文章信息
- 苏华健, 陈雨晴, 李晓萱, 刘云欢, 刘晴, 黄克和
- SU Huajian, CHEN Yuqing, LI Xiaoxuan, LIU Yunhuan, LIU Qing, HUANG Kehe
- 富硒乳酸菌对四氯化碳诱导的大鼠肝损伤的保护作用
- Protective effects of selenium-enriched lactobacillus on carbon tetrachloride-induced liver injury in rats
- 南京农业大学学报, 2016, 39(4): 661-667
- Journal of Nanjing Agricultural University, 2016, 39(4): 661-667.
- http://dx.doi.org/10.7685/jnau.201511003
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文章历史
- 收稿日期:2015-11-03
肝纤维化是机体对各种病因引起的慢性肝损伤后的修复反应[1],是肝硬化的早期阶段。因此,预防纤维化是动物和人肝病治疗的主要目标之一。一些研究表明,减少肝内氧化应激有助于改善肝纤维化[2]。因此,自由基清除剂和抗氧化剂已成为抗纤维化有效的制剂。目前,肝纤维化的治疗方法主要包括去除病因、抑制炎症和宿主免疫反应、抑制肝星状细胞(HSC)活化、减少肝细胞外基质(ECM)产生等[3],目的是减轻炎细胞炎症坏死及纤维化,从而延缓疾病进展。
大量研究证明,硒和乳酸菌都具有抗氧化、抗炎症和抗纤维化的作用[4, 5],而且具有药理作用明确、生物利用度高、毒性小等特点[6, 7]。富硒乳酸菌中的硒主要以硒蛋氨酸形式存在,这样就克服了无机硒难吸收且治疗剂量与中毒剂量相近的弊端。
迄今为止,很少见到有关富硒乳酸菌对大鼠肝损伤保护作用与机制的研究报道。长期注射四氯化碳可诱发大鼠的慢性肝损伤,是一个目前普遍使用的诱导肝纤维化模型的方法。本研究主要是探究富硒乳酸菌对四氯化碳诱导的肝纤维化的作用,并对其相关机制进行探讨,为动物和人肝病的防治提供科学依据。
1 材料与方法 1.1 试剂超氧化物歧化酶(SOD)、谷胱甘肽过氧化物酶(GSH-Px)活性和谷胱甘肽(GSH)、丙二醛(MDA)含量检测试剂盒(南京建成生物工程研究所),总蛋白测定试剂盒(南京碧云天公司),α-SMA单克隆抗体(英国剑桥Abcam公司),CCl4(南京寿德研究所)。
1.2 富硒乳酸菌的制备用YPD培养基活化菌种48 h后制备发酵种子液体,18 h后转入20 L发酵罐进行扩大生产。于发酵12 h后补加亚硒酸钠10 mg·L-1,共发酵48 h,获得富硒乳酸菌产物。富硒乳酸菌产物中乳酸菌菌落数约为1011 mL-1,其中硒含量为10.0 μg·mL-1,且90%以上以有机硒形式存在。
1.3 动物饲养从扬州大学实验动物中心购买40只雄性Wistar大鼠,质量(200±20)g。将大鼠圈养在受控条件下,温度在(25±2)℃,12 h/12 h的光/暗循环。将大鼠适应环境1周以上后使用。在基础日粮中的硒含量为0.05 mg·kg-1。将基础日粮磨成粉,分别将亚硒酸钠(SS)、乳酸菌(L)和富硒乳酸菌(SL)加入基础日粮混合使日粮中总硒含量为0.3 mg·g-1,得到3种不同的日粮(L、SS和SL日粮),在SL和L日粮中存活的微生物细胞数为109 CFU·g-1。
1.4 试验方法40只雄性Wistar大鼠随机分为5组,每组8只。分组如下:对照组、CCl4组、CCl4+L组、CCl4+SS组和CCl4+SL组。对照组:饲喂基础日粮,腹腔注射(2 mL·kg-1)橄榄油,每周2次,连续8周;其余4组:分别饲喂基础日粮、L日粮、SS日粮、SL日粮,同时腹腔注射1 mL·kg-1 CCl4+1 mL·kg-1橄榄油,每周2次,连续8周。
试验期间,未见老鼠死亡。8周后取血液和肝脏样品,一部分保存于10%(体积分数)福尔马林中用于制备病理切片,另一部分存储于-70 ℃备用。
1.5 血清中酶活性分析将血液在4 ℃、5 000 g下离心5 min,分离血清,用自动生化分析仪测定血清中的丙氨酸氨基转移酶(ALT)和天冬氨酸氨基转移酶(AST)的活性。
1.6 肝组织中GSH-Px、SOD活性和GSH、MDA含量的测定肝脏样品称质量后加入9倍体积冷的缓冲液(1 mmol·L-1 EDTA,0.32 mol·L-1蔗糖和10 mL·L-1 Tris-HCl,pH7.4)制成匀浆。将匀浆在5 000 g离心5 min。用试剂盒分别测定GSH-Px、SOD活性和GSH、MDA含量。
1.7 组织病理学检查将在10%福尔马林中固定的大鼠肝脏样品进行切片后分别用苏木精-伊红(HE)和天狼星红染色、制片,显微镜下观察肝细胞的变性、炎症浸润、胶原纤维沉积程度等组织形态变化。
1.8 RNA提取和Real-time PCR分析肝脏组织的RNA提取和cDNA的合成参照文献[8]进行。用Primer Premier 5.0设计引物(表 1),用β-actin作内参,应用ABI 7300荧光定量PCR仪(美国Applied Biosystems公司)进行Real-time PCR反应,测定相关基因表达。
| 目的基因 Target gene | 引物对序列(5′→3′) Primer pairs sequence |
| Collagen Ⅰ | TGCCGTGACCTCAAGATGTGCC/CATCCACAAGCGTGCTGTAGGTG |
| α-SMA | CTGGAGAAGAGCTACGAACTGC/CTGATCCACATCTGCTGGAAGG |
| TGF-β1 | CTTCAGCTCCACAGAGAAGAACTGC/CACGATCATGTTGGACAACTGCTCC |
| TNF-α | ATGAGCACAGAAAGCATGATC/TACAGGCTTGTCACTCGAATT |
| IL-6 | CTTCCAGCCAGTTGCCTTCTTG/TGGTCTGTTGTGGGTGGTATCC |
| MCP-1 | GTCACGCTTCTGGGCCTGT/GTGCTTGAGGTGGTTGTGGA |
| TIMP1 | GCATCTGGCATCCTCTTGTT/AAGAAGCTGCAGGCATTGAT |
| β-actin | CTATCGGCAATGAGCGGTTCC/TGTGTTGGCATAGAGGTCTTTACG |
应用SPSS 20.0软件对数据进行统计学分析。试验结果均表示为平均值±标准差(x±SD)。用Duncan′s法进行单因素方差分析(ANOVA)和多重比较。
2 结果与分析 2.1 SL对大鼠生长及肝功能的影响由表 2中可见:在体质量上,与对照组相比,CCl4组体质量显著减少(P<0.05);L、SS或SL组与CCl4组相比体质量显著增加(P<0.05),但SS和L组间大鼠体质量差异不显著;SL与SS或L组相比体质量显著增加(P<0.05)。在肝质量上:与对照组相比,CCl4组的肝质量显著增加(P<0.05);L、SS或SL组与CCl4组相比肝质量显著减少(P<0.05),但L、SS和SL组间肝质量无显著差异。在肝指数上:与对照组相比,CCl4组的肝指数显著升高;L、SS或SL组与CCl4组相比,肝指数显著降低(P<0.05),但SS和L组间肝指数差异不显著;SL组与SS或L组相比,肝指数显著下降(P<0.05)。此外,与对照组相比,CCl4组中血清ALT和AST活性显著增加(P<0.05);L、SS或SL组与CCl4组相比,血清ALT和AST活性显著下降(P<0.05),但SS和L组间血清ALT和AST活性差异不显著;SL组与SS或L组相比,血清ALT和AST活性显著下降(P<0.05)。
| 项目Item | 试验分组 Test group | ||||
| Control | CCl4 | CCl4+L | CCl4+SS | CCl4+SL | |
| 体质量/g Body weight | 335±2.31a | 305±9.54d | 322±4.19c | 323±3.07c | 325±3.69b |
| 肝质量/g Liver weight | 13.8±0.53c | 16.7±1.08a | 15.9±0.31b | 15.8±0.87b | 15.2±0.63b |
| 肝指数/% Liver index | 4.12±0.23d | 5.48±0.11a | 4.94±0.07b | 4.89±0.28b | 4.68±0.17c |
| ALT活性/(U·L-1) ALT activity | 45.6±2.53d | 166.0±5.25a | 108.0±3.31b | 111.0±4.29b | 87.3±1.56c |
| AST活性/(U·L-1) AST activity | 73.3±1.18d | 136±5.26a | 115±4.32b | 112±4.01b | 98±3.03c |
| 注:1)ALT:丙氨酸氨基转移酶Alamine aminotransferase;AST:天冬氨酸氨基转移酶Aspartate aminotransferase。2)同行数据上标不同小写字母表示各组间差异显著(P<0.05)。Different letters above the values within each test parameter indicate significant differences between groups(P<0.05). | |||||
HE染色下,对照组的肝脏切片显示正常肝小叶结构和细胞结构(图 1-A);CCl4组有许多纤维隔开的微结节,表现肝脏的炎症和肝细胞的坏死(图 1-B);L和SS组表现为中等程度的炎症和坏死(图 1-C,D);SL组显著降低由CCl4诱导的肝脏炎症和肝细胞的坏死(图 1-E)。
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图 1 HE染色的大鼠肝细胞 Fig. 1 Liver cell of rat sections stained with HE A:对照组Control group;B:CCl4 组CCl4 group;C:CCl4+L组CCl4+L group;D:CCl4+SS组CCl4+SS group;E:CCl4+SL组CCl4+SL group |
用天狼星红染色检测肝脏样品中胶原的沉积量。与对照组(图 2-A)相比,CCl4组(图 2-B)的肝组织表现出明显的红染色的纤维间隔;L和SS组(图 2-C,D)肝纤维化程度较CCl4组减轻;SL组(图 2-E)肝纤维化程度较CCl4组明显减轻。
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图 2 天狼星红染色大鼠肝细胞 Fig. 2 Liver cells of rat sections stained with Sirius red A:对照组Control group;B:CCl4组CCl4 group;C:CCl4+L组CCl4+L group;D:CCl4+SS组CCl4+SS group;E:CCl4+SL组CCl4+SL group |
如图 3所示:与对照组相比,CCl4组谷胱甘肽(GSH)含量、谷胱甘肽过氧化物酶(GSH-Px)和超氧化物歧化酶(SOD)活性显著降低(P<0.05)。与CCl4组相比,L、SS和SL组GSH-Px活性均显著升高(P<0.05)。而SS组与L组相比,GSH-Px活性差异不显著。SL组与SS和L组相比,GSH-Px活性显著增加(P<0.05)。CCl4组SOD活性显著低于对照组(P<0.05)。与CCl4组相比,L、SS或SL组SOD活性显著升高(P<0.05)。SS和L组间SOD活性差异不显著。与L或SS组相比,SL组SOD活性显著增加(P<0.05)。与对照组相比,CCl4组GSH含量显著降低(P<0.05)。与CCl4组相比,L、SS或SL组中的GSH含量显著升高(P<0.05),但L和SS组间的GSH含量差异不显著。与L或SS组比较,SL组的GSH含量表现进一步增加(P<0.05)。与对照组相比,CCl4组的MDA含量显著升高(P<0.05)。与CCl4组相比,MDA在L组、SS组或SL组中的含量明显下降(P<0.05)。然而,SS和L组之间MDA含量差异不显著。与SS或L组相比,SL组的MDA含量显著下降(P<0.05)。
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图 3 SL对大鼠肝细胞GSH-Px和SOD活性及GSH和MDA含量的影响 Fig. 3 Effects of SL on GSH-Px,SOD activities,and GSH,MDA contents in liver of rat 标注不同字母者表示差异显著(P<0.05,n=8)。Columns with different letters differ significantly(P<0.05,n=8). |
由图 4可见:与对照组相比较,CCl4组中α-SMA、CollagenⅠ、TGF-β1和TIMP-1的mRNA表达水平显著增加(P<0.05)。与CCl4组相比,L、SS或SL组的这些基因mRNA表达水平均显著降低(P<0.05),但在SS和L组之间这些基因的mRNA表达水平差异不显著。SL组与SS或L组相比,这些基因的mRNA表达水平显著降低(P<0.05)。
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图 4 Real-time PCR分析大鼠肝脏中α-SMA、CollagenⅠ、TGF-β1和TIMP-1 mRNA表达水平 Fig. 4 The mRNA expression levels of α-SMA,CollagenⅠ,TGF-β1 and TIMP-1 in liver of rat detected by Real-time PCR |
为了确定SL是否能抑制由CCl4诱导的炎症,本试验检测了肝组织中TNF-α、IL-6和MCP-1基因的表达。如图 5所示:与对照组相比,CCl4组TNF-α、IL-6和MCP-1的mRNA水平显著度升高(P<0.05),但是与CCl4组相比较,这些炎症相关基因在L、SS或SL组的mRNA的表达水平显著降低(P<0.05)。在SS和L组之间的TNF-α、IL-6和MCP-1表达水平没有差异。与SS或L组相比,SL组这些炎症相关基因的表达水平进一步下降(P<0.05)。
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图 5 大鼠肝脏中TNF-α、IL-6和MCP-1 mRNA表达水平 Fig. 5 The mRNA expression levels of TNF-α,IL-6 and MCP-1 in liver of rat detected by Real-time PCR |
肝纤维化是肝脏对慢性损伤的一种修复反应,由不同的机制诱导,包括病毒感染、外源物的损害及一些遗传性疾病[8, 9]。目前,迫切需要寻找一些低毒高效的产品来防治肝纤维化[10]。研究表明,在饲料中补充硒可以改善CCl4诱导的肝纤维化[11, 12],而最近的一项研究表明益生菌有利于治疗慢性肝病[13]。富硒乳酸菌(SL)产品具有有机硒和乳酸菌的组合效应。本试验结果表明,SL比单独的硒或乳酸菌能更有效地降低CCl4引起的大鼠肝损伤。该结果对防治动物和人的肝纤维化具有重要意义。
血清中ALT和AST活性是公认的肝损伤指标。试验结果表明,CCl4诱导肝损伤的大鼠中,ALT和AST活性升高,表示有严重的肝细胞损伤;而补充SL能显著降低血清中ALT和AST活性,说明SL能减少CCl4诱导的大鼠肝损伤。
组织学研究结果表明,CCl4组大鼠肝的正常小叶结构被破坏,并形成假小叶。胶原蛋白的表达也在CCl4组的大鼠上明显增加。肝纤维化是肝细胞外基质(ECM)在肝脏逐步沉积所导致[14],表达胶原是纤维组织细胞外基质的主要成分。SL能有效减少胶原的含量,表明SL可以改善CCl4诱导的肝纤维化。
氧化应激在肝纤维化过程中起主要作用[15]。早期的研究显示,CCl4诱导肝损伤的大鼠肝脏GSH-Px、SOD活性和GSH含量下降,而MDA含量升高[16]。以前的研究表明,饮食中补充富硒益生菌后,小鼠、仔猪和奶牛的GSH-Px、SOD活性和GSH含量有所提高[17, 18, 19]。本研究发现与CCl4组大鼠相比,补充SL显著提高了GSH-Px和SOD活性和GSH含量,且显著降低肝脏中MDA含量。除此以外,氧化应激,尤其脂质过氧化应激,可诱导胶原合成加剧肝纤维化[20]。因此,SL减少ECM含量的原因可能是它的抗氧化能力。
现已证明,肝星状细胞(HSC)在肝纤维化发展中发挥着关键作用[21]。机体在氧化应激状态时产生的自由基可以使肝细胞损伤,通过一系列的反应激活HSC,使ECM大量沉积,导致肝纤维化发生。从本研究结果看,CCl4的使用明显增加了CollagenⅠ、α-SMA和TIMP-1的mRNA表达水平,SL的添加显著降低了这些基因的表达。本试验结果表明:添加SL抑制了HSC的活化,从而降低了ECM在大鼠肝脏中的沉积。
炎症反应在肝纤维化的发生和发展中起着至关重要的作用[22]。枯否氏细胞和单核细胞受到刺激能产生炎性细胞因子,包括TNF-α和IL-6。此外,炎性细胞通过分泌细胞因子,尤其MCP-1和TGF-β1来调节HSC活化和ECM沉积[13, 23]。在活化的肝星状细胞中,MCP-1的表达水平很高。MCP-1在激活炎性细胞中起关键作用,而TGF-β1已被视为介导肝纤维化的关键细胞因子[13, 24]。本研究结果表明,与CCl4组大鼠相比,SL可以降低血浆TNF-α水平,而补充SL可以显著降低肝脏炎性细胞因子相关基因的表达。因此,SL降低CCl4诱导的肝纤维化的潜在机制也可能与抑制炎症反应有关。
综上,补充SL能有效地减轻CCl4引起的肝损伤和纤维化,其机制可能是减少了肝内的氧化应激,抑制肝脏炎症发生以及抑制肝星状细胞的活化。因此,SL或可被开发成一种预防肝纤维化的食品或饲料添加剂。
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