
文章信息
- 鞠雪, 王秋举, 罗莎, 董晓庆, 陈玉珂, 杨翼羽, 张东鸣. 2015.
- JU Xue, WANG Qiuju, LUO Sha, DONG Xiaoqing, CHEN Yuke, YANG Yiyu, ZHANG Dongming. 2015.
- 氧化鱼油对草鱼幼鱼脂质过氧化及抗氧化酶活性的影响
- Effects of oxidized fish oil on lipid peroxidation and antioxidant enzyme activities in juvenile grass carp(Ctenopharyngodon idellus)
- 南京农业大学学报, 38(3): 491-496
- Journal of Nanjing Agricultural University, 38(3): 491-496.
- http://dx.doi.org/10.7685/j.issn.1000-2030.2015.03.021
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文章历史
- 收稿日期:2014-10-26
鱼油是一种重要的能源物质,还能为动物机体提供高度不饱和脂肪酸(HUFA)[1, 2],其富含的高度不饱和脂肪酸更是鱼虾EPA、DHA的重要来源之一。另外,鱼油还能促进鱼类生长,利于鱼体脂质代谢[3, 4],提高饲料加工效率,在饲料生产中得到了广泛应用[5]。然而鱼油中的不饱和脂肪酸在存储、加工的过程中极易被氧化,而氧化脂质能被肠道吸收而易造成机体氧化应激反应[6],这一现象已引起动物营养学家的广泛关注。近年来,有关氧化鱼油对动物生产性能的研究多集中在鸡[7]、猪[8]、鼠[9, 10]等动物上。氧化鱼油对鱼类生长及抗氧化能力的影响在鲶鱼[11]、鲤鱼[12]、花鲈[13]上也有报道。草鱼作为我国北方重要的淡水经济鱼类,相关研究却鲜有报道。为此,本试验以草鱼幼鱼为研究对象,用不同程度氧化鱼油进行饲养试验,测定草鱼幼鱼血清、肝胰脏、肠、肌肉、肾脏等组织中丙二醛(MDA)含量及抗氧化酶活性,以研究氧化鱼油对草鱼幼鱼脂质过氧化及抗氧化能力的影响,为草鱼的健康养殖及水产饲料行业的发展提供基础资料,并为构建鱼类氧化应激模型提供参考依据。 1 材料与方法 1.1 试验用鱼
草鱼幼鱼购自长春市双阳水库渔场。暂养1周,选取体质健壮、体质量相近的草鱼幼鱼204尾作为试验用鱼,平均体质量(30.0±2.6) g,随机分为4个处理,每个处理3个重复,每个重复17尾鱼。 1.2 氧化鱼油制作及试验饲料分组处理
新鲜鱼油购自荣成海达鱼粉有限公司,-20 ℃冰箱保存。鱼油氧化步骤如下:在新鲜鱼油中添加150 mg · kg-1 Cu2+(以CuSO4 · 5H2O的形式)、300 mg · kg-1 Fe2+(以FeSO4 · 7H2O的形式)、6 000 mg · kg-1 H2O2(30% H2O2水溶液)和0.3%(体积分数)蒸馏水,充分混匀后于37 ℃水浴中搅拌进行氧化反应,在不同时间取样得到过氧化物值(POV)分别为49.72、144.64和345.45 mmol · kg-1的氧化鱼油,按3%的比例分别添加到半纯化基础饲料中(饲料配方见表 1),形成P1、P2、P3试验组,以添加新鲜鱼油(POV:9.07 mmol · kg-1)饲料为对照组F。对照组添加Fe2+、Cu2+与处理组Fe2+、Cu2+达到平衡。各氧化程度鱼油氧化指标的测定值见表 2。
% | ||||
饲料组成Diet composition | 水平Level | 营养成分Nutrients composition | 水平Level | |
鱼粉Fish meal | 10.00 | 水分Moisture | 3.65 | |
去皮豆粕Dehulled soybean | 33.00 | 粗脂肪Crude lipid | 5.22 | |
玉米蛋白粉Corn protein powder | 14.60 | 粗蛋白Crude protein | 31.11 | |
鱼油Fish oil | 3.50 | 粗灰分Crude ash | 6.91 | |
面粉Flour | 19.00 | |||
糊精Dextrin | 12.40 | |||
微晶纤维素Microcrystalline | 4.00 | |||
复合预混料Compound premix | 1.00 | |||
磷酸二氢钙Monocalcium phosphate | 2.00 | |||
氯化胆碱Choline chloride | 0.50 | |||
注: 1)复合预混料向每kg饲料提供:维生素A 3 000 IU,维生素D 1 000 IU,维生素E 100 mg,维生素K 20
mg,维生素B
1 10 mg,维生素B
2 20 mg,烟酸200 mg,泛酸钙100 mg,维生素B
6 20 mg,生物素2 mg,叶酸10 mg,维生素B
12 0.05 mg,肌醇400 mg,维生素C 500 mg,Zn 50 mg,Fe 220 mg,Cu 4 mg,Mn 20 mg,碘1 mg,Co 0.3 mg,Se 0.1 mg,Mg 300
mg;2)饲料中总能为16.14 MJ · kg
-1。 Notes: 1)Compound premix supplied the following per kilogram of diet:vitamin A 3 000 IU,vitamin D 1 000 IU,vitamin E 100 mg,vitamin K 20 mg,vitamin B 1 10 mg,vitamin B 2 20 mg,nicotinic acid 200 mg,calcium pantothenate 100 mg,vitamin B 6 20 mg,biotin 2 mg,folic acid 10 mg,vitamin B l2 0.05 mg,inositol 400 mg,vitamin C 500 mg,Zn 50 mg,Fe 220 mg,Cu 4 mg,Mn 20 mg,I 1 mg,Co 0.3 mg,Se 0.1 mg,Mg 300 mg;2)The total energy of the diet is 16.14 MJ · kg -1. |
处理分组
Treatment group |
过氧化值/(mmol·kg
-1)
Peroxide value |
碘价/(g·100 g
-1)
Iodine value |
酸价/(mg·g
-1)
Acid value |
F | 9.07±1.14 | 165.98±2.46 | 1.16±0.07 |
P1 | 49.72±1.73 | 155.06±3.59 | 2.43±0.49 |
P2 | 144.64±2.29 | 152.89±6.40 | 3.71±0.16 |
P3 | 345.45±6.45 | 138.40±5.09 | 4.87±0.20 |
以鱼粉为动物蛋白源,去皮豆粕和玉米蛋白粉为植物蛋白源,鱼油为脂肪源,面粉和糊精为能源,微晶纤维素为填充物,按表 1配制试验饲料。饲料制好后于-20 ℃条件下贮存,投喂期间每周取料1次。 1.3 饲养管理
采用循环水养殖系统,试验用容器为380(型号)白色养殖用桶,有效容积100 L。每桶加水90 L,流水饲养,水流速度为0.20~0.25 L · min-1,水源为曝气24 h的自来水。每天投喂饲料2次(8:30和16:30),饱食投喂。养殖期间每周清洗养殖设施1次。整个试验期水温控制在(26.5±1.0)℃,pH值7.0~7.5,溶氧5~8 mg · L-1,氨态氮含量小于0.05 mg · L-1。饲养试验期为8周。 1.4 样品采集
经58 d试验,对照组和试验组草鱼幼鱼均未出现死亡现象。试验结束后停食24 h,从每个桶中随机取5尾鱼,用200 mg · L-1的MS-222麻醉后称鱼体质量,尾静脉采血,4 ℃ 4 000 r · min-1离心10 min制备血清。取血后解剖分离出肝胰脏、肾脏、肠(前中肠)、肌肉,并用冷的生理盐水冲洗,除去组织上的血液及肠道内容物。以上操作均在冰上进行,所有样品-80 ℃冰箱保存备用。 1.5 指标测定方法 1.5.1 饲料成分的测定
水分测定采用恒温干燥法(105 ℃);粗蛋白测定采用凯氏定氮法;粗脂肪测定采用索氏抽提法;粗灰分测定采用马福炉灼烧法(550 ℃);能量采用氧弹热量计直接测得。 1.5.2 抗氧化性能的测定
组织样品在4 ℃条件下解冻,剪碎,加入预冷的8.6 g · L-1生理盐水,冰浴匀浆。匀浆液经2 000 r · min-1离心15 min,取上清液4 ℃保存备用。
血清及组织匀浆液中丙二醛(MDA)含量、总抗氧化能力(T-AOC)、超氧化物歧化酶(SOD)活性、过氧化氢酶(CAT)活性、谷胱甘肽过氧化物酶(GSH-PX)活性及组织匀浆液总蛋白含量均采用南京建成生物工程研究所试剂盒进行测定。每毫克组织蛋白每分钟使反应体系的吸光值每增加0.01时为一个T-AOC单位;每毫克组织蛋白每分钟扣除非酶反应的作用,使体系中谷胱甘肽浓度降低1 μmol · L-1为一个GSH-PX酶活性单位;组织匀浆中总蛋白含量用考马斯亮蓝法测定。 1.6 数据分析
试验数据用平均数±标准误(x±SE)表示(n=3),SPSS 17.0软件进行单因素方差分析和Duncan′s多重比较。 2 结果与分析 2.1 氧化鱼油对草鱼幼鱼不同组织中MDA含量的影响
由表 3可知:与对照(F)组相比,氧化鱼油各处理组草鱼幼鱼组织中MDA含量有不同程度的升高。血清和肠道中MDA在P3组较F组显著升高(P < 0.05)。肾脏中的MDA含量在P1、P2、P3组均较对照组显著升高(P < 0.05),且P3组显著高于P1、P2组(P < 0.05)。肝胰脏中的MDA含量在P2、P3组较对照组显著升高(P < 0.05)。肌肉中P1、P2和P3组的MDA含量较对照组分别升高了6.64%、6.76%、6.26%,但差异不显著(P>0.05),各组织中MDA含量均在P3组最高。
处理
Treatment |
MDA含量/(nmol·mL -1,nmol·mg -1) MDA content | ||||
血清 Serum | 肝胰脏 Liver | 肾脏 Kidney | 肌肉 Muscle | 肠道 Intestine | |
F | 39.28±1.19 a | 5.89±0.32 a | 4.12±0.18 a | 15.97±1.35 | 16.90±5.45 a |
P1 | 36.13±1.53 a | 7.43±0.80 ab | 6.98±0.18 b | 17.03±2.48 | 23.14±1.32 ab |
P2 | 37.57±1.25 a | 8.20±0.13 b | 6.39±0.54 b | 17.05±1.16 | 15.87±0.74 a |
P3 | 46.62±2.70 b | 8.37±0.51 b | 10.05±0.20 c | 16.97±1.10 | 32.62±1.78 b |
注:同一列数据中标有不同字母者表示差异显著(
P < 0.05)。
Note:In the same column,values with the different letters mean significant difference at 0.05 level. The same as follows. |
由表 4可知:与F组相比,不同程度氧化鱼油处理均可导致草鱼幼鱼血清、肝胰脏、肾脏、肌肉及肠道中的T-AOC含量降低,且随鱼油氧化程度的提高,T-AOC呈现下降趋势。其中,肝胰脏和肠道中P1、P2、P3组T-AOC含量均显著低于F组(P < 0.05),组间差异不显著(P>0.05)。血清、肾脏和肌肉组织中,P3组T-AOC含量最低,与F组差异显著(P < 0.05)。
处理
Treatment |
T-AOC含量/(nmol·mL -1,nmol·mg -1) T-AOC content | ||||
血清 Serum | 肝胰脏 Liver | 肾脏 Kidney | 肌肉 Muscle | 肠道 Intestine | |
F | 8.51±0.21 ab | 14.43±0.75 a | 0.46±0.02 a | 0.21±0.06 a | 0.84±0.07 a |
P1 | 8.06±0.33 b | 10.47±0.35 b | 0.43±0.04 a | 0.28±0.01 a | 0.59±0.03 b |
P2 | 7.98±1.19 a | 10.28±0.29 b | 0.48±0.01 a | 0.08±0.00 b | 0.47±0.00 b |
P3 | 6.66±0.14 c | 8.32±1.40 b | 0.26±0.01 b | 0.05±0.01 b | 0.51±0.05 b |
由表 5可知:与对照(F)组相比,3种不同程度氧化鱼油处理组草鱼幼鱼各组织中SOD活性均有不同程度降低。P1、P2、P3组肝胰脏和肌肉中SOD活性均显著低于F组(P < 0.05),组间差异不显著。血清及肾脏的SOD活性在P3组显著低于对照组(P < 0.05)。
处理
Treatment |
SOD含量/(nmol·mL -1,nmol·mg -1) SOD activity | |||
血清 Serum | 肝胰脏 Liver | 肾脏 Kidney | 肌肉 Muscle | |
F | 52.76±0.40 a | 54.34±1.27 a | 7.67±0.64 a | 7.11±0.47 a |
P1 | 51.41±0.92 ab | 38.65±2.02 b | 8.52±0.65 a | 5.56±0.19 b |
P2 | 52.61±0.54 a | 41.19±1.42 b | 8.02±0.59 a | 5.31±0.50 b |
P3 | 48.65±1.92 b | 41.96±3.48 b | 4.16±0.70 b | 5.71±0.39 b |
由表 6可知:与对照(F)组相比,氧化鱼油各处理组血清、肝胰脏、肌肉中CAT活性显著下降(P < 0.05)。肾脏、肠道组织中除CAT活性较对照组降低,但无显著差异(P > 0.05)。
处理
Treatment |
CAT含量/(nmol·mL -1,nmol·mg -1) CAT activity | ||||
血清 Serum | 肝胰脏 Liver | 肾脏 Kidney | 肌肉 Muscle | 肠道 Intestine | |
F | 13.66±1.02 a | 25.51±2.91 a | 11.54±0.31 | 1.24±0.13 a | 2.00±0.35 |
P1 | 9.88±0.10 b | 16.76±1.07 b | 10.98±0.21 | 0.58±0.03 b | 1.37±0.24 |
P2 | 6.81±0.62 c | 17.55±1.12 b | 11.50±0.38 | 0.66±0.02 b | 1.70±0.07 |
P3 | 7.06±0.23 c | 18.01±0.38 b | 11.75±0.27 | 0.47±0.02 b | 1.37±0.05 |
由表 7可知:与对照(F)组相比,3种不同程度氧化鱼油处理组血清、肝胰脏、肾脏、肠道组织中GSH-PX活性有升高的现象,但均无显著差异(P > 0.05)。
处理
Treatment |
GSH-PX含量/(nmol·mL -1,nmol·mg -1) GSH-PX activity | |||
血清 Serum | 肝胰脏 Liver | 肾脏 Kidney | 肌肉 Muscle | |
F | 424.48±7.18 | 1 231.85±140.70 | 273.78±10.88 | 116.50±5.15 |
P1 | 430.38±13.61 | 1 356.71±185.39 | 266.00±5.19 | 101.95±7.95 |
P2 | 437.46±13.61 | 1 396.49±68.12 | 268.21±24.71 | 116.18±19.02 |
P3 | 448.08±10.49 | 1 306.14±125.15 | 284.24±8.54 | 143.27±14.88 |
3.1 氧化鱼油对草鱼幼鱼脂质过氧化的影响
丙二醛(MDA)是脂质过氧化的终末代谢产物之一,其含量常用来反映机体脂质过氧化程度和细胞受损的程度[14]。周建川等[7]用含质量分数为1.0%氧化鱼油(POV:1 200 mmol · kg-1)的饲料饲喂蛋鸡,显著提高了蛋鸡血 清丙二醛含量。袁施彬等[15]在对断奶仔猪的研究表明,饲粮中添加质量分数为5%氧化鱼油(POV:786.50 mmol · kg-1) 可诱导断奶仔猪氧化应激,提高肝胰脏中MDA含量。彭士明等[16]在饲料中添加氧化酸败鱼油(POV:45 mmol · kg-1)饲养黑鲷幼鱼9周,结果显示氧化鱼油组肝脏中MDA含量显著高于对照组。本研究中,氧化鱼油各处理组草鱼幼鱼组织中MDA含量有不同程度的提高,当鱼油POV为345.45 mmol · kg-1时,血清、肝胰脏、肾脏、肠道中MDA含量都较对照组显著提高,说明氧化程度高的鱼油更容易造成组织脂质过氧化产物的积累,引起机体氧化应激。袁施彬等[15]指出MDA含量的提高是因为活性氧的存在,引起机体脂质发生一系列连锁反应,导致生物膜损伤,脂质过氧化。 3.2 氧化鱼油对草鱼幼鱼抗氧化酶活性的影响
机体的抗氧化防御系统包括非酶系统和酶系统,抗氧化剂含量及抗氧化酶活性大小可以反映机体氧化-抗氧化状态,从侧面体现动物的健康状态。机体的抗氧化酶系统主要包括超氧化物歧化酶(SOD)、过氧化氢酶(CAT)、谷胱甘肽过氧化物酶(GSH-PX)等,它们是体内自生的抗氧化酶,构成机体抗氧化的第一道防线[17]。
T-AOC常用来衡量机体抗氧化酶系统和非酶系统对外来刺激的代偿能力以及机体自由基代谢状态,是反映机体抗氧化机能的综合性指标。本试验中,随着鱼油氧化程度的提高,组织中T-AOC含量表现出下降的趋势,特别是在P3组(POV:345.45 mmol · kg-1),草鱼幼鱼血清、肝胰脏、肾脏、肠道及肌肉组织中的T-AOC含量都显著低于对照组。说明氧化程度高的鱼油会使草鱼幼鱼组织受到强烈刺激,打破机体自身氧化-抗氧化系统的平衡状态,从而使鱼体抗氧化能力整体下降。黄琳等[8]在饲粮中添加5%氧化鱼油显著降低了新生仔猪肠道T-AOC含量,引发了新生仔猪肠道的炎症反应,与本试验结果一致。
SOD是动物体内最先与O2· 作用清除活性氧的金属酶[18]。CAT是以过氧化氢为底物的末端氧化酶,能将H2O2分解成水,从而保护细胞免受损伤。GSH-PX是作为底物GSH的催化剂起解毒作用,且有协助CAT清除H2O2的作用。任泽林等[19]的研究表明,氧化鱼油可以降低鲤鱼肝胰脏中SOD活性。Vázquez-Añón等[20]在研究中指出,试验动物摄食氧化鱼油后机体ROS大量产生,体内SOD活性降低。本研究中,用3种不同程度氧化鱼油饲料饲喂草鱼幼鱼后,组织中SOD、CAT活性均较对照组下降。P3组(POV:345.45 mmol · kg-1)血清、肝胰脏、肌肉中的SOD、CAT活性与对照组相比都受到了显著抑制。说明较高程度的氧化鱼油使草鱼幼鱼组织中自由基的产生和清除之间的平衡被打破,细胞膜受损,抗氧化酶防御系统受到损坏,导致组织中主要的抗氧化酶活性下降。任泽林等[19]研究表明,氧化鱼油可以破坏鲤肝胰脏抗氧化机能使GSH-PX活性下降,但没有显著变化。本研究中,氧化鱼油各处理组中GSH-PX的活性与对照组相比,也没有表现出显著变化,推测原因可能是抗氧化防御系统其他成分如CAT等的介入降低了机体活性氧的浓度,使GSH-PX还未受到明显的影响。
另外,随着鱼油氧化程度的提高,草鱼幼鱼各组织MDA含量变化与SOD、CAT活性变化呈相反的趋势,这与苏传福等[21]、谢巧雄等[22]在草鱼抗氧化方面的研究结果一致。说明鱼体依赖SOD、CAT的协同作用来抑制脂质过氧化进行。 3.3 不同组织中抗氧化酶活性的比较
SOD、CAT和GSH-PX是机体内主要的抗氧化酶,在清除活性氧自由基中发挥重要作用。本研究中,草鱼幼鱼各组织中MDA、T-AOC含量以及主要抗氧化酶活性表现出了组织器官差异性,其从大到小排列如下:MDA含量:血清、肠道、肌肉、肝胰脏、肾脏;T-AOC含量:肝胰脏、血清、肠道、肾脏、肌肉;SOD活性:血清、肝胰脏、肾脏、肌肉;CAT活性:肝胰脏、肾脏、血清、肠道、肌肉;GSH-PX活性:肝胰脏、血清、肾脏、肠道。赵燕静等[23]在研究中比较淇河鲫不同器官组织SOD、CAT、GSH-PX活性时,结果显示活性从大到小的组织为:肝胰脏、肾脏、肌肉;王妤等[24]研究发现点篮子鱼不同组织中SOD和CAT活性在肝脏中最高,肾脏次之,肌肉中最低,与本试验结果一致。表明草鱼幼鱼抗氧化酶活性具有组织特异性,这与不同组织的生理功能差异有关。
对本试验结果中氧化鱼油对草鱼幼鱼各组织中MDA含量、T-AOC含量、SOD活性、CAT活性等综合比较,发现草鱼幼鱼肝胰脏中多种抗氧化酶活性高于肾脏、肌肉、肠等组织,氧化鱼油POV为49.72 mmol · kg-1时T-AOC、SOD、CAT活性较对照组均显著下降,POV为144.64 mmol · kg-1时MDA含量即显著提高,而其他组织多是在POV为345.45 mmol · kg-1时有显著变化,可见低氧化程度的鱼油即对肝胰脏产生较强烈的氧化损伤,说明肝胰脏对氧化鱼油诱导的氧化应激比较敏感,与Gao等[25]研究结果一致。因此可以认为肝脏是发挥抗氧化防御作用的主要组织。原因是肝脏在机体内承担着代谢、排泄和解毒等重要生理功能,最能反映机体的营养生理和病理状态[26]。
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