亚慢性砷暴露对大鼠海马组织BDNF表达的影响
张金雷, 卢秀娟, 阮文丽, 吴红玲, 周华芳     
贵阳医学院公共卫生学院环境卫生学教研室
摘要: 目的 探讨亚慢性饮水型砷暴露对大鼠海马组织BDNF表达的影响。方法 将40只SD大鼠按体重随机分为4组, 分别为对照组(蒸馏水)和2.4、12、60 mg/L亚砷酸钠溶液染毒组, 每组10只, 雌雄各半, 采用自由饮水的方式连续染毒100 d。检测脑砷含量、海马组织BDNF mRNA及蛋白表达。结果 各染砷组大鼠脑砷含量均高于对照组(P<0.05), 且脑砷含量随着染毒剂量的增加呈上升趋势; 各染砷组大鼠海马组织BDNF mRNA及其蛋白表达均低于对照组(P<0.05)。结论 亚慢性砷暴露可引起大鼠海马组织BDNF mRNA及其蛋白表达的降低。
关键词: 亚慢性砷暴露     脑砷     脑源性神经营养因子    
Sub-chronic Arsenic Exposure on BDNF Expression in Rats Hippocampus
ZHANG Jinlei, LU Xiujuan, RUAN Wenli, WU Hongling, ZHOU Huafang     
Abstract: Objective To explore the expressions of BDNF in the hippocampus of rats caused by sub-chronic arsenism. Methods Forty SD rats were randomly divided according to body weight into 4 groups:a control group(treated with distilled water) and three arsenic exposure groups(exposure to NaAsO2 in distilled drinking water at 2.4, 12 and 60 mg/L for 100 days) with 5 female and 5 male rats in each group. The levels of brain arsenic, BDNF mRNA and the expression of BDNF protein in hippocampus were detected. Results Compared with the control group, the level of brain arsenic in all arsenic exposure groups was higher significantly(P < 0.05). BDNF mRNA and the expression of BDNF protein in hippocampus of all arsenic exposure groups was lower than the control group(P < 0.05). Conclusion BDNF mRNA and the expression of BDNF protein in rat hippocampus could be depressed by sub-chronic arsenism.
Key words: sub-chronic arsenism     brain arsenic     BDNF    

砷可以通过胎盘屏障或血脑屏障在脑组织中蓄积,从而影响儿童脑发育和神经递质合成和分泌,对儿童智力及神经系统的正常发育产生不良影响[1],其中一个主要表现就是学习记忆减退[2],但其毒性作用机制仍处于研究阶段。由德国神经生物学家Barde于猪脑中发现的脑源性神经营养因子(brain derived neurotrophic factor,BDNF)主要分布在大脑皮质、海马组织等部位,对学习记忆有促进作用[3]。本研究通过观察砷暴露后大鼠海马区BDNF的表达,初步探索砷致学习记忆损害的可能机制,为预防和治疗砷神经毒性引起的中毒提供理论依据。

1 材料与方法 1.1 主要仪器与试剂

Real-Time PCR检测系统(杭州博日科技有限公司)、紫外分光光度仪(日本Shimadzu公司)、凝胶成像系统(法国Mat公司)、微波消解仪(ETHOS A)、电感耦合等离子体发射光谱仪(VISTA-MPS SPECTROME)。

亚砷酸钠(分析纯,上海晶纯试剂有限公司)、砷标准应用液(1 000 μg/L,国家标准物质研究中心)、SYBR Premix Ex Taq试剂盒(Takara公司)、TriZol试剂盒(美国Invitrogen公司)、M-MLV试剂盒(杭州沃森生物技术有限公司)、考马斯亮蓝蛋白测定试剂盒(南京建成生物工程研究所)、脑源性神经营养因子酶联免疫分析(ELISA)试剂盒(南京建成生物工程研究所)。

1.2 动物分组及处理

选择健康清洁级4—6周龄SD大鼠40只,雌雄各半,体重在100 + 20 g(由贵阳医学院动物实验中心提供,实验设施合格证编号为SYXK(黔)2012-001,动物合格证编号为SCXK(黔)2012-001,实验经贵阳医学院伦理委员会批准实施,编号为:1307003),适应性饲养1周后,将大鼠按体重随机分为4组,分别为对照组(蒸馏水)和2.4、12和60 mg/L亚砷酸钠溶液暴露组,即低、中、高剂量组,每组10只大鼠,雌雄各半,每笼5只,分笼饲养。采用自由饮水的方式连续染毒100 d。饲养环境温度为20℃~25℃,湿度为60%~65%。

1.3 样品收集

乙醚麻醉大鼠,颈椎脱臼处死大鼠,断头后迅速取出脑组织,称重,放入装有冰浴生理盐水的培养皿中漂洗,并沿大脑纵裂垂直切为左右两个半球,游离并取出海马组织,称重后分装,储存于-70℃冰箱,备用。

1.4 脑砷含量测定

称取脑组织0.3 g,加入6 mL硝酸和2 mL过氧化氢,放置过夜,次日放入微波消解仪中消解。每次至少有1个样品空白。消解后用去离子水定容至25 mL。采用电感耦合等离子体发射光谱法(ICP -AES)[4]测定标准系列和样品的光度值,以标准曲线计算样品中砷的含量。同时消化生物成分分析标准物质茶叶(GBW 10016) 和杨树叶成分分析标准物质(GBW 07604)[5],控制消化条件,保证回收率在90%~110%范围内。

1.5 大鼠海马组织BDNF mRNA表达的测定

1.5.1 RNA的提取及逆转录合成CDNA

按TriZol试剂盒进行RNA的提取,按M-MLV试剂盒进行逆转录合成cDNA。

1.5.2 引物设计

使用Primer Express 2.0软件设计引物,以β-actin作为RT-PCR的内参标准。实验引物由北京鼎国昌盛生物科技有限责任公司合成,引物序列见表 1

表 1 BDNF和β-actin基因的引物序列
基因名称 引物 序列 长度(bp)
BDNF Primer F 5’-GGGGTTAGGAGAAGTCAAGC-3’ 570
Primer R 5’-CAGTGGGACTCCAGAAGACA-3’
β-actin Primer F 5’-TCCTCCTGAGCGCAAGTACTCT-3’ 126
Primer R 5’-GCTCAGTAACAGTCCGCCTAGAA-3’

1.5.3 实时荧光定量RT-PCR检测

按Takara公司的SYBR Premix Ex Taq试剂盒进行。PCR反应检测采用BIOER(杭州博日科技有限公司)公司的Real-Time PCR检测系统,PCR反应条件为95℃预变性10 min,95℃变性15 s,60℃退火1 min,40个循环。采用相对定量法比较染毒组与对照组BDNF mRNA表达水平,样品中目的基因相对于内参照基因的拷贝数为2-ΔCt,Δct=ct(目的基因三次循环平均值)-ct(内参基因三次循环平均值);染毒组样品的基因表达相对于对照组的变化倍数为2-ΔΔCt,ΔΔct=Δct染毒组-Δct对照组。

1.6 海马组织BDNF蛋白表达的测定

考马斯亮蓝法测定海马组织总蛋白浓度;ELISA法测定海马组织BDNF蛋白的表达。

1.7 统计方法

采用SPSS 17.0进行统计分析,以α=0.05为检验水准,实验数据以均值±标准差(x±s)表示,组间比较采用单因素方差分析(one-way-ANOVA),与对照组比较采用LSD法。

2 结果 2.1 脑砷含量变化

各染毒组大鼠的脑砷含量均较对照组高,并随染毒剂量的增加而升高(P<0.05;表 1),差异具有统计学意义。

表 1 各实验组脑砷检测结果(x±s)
组别 例数(只) 脑砷(μg/g)
对照组 10 1.36±0.81
低剂量组 10 2.47±0.78a
中剂量组 10 3.73±0.90ab
高剂量组 10 5.00±1.19abc
  注:a与对照组比较,P<0.05;b与低剂量组比较,P<0.05;c与中剂量组比较,P<0.05

2.2 大鼠海马组织BDNF表达的测定

2.2.1 海马组织总RNA纯度及完整性鉴定

提取的总RNA电泳可见3条清晰条带,无基因组DNA污染,完整性良好;紫外光检测RNA的纯度,所有样品A260/A280值均在1.8~2.0之间,符合后续实验对RNA质量的要求(图 1)。

图 1 海马组织总RNA完整性及纯度鉴定

2.2.2 BDNF基因扩增效率

将荧光定量RT-PCR产物进行real time PCR,得到BDNF基因的扩增曲线和溶解曲线(图 2图 3)。BDNF的扩增曲线呈“S”形,表明各基因的动力学曲线整体平行性较好,曲线拐点清楚,基线平无明显上扬趋势。溶解曲线呈单峰状,表明有特异性扩增产物,无引物二聚体及其他非特异性扩增产物。

图 2 BDNF基因扩增曲线

图 3 BDNF基因熔解曲线

2.2.3 大鼠海马组织BDNF的表达水平

染毒组海马BDNF mRNA及其蛋白的表达均低于对照组,差异有统计学意义(P<0.05;表 2)。其中染毒组BDNF mRNA的相对表达量较对照组减少,差异有统计学意义(P<0.05),高剂量组和中剂量组BDNF蛋白表达较对照组、低剂量组低,差异有统计学意义(P<0.05)。

表 2 各染砷组大鼠海马组织BDNF蛋白和mRNA表达水平
组别 例数(只) BDNF蛋白含量(μg/g) BDNF mRNA(2-ΔΔCt)
对照组 6 15.97±0.88 1.04±0.30
低剂量组 6 12.24±2.08ac 0.16±0.11a
中剂量组 6 7.65±0.39ab 0.30±0.17a
高剂量组 6 8.59±1.18ab 0.13±0.019a
  注:a与对照组比较,P<0.05;b与低剂量组比较,P<0.05;c与中剂量组比较,P<0.05

3 讨论 3.1 砷暴露量与脑砷的关系

大鼠通过饮水给砷染毒100 d后,脑组织内砷含量增加,并随着染砷浓度增加而增加,这与杨瑞英等[6]研究结果相符,提示砷能通过血脑屏障在脑组织中蓄积。尽管在大脑皮层、海马组织、基底神经节和下丘脑各区含量不同,但呈现明显的剂量关系[7]

3.2 亚慢性砷暴露对BDNF表达的影响

BDNF分子单体是由119个氨基酸残基组成的分泌型成熟多肽,分布在中枢神经系统、周围神经系统、内分泌系统、骨和软骨组织等广泛区域内,但主要是在中枢神经系统内表达,其中海马组织和皮质的含量最高[8]。BDNF作为神经营养因子家族的一员,不仅能够促进神经干细胞的增殖、迁移和分化,促进多种神经元的存活和生长发育,而且能促进突触的可塑性,改变脑内神经元的形态,增加突触终末的密度和促进树突和轴突的生长[9]。近年来BDNF越来越受到关注,他参与可塑性机制和长时程增强效应(LTP)的形成和维持。LTP具有时程长和联合的性质,因此不少研究者把LTP与学习和记忆联系起来,认为他是研究学习、记忆的分子模型。BDNF能通过调节突触后NMDA受体、启动MAPK转导等途径参与LTP的机制,影响学习与记忆功能[10]。宁晓霞等[11]的研究结果表明BDNF及受体TrkB的表达,与学习记忆能力的程度呈平行的线性关系。相关研究也已证实,BDNF能够调节突触传递易化长时程增强效应(LTP),在海马组织的LTP中起关键的作用[12]。这些结果表明海马组织的BDNF的表达对学习记忆能力有重要作用。此外,BDNF还能增加大鼠海马组织胆碱能突触释放乙酰胆碱,BDNF与乙酰胆碱之间存在着正反馈作用,从而对认知功能有保护作用[13],用BDNF处理的低密度培养的胚胎胆碱能神经元ChAT酶活力水平可提高2~3倍[14]

本研究结果显示,砷暴露组大鼠海马组织BDNF mRNA及蛋白表达均较对照组下降。提示亚慢性砷暴露导致大脑海马组织BDNF表达下调,可能影响大鼠学习记忆能力。本课题组前期研究[15]已表明,砷暴露引起大鼠海马组织AChE活性升高,导致乙酰胆碱含量下降。由此推测BDNF下调也可能通过减少大鼠海马组织胆碱能突触释放乙酰胆碱,从而影响大鼠学习记忆功能。

4 结论

综上所述亚慢性砷暴露可致大鼠海马组织BDNF mRNA及其蛋白的表达下调,而海马组织BDNF表达的下降可能是砷致学习记忆能力受损的机制之一。

参考文献
[1] 李昕, 李冰, 郑全美, 等. 燃煤型砷中毒患者甲基化能力与中毒症状间相关性的研究[J]. 中国地方病防治杂志, 2011, 4(2): 81–83.
[2] 唐孝威, 孙达. 学习记忆[M]. 认知科学导论, 2011, 152.
[3] Lu Y, Christian K, Lu B. BDNF:a key regulator for protein synthesis-dependent LTP and long-term memory[J]. Neurobiology of Learning and Memory, 2008, 89(3): 312–323. doi: 10.1016/j.nlm.2007.08.018
[4] 云南省质量技术监督局. DB 53T 288-2009食品中铅、砷、铁、钙、锌、铝、钠、镁、硼、锰、铜、钡、钛、锶、锡、镉、铬、钒含量的测定[S]. 中华人民共和国地方标准备案公告2009年(第06号)(总第114号), 中国标准化, 2009, 8: 43-48.
[5] 施燕支, 郭雪清, 王艳泽, 等. 微波消解/电感耦合等离子体质谱法测定白芍中的微量元素[J]. 现代科学仪器, 2006(1): 97–98.
[6] 杨瑞英, 李子杰, 林勤, 等. 砷中毒大鼠体内各脏器、组织中砷的分布[J]. 中国地方病学杂志, 2005, 20(5): 260–262.
[7] Biswas U, Sarkar S, Bhowmik MK, et al. Choronic toxicology of arsenic in goats:clinico-biochemical changes, pathormporphology and tissue residues[J]. Small Ruminant Res, 2000, 38(3): 229–235. doi: 10.1016/S0921-4488(00)00162-0
[8] 符彬莎, 李玲. 脑源性神经营养因子与脑损伤的研究现状[J]. 医学综述, 2011, 17(8): 1140–1142.
[9] Mertz K, Koschenk T, Schilling K. Brain derived neurotrophic factor modulates dendritic rumplalogy of cerebellar basket and stellate cells. Aninviron study[J]. Neur Science, 2000, 97(2): 303–310.
[10] 秦锦标, 周红. 脑源性神经营养因子在长时程增强中的作用[J]. 东南大学学报(医学版), 2007, 26(5): 389–393.
[11] 宁晓霞, 师社会, 邢亮, 等. BDNF、TrkB在大鼠海马CA3区的表达及其与学习记忆的关系[J]. 陕西医学杂志, 2008, 37(9): 1130–1132.
[12] Tongiorgi E. Activity-dependent expression of brain-derived neurotrophic factor in dendrites facts and open questions[J]. Neurosci Res, 2008, 61: 335–346. doi: 10.1016/j.neures.2008.04.013
[13] Sarah JT, Trevor H, Catherine HH, et al. Hippocampal neurotrophin and trk receptor mRNA levels are altered by local administration of nicotine, carbachol and pilocarpine[J]. Molecular Brain Res, 1999, 67: 124–136. doi: 10.1016/S0169-328X(99)00048-0
[14] Thoenen. Neurotrophins and neuronal plasticity[J]. Science, 1995, 270(5236): 593. doi: 10.1126/science.270.5236.593
[15] 周华芳, 余堃, 张华, 等. 亚急性砷中毒对脑海马和皮质AChE、NOS活性影响[J]. 中国公共卫生, 2012, 28(3): 349–350. doi: 10.11847/zgggws2012-28-03-41
DOI: 10.13421/j.cnki.hjwsxzz.2015.02.001
中国疾病预防控制中心主办。
0
张金雷, 卢秀娟, 阮文丽, 吴红玲, 周华芳
ZHANG Jinlei, LU Xiujuan, RUAN Wenli, WU Hongling, ZHOU Huafang
亚慢性砷暴露对大鼠海马组织BDNF表达的影响
Sub-chronic Arsenic Exposure on BDNF Expression in Rats Hippocampus
环境卫生学杂志, 2015, 5(2): 85-88
Journal of Environmental Hygiene, 2015, 5(2): 85-88
DOI: 10.13421/j.cnki.hjwsxzz.2015.02.001

相关文章

工作空间