A组和C组分别为9个和12个。分析其原因可能是在提取过程中形成了缓冲盐体系,使提取环境保持在pH 5.0~6.0之间,这种弱酸性环境更有利于带有酸性基团 (如羧基、酰胺基、醚基等) 的农药在乙腈中溶解[5],同时在水与乙腈中加入氯化钠,更有利于两者分层,所以提取率相对更高。

1. 氯氰菊酯;2. 敌敌畏;3. 氟虫腈;4. 三唑醇;5. 腐霉利;6. 丙溴磷;7. 氰戊菊酯;8. 甲霜灵;9. 二甲戊灵;10. 联苯肼酯;11. 甲基毒死蜱;12. 苯醚甲环唑;13. 倍硫磷;14. 毒死蜱;15. 马拉硫磷;16. 甲拌磷。A: 1.0 g氯化钠、5.5 g无水硫酸镁;B: 1.0 g氯化钠、4.0 g无水硫酸镁、1.0 g柠檬酸钠和0.5 g柠檬酸二钠盐倍半水合物;C: 1.5 g NaAc · 3H2O、5.0 g无水硫酸镁。
1. cypermethrin; 2. dichlorvos; 3. fipronil; 4. triadimenol; 5. procymidone; 6. profenofos; 7. fenvalerate; 8. metalaxyl; 9. pendimethalin; 10. bifenazate; 11. chlorpyrifos-methyl; 12. difenoconazole; 13. fenthion; 14. chlorpyrifos; 15. malathion; 16. phorate. A: 1.0 g sodium chloride, 5.5 g magnesium sulfate;B: 1.0 g sodium chloride, 4.0 g magnesium sulfate, 1.0 g sodium citrate and 0.5 g sodium hydrogencitrate sesquihydrate;C: 1.5 g NaAc · 3H2O, 5.0 g magnesium sulfate.
图 2 3种提取方式对16种农药回收率的影响(0.08 mg/kg) Fig. 2 Effects of three extraction methods on the average recoveries of 16 pesticides (0.08 mg/kg)

2.2.2 净化条件优化

QuEChERS常用的吸附剂有阴离子交换吸附剂 (PSA)、反向吸附剂 (C18) 和石墨化碳黑 (GCB)。其中,PSA可通过氢键与化合物作用,从而除去脂肪酸、部分有机酸、糖和色素;C18可除去非极性的干扰物如脂类、花青素、蜡类产生的影响;GCB可去除叶绿素和类胡萝卜素等大分子杂质,但由于会吸附含有平面环状结构的农药而造成回收率降低[6]。由于当归中色素含量较低,且含有挥发油,因此本研究选取具有代表性的16种农药,考察了无水硫酸镁、PSA和C18 3种吸附剂及其用量对净化效果的影响。

2.2.2.1 无水硫酸镁用量的优化

在固定C18 200 mg、PSA 200 mg以及混合标准溶液添加水平为0.08 mg/kg条件下,考察了无水硫酸镁400、800、1 000和1 200 mg对农药回收率的影响。结果表明:当无水硫酸镁添加量大于800 mg时回收率在80 %~110 %之间的农药数量维持不变,综合考虑采用无水硫酸镁添加量为800 mg。

2.2.2.2 PSA添加量的优化

在固定无水硫酸镁800 mg、C18 200 mg以及混合标准溶液添加水平为0.08 mg/kg条件下,分别比较了50、100、150和200 mg PSA对农药回收率的影响。结果发现:当PSA用量为150 mg时,回收率接近100 %的农药数最多 (图3),所以采用PSA添加量为150 mg。

1. 氯氰菊酯;2. 敌敌畏;3.氟虫腈;4. 三唑醇;5. 腐霉利;6. 丙溴磷;7. 氰戊菊酯;8. 甲霜灵;9. 二甲戊灵;10. 联苯肼酯 ;11. 甲基毒死蜱;12. 苯醚甲环唑;13. 倍硫磷;14. 毒死蜱;15. 马拉硫磷;16. 甲拌磷。
1. cypermethrin; 2. dichlorvos; 3. fipronil; 4. triadimenol; 5. procymidone; 6. profenofos; 7. fenvalerate; 8. metalaxyl; 9. pendimethalin; 10. bifenazate; 11. chlorpyrifos-methyl; 12. difenoconazole; 13. fenthion; 14. chlorpyrifos; 15. malathion; 16. phorate.
图 3 不同PSA用量对16种农药回收率的影响(0.08 mg/kg) Fig. 3 Effect of different PSA dosages on recoveries of 16 pesticides (0.08 mg/kg)

2.2.2.3 C18添加量的优化

在固定无水硫酸镁800 mg、PSA150 mg以及混合标准溶液添加水平为0.08 mg/kg条件下,分别比较了50、100、150和200 mg C18对农药回收率的影响。结果发现:当C18用量在150 mg时,回收率接近100%的农药数最多 (图4),故采用C18添加量为150 mg。

1. 氯氰菊酯;2. 敌敌畏;3.氟虫腈;4. 三唑醇;5. 腐霉利;6. 丙溴磷;7. 氰戊菊酯;8. 甲霜灵;9. 二甲戊灵;10. 联苯肼酯 ;11. 甲基毒死蜱;12. 苯醚甲环唑;13. 倍硫磷;14. 毒死蜱;15. 马拉硫磷;16. 甲拌磷。
1. cypermethrin; 2. dichlorvos; 3. fipronil; 4. triadimenol; 5. procymidone; 6. profenofos; 7. fenvalerate; 8. metalaxyl; 9. pendimethalin; 10. bifenazate; 11. chlorpyrifos-methyl; 12. difenoconazole; 13. fenthion; 14. chlorpyrifos; 15. malathion; 16. phorate.
图 4 不同C18用量对16种农药回收率的影响(0.08 mg/kg) Fig. 4 Effect of different C18 dosages on the recoveries of 16 pesticides (0.08 mg/kg)

2.3 方法的线性范围及检出限

结果 (见表2) 表明:在0.02~0.64 mg/kg范围内,102种农药的质量浓度与对应的峰面积间均呈良好的线性关系,R2均大于0.99。

表 2 102种农药的检出限、定量限、线性方程、R2、回收率及相对标准偏差 Table 2 LOD, LOQ, linear equation, R2, recoveries and RSDs of 102 pesticides

采用向当归空白样品中逐渐降低添加水平,在降低水平的同时保证峰形良好,以信噪比等于3作为检出限 (LOD),其LOD在0.002 5~0.025 mg/kg之间,均低于2015版药典四部通则2341第四法中规定的检出限[3];以信噪比等于10作为定量限 (LOQ),其LOQ在0.005~0.04 mg/kg之间。

准确称取2 g当归空白样品进行添加回收率试验。农药混合标准品添加水平为0.04~0.32 mg/kg,每个水平重复6次。结果表明:各农药的平均回收率在52%~128%之间,RSD在1.0 %~10 %之间。有部分检测项目回收率较低,一方面是由于当归基质复杂,存在一定干扰;另一方面是由于自身极性和受热后稳定性降低等多方面原因的影响。

2.4 基质效应

气相色谱分析中基质效应普遍存在,且多表现为基质增强效应[7-8]。一般不挥发物质的含量越高,基质效应越强[9]。当归中含有糖类、蛋白质、油脂类等不易挥发化合物,易在进样口以及衬管内的活性点位富集,降低农药吸附量,影响方法的灵敏度和检出限,因此需要对基质效应进行评价。本研究中采用提取后加入法和绝对基质效应法评价基质效应[10-11]。通过检测目标化合物在基质匹配标准溶液中的响应值 (A) 及其在纯溶剂中的响应值 (B),根据公式 (1) 计算基质效应 (ME)。当ME < 15 %时,样品的基质效应对结果的影响可忽略;当 ME ≥ 15%时,样品的基质效应对结果的影响不可忽略[12]

$ M_{\rm{E}} / \%=[(A-B) / B] \times 100 $ (1)

结果 (表3) 表明:总体上,随着农药质量浓度的升高,其基质效应趋于减弱。具体来看:1) 联苯肼酯在当归中存在基质减弱效应 (ME在 –60%~–46%之间),对结果影响较大。2) 烯草酮在当归中的添加水平为0.02 mg/mL时,存在基质增强效应,而当添加水平大于0.02 mg/mL时,则存在基质减弱效应。3) 其余100种农药均表现为基质增强效应,其中,禾草敌、氟乐灵、治螟磷和硫线磷等31种农药的基质效应在13%~72%之间,且随农药质量浓度的升高,基质效应减弱;甲胺磷、敌敌畏、邻苯基苯酚和氧乐果等70种农药存在较强的基质增强效应 ( ME在15%~190%之间),对结果影响很大。因此本研究采用基质匹配标准溶液进行校正,经校正后可有效消除基质效应带来的影响,满足当归中农药残留检测要求。

表 3 102种农药在当归中的基质效应 Table 3 Matix effects of 102 pesticides in Angelica sinensis

2.5 实际样品测定

利用所建立的方法对从甘肃省岷县药材市场购买的43批当归样品进行农药残留检测,重复3次。结果有9批次检出三唑醇、甲基异柳磷、三唑酮、毒死蜱、六氯苯和二苯胺,其最高检出量分别为0.210、0.050、0.025、0.010、0.010和0.010 mg/kg,而甲基异柳磷为中药材禁用农药。

3 结论

优化了当归中农药残留检测的QuEChERS前处理方法,利用GC-MS/MS结合动态多反应监测 (dMRM) 模式,建立了当归中102种农药残留的快速检测方法。本研究结果表明:当归基质中成分复杂,基质效应明显;当待测物质量浓度越低时,基质增强效应越明显,采用基质匹配标准溶液进行校正,结果准确。通过实际样品检测证明该方法具有简单、快速、准确及灵敏度高等优点,适用于当归中日常农药残留的检测,成本较低,具有实际应用价值。

参考文献
[1]
徐璨. 当归化学成分分离与鉴定[J]. 亚太传统医药, 2016, 24(12): 42-43.
XU C. Separation and identification of chemical constituents of Angelica sinensis [J]. Asia-Pacific Trad Med, 2016, 24(12): 42-43. DOI:10.11954/ytctyy.201612017
[2]
陈君, 徐常青, 乔海莉, 等. 我国中药材生产中农药使用现状与建议[J]. 中国现代中药, 2016, 18(3): 263-270.
CHEN J, XU C Q, QIAO H L, et al. Current situation and consideration on pesticides application in production of Chinese herbal medicine[J]. Mod Chin Med, 2016, 18(3): 263-270.
[3]
中国药典国家药典委员会. 中华人民共和国药典: 四部[S].北京: 中国医药科技出版社, 2015
National committee of Chinese pharmacopoeia. Pharmacopoeia of the People's Republic of China: four[S]. Beijing: China Medical Science and Technology Press, 2015
[4]
张建莹, 邓慧芬, 李月梅, 等. QuEChERS/超高效液相色谱-串联质谱法测定果蔬中 122 种香港规例农药残留[J]. 分析测试学报, 2017, 36(7): 849-857.
ZHANG J Y, DENG H F, LI Y M, et al. Determination of 122 pesticide residues in fruits and vegetables from regulation of pesticides in Hong Kong by QuEChERS combined with ultra performance liquid chromatography-tandem mass spectrometry[J]. J Instrum Anal, 2017, 36(7): 849-857. DOI:10.3969/j.issn.1004-4957.2017.07.002
[5]
马妍, 陈頔, 陈曦, 等. 分散固相萃取-分散液液微萃取-气相色谱-质谱联用法测定中草药类保健食品中 29 种有机磷农药残留[J]. 中国食品卫生杂志, 2017, 29(5): 556-560.
MA Y, CHEN D, CHEN X, et al. Determination of 29 organophosphorus pesticide residues in health food from Chinese herbal medicines by dispersive solid phase extraction and dispersive liquid-liquid microextraction coupled with gas chromatography-mass spectrometry[J]. Chin J Food Hyg, 2017, 29(5): 556-560.
[6]
LEHOTAY S J, ANASTASSIADES M, MAJORS R E. The QuEChERS revolution[J]. LC GC Europ, 2010, 23(9): 1-12.
[7]
黄宝勇, 欧阳喜辉, 潘灿平. 色谱法测定农产品中农药残留时的基质效应[J]. 农药学学报, 2005, 7(4): 299-305.
HUANG B Y, OUYANG X H, PAN C P. Matrix effects in the analysis of pesticide residue in agro-products by chromatographic methods[J]. Chin J Pestic Sci, 2005, 7(4): 299-305. DOI:10.3321/j.issn:1008-7303.2005.04.002
[8]
GILLESPIE A M, WALTERS S M. Rapid clean-up of fat extracts for organophosphorus pesticide residue determination using C18 solid-phase extraction cartridges [J]. Anal Chimica Acta, 1991, 245: 259-265. DOI:10.1016/S0003-2670(00)80230-5
[9]
易盛国, 侯雪, 韩梅, 等. 气相色谱-串联质谱法检测蔬菜农药残留基质效应与基质分类的研究[J]. 西南农业学报, 2012, 25(2): 537-543.
YI S G, HOU X, HAN M, et al. Study on matrix effects and matrix classification of pesticide residues in vegetable by gas chromatography-tandem mass spectrometry[J]. Southwest China J Agric Sci, 2012, 25(2): 537-543. DOI:10.3969/j.issn.1001-4829.2012.02.038
[10]
王鹏, 蒋学华, 王凌. LC-MSn 应用于生物样品检测中基质效应的评价 [J]. 中国新药杂志, 2011, 20(20): 1953-1956.
WANG P, JIANG X H, WANG L. Assessment of matrix effect in quantitative bioanalytical methods based on LC-MSn[J]. Chin J New Drugs, 2011, 20(20): 1953-1956.
[11]
MATUSZEWSKI B K, CONSTANZER M L, CHAVEZ-ENG C M. Strategies for the assessment of matrix effect in quantitative bioanalytical methods based on HPLC-MS/MS[J]. Anal Chem, 2003, 75(13): 3019-3030. DOI:10.1021/ac020361s
[12]
李俊, 蔡滔, 杜楠, 等. QuEChERS-气相色谱-串联质谱法测定茶青中28种农药残留[J]. 农药学学报, 2017, 19(3): 366-373.
LI J, CAI T, DU N, et al. Determination of 28 pesticide residues in fresh tea leaves using QuEChERS-gas chromatography-tandem mass spectrometry[J]. Chin J Pestic Sci, 2017, 19(3): 366-373.