铬是人体必需微量元素,但过量供给将产生毒性。研究发现六价铬(Cr6+)化合物是一种重要的环境污染物,且易被人体吸收,饮用Cr6+含量超标的水可引起人体组织的损伤[1]。早在80年代曾对西部某县当地人群中的Cr6+蓄积水平进行了调查,结果显示在长期饮用Cr6+超过国家标准2.58~9.70倍的饮水人群中,发铬蓄积含量随饮水Cr6+含量增高而增高[2]。上述研究仅调查了当地人群发铬的蓄积水平,并未深入调查研究。近几年的饮用水监测结果显示,该地区部分地方饮水铬含量仍然超标。因此本文对该县饮水Cr6+暴露人群肝肾功能及氧化应激状况进一步深入调查分析,为政府相关部门解决当地长期遗留的饮用水改水问题提供科学依据。
1 对象与方法 1.1 调查对象以西部某县中12个生活饮用水Cr6+含量超标点中随机抽取3个水源点作为暴露组;并以饮用水Cr6+含量未超标、与暴露组相邻的2个水源点作为对照组,每个水源点各抽取60名村民。要求调查对象在本地居住10年以上、两组的性别比例、年龄结构相近, 且排除因病毒、急性损伤等原因引起的肝肾相关疾病。
1.2 方法 1.2.1 饮用水中Cr6+含量测定根据《生活饮用水标准检验方法》(GB/T 5750 -2006)[3]中二苯碳酰二肼可见分光光度法测定。采样之前将容器用10%的盐酸浸泡8 h,再用蒸馏水清洗干净待用。采集村民现阶段饮用水库水,打开水库阀门取适量水样(中段水)装入检测容器中,立即带回实验室检测。对于不能及时测定的水样0℃保存。
1.2.2 尿铬测定现场用聚乙烯塑料瓶(采样前已用10%硝酸浸泡24 h以上,并用纯水冲洗、晾干保存)采集晨尿50 mL,并以9 :1比例加入硝酸(优级纯),混匀后-20℃冷冻带回实验室保存。测定方法依据《尿中铬石墨炉原子吸收光谱法(AAS)》(WS/T 37 -1996)[4],测定仪器为石墨炉原子吸收光谱仪(美国瓦里安AA240Z)。
1.2.3 肝肾功能检测现场采集空腹静脉血5 mL,离心分离血清,4℃冷藏带回实验室保存,肝肾功能指标检测采用全自动生化分析仪(德国利霸-350);检测参数包括:谷丙转氨酶(ALT,U/L)、谷草转氨酶(AST,U/L)、尿素氮(BUN,mmol/L)、肌酐(CRE,μmol/L)、尿酸(UA,mmol/L)。β2-微球蛋白(β2-MG,μg/L)测定方法采用酶联免疫法,测定仪器为酶标仪(芬兰MK3),所用试剂盒由南京建成生物科技有限公司提供,并按试剂盒操作说明进行检测。
1.2.4 氧化应激水平测定现场采集空腹静脉血5 mL,离心分离血清,4℃冷藏带回实验室保存;检测指标包括:血清丙二醛(MDA,nmol/mL)含量、谷胱甘肽过氧化物酶(GSH-Px,U/L)、过氧化氢酶(CAT,U/mL)、谷胱甘肽-S转移酶(GST,U/mL)和总超氧化物歧化酶(T-SOD,U/mL)活性。以上指标均采用分光光度法测定, 所用仪器为721分光光度计。所用试剂盒由南京建成生物科技有限公司提供,并按试剂盒操作说明进行检测。
1.3 判定标准饮水Cr6+含量判定依据《生活饮用水卫生标准》(GB 5749-2006)[5],超过0.05 mg/L为超标。
1.4 质量控制现场调查前对调查员、采样人员和检验员进行培训,以统一调查和检验标准;采样器材均采用一次性用品,避免互相污染;实验室检测前对仪器进行校准,以保证数据的信度和效度。
1.5 统计方法采用SPSS 18.0软件进行数据录入和统计分析, 计量资料符合正态分布采用x±s表示,均数比较采用t检验或方差分析,偏态分布资料采用非参数秩和检验;计数资料用率、构成比表示,率的比较采用χ2检验。检验水准α=0.05为差异有统计学意义。
2 结果 2.1 饮用水中Cr6+含量5个水源点共采集10份水样(每个水源点丰水期(6—9月)和枯水期(3—5月各1份),其中对照组4份全部合格,合格率为100%。暴露组饮用水中Cr6+质量浓度均超过生活饮用水卫生标准,平均超标为2.82~3.22倍(表 1)。
| 分组 | 水源点编号 | 水源类型 | 水样类型 | 供水覆盖人口 (人) |
样品数 (份) |
饮水中Cr6+质量浓度(mg/L) | 超标样品数 (份) |
平均超标倍数 | |
| 范围 | (x±s) | ||||||||
| 暴露组 | 1 | 水库 | 出厂水 | 6 308 | 2 | 0.160~0.161 | 0.1615±0.0007 | 2 | 3.2~3.22 |
| 2 | 水库 | 出厂水 | 10 310 | 2 | 0.142~0.149 | 0.1455±0.0049 | 2 | 2.84~2.98 | |
| 3 | 水库 | 出厂水 | 1 380 | 2 | 0.141~0.142 | 0.1415±0.0007 | 2 | 2.82~2.84 | |
| 对照组 | 4 | 水库 | 出厂水 | 2 584 | 2 | 0.013~0.023 | 0.0180±0.0071 | 0 | 0 |
| 5 | 水库 | 出厂水 | 6 956 | 2 | 0.001~0.002 | 0.0015±0.0007 | 0 | 0 | |
2.2 尿铬含量结果分析
该饮水人群尿铬含量比较结果显示:暴露组明显高于对照组(Z =-4.078,P =0.000;表 2)。
| 例数 (例) |
范围(μg/L) | 尿铬含量(x±s) | 中位数(M) | 95%上限 | |
| 暴露组 | 184 | 0.001~290.42 | 4.34±25.43 | 0.307 | 8.76 |
| 对照组 | 109 | 0.001~4.408 | 0.41±0.62 | 0.270 | 1.27 |
2.3 肝肾功能损伤情况
两组人群肝肾功能指标比较结果显示:检测结果均在正常参考值范围,但暴露组中ALT、CRE和β2-MG显著高于对照组(P <0.01;表 3)。
| 指标 | 参考范围 | 暴露组 | 对照组 | t | P |
| ALT(U/L) | 0~40 | 17.86±20.95 | 11.35±15.84 | -2.772 | 0.006** |
| AST(U/L) | 0~40 | 17.06±18.65 | 13.13±14.03 | -1.881 | 0.062 |
| BUN(mmol/L) | 1.69~8.34 | 4.38±2.19 | 4.08±1.50 | 1.370 | 0.172 |
| CRE(μmol/L) | 50~132.6 | 75.92±20.48 | 67.95±18.65 | -3.290 | 0.001** |
| UA(mmol/L) | 140~420 | 236.78±75.275 | 235.91±69.47 | 0.097 | 0.922 |
| β2-MG(μg/L) | 20~400 | 103.60±32.03 | 81.83±24.31 | 6.369 | 0.000** |
| 注:**饮水Cr6+暴露组显著高于对照组,P<0.01 | |||||
2.4 饮水Cr6+对外周血氧化应激损伤的影响
外周血氧化应激损伤的影响指标比较结果显示:暴露组中GSH-Px活性显著高于对照组(P<0.01),而外周血CAT的活性暴露组明显低于对照组(P <0.01),外周血MDA含量、GST和SOD活性在两组之间差异无统计学意义(P >0.05;表 4)。
| 内容 | 暴露组 | 对照组 | t值 | P |
| MDA(nmol/mL) | 5.26±1.39 | 5.15±0.99 | -0.539 | 0.591 |
| GSH-Px(U/L) | 125.04±23.97 | 116.12±19.85 | 2.791 | 0.006** |
| CAT(U/mL) | 3.54±3.06 | 4.96±4.33 | -2.845 | 0.005** |
| GST(U/mL) | 18.83±11.17 | 16.25±10.19 | 1.774 | 0.077 |
| SOD(U/mL) | 121.02±28.92 | 125.82±26.52 | -1.360 | 0.175 |
| 注:**饮水Cr6+暴露组和对照组差异显著,P<0.01 | ||||
3 讨论
Cr6+经口摄入后,在机体中发挥毒作用的靶器官主要是肝脏和肾脏。王晓峰等[6]通过体外实验证实Cr6+可以诱导肝细胞凋亡及降低肝细胞存活率;王心如等[7]研究发现短期接触高剂量或长期接触低剂量水溶性Cr6+还可以引起动物肾损伤。本次调查中,西部某县饮水Cr6+超出国家生活饮用水标准限值,暴露组人群尿铬含量明显高于对照组,进一步对肝肾功能指标分析,虽然结果均未超出参考值范围,但暴露组中ALT、CRE和β2-微球蛋白值显著高于对照组,可能是饮水铬暴露在一定程度上阻碍肝肾组织对于氧的正常利用,但组织中自由基水平下降不明显,机体未出现因细胞凋亡而导致的明显肝肾功能损伤,而是否存在机体肝肾损伤的接触限值尚未清楚,有待于进一步探究证实。
Cr6+具有较强的穿透能力, 容易进入细胞, 并且本身具有较强的氧化性。丙二醛(MDA)是脂质过氧化的终产物之一, 测定MDA含量既可反映机体内脂质过氧化程度, 又可间接反映细胞受损伤的程度。王禹等[8]实验研究表明,饮水暴露Cr6+后雌雄大鼠血浆MDA含量均随重铬酸钾(K2Cr2O7)染毒剂量增加而升高;贾光等[9]在职业接触工人氧化应激水平研究中同样发现暴露组MDA含量显著升高。本次调查结果与上述研究相一致,但两组差异无统计学意义, 可能原因为:① 饮水铬暴露以长期、低浓度为主;② 接触途径以消化道为主,接触途径单一;③ 自然环境恶劣、人群生活水平较差等多种因素的影响,暴露组人群整体MDA平均含量偏低,以此掩盖了暴露组外周血MDA含量高于对照组的真相。GSH-Px、CAT是体内重要的抗氧化酶类,他们在体内的水平显著升高或降低时,会引起生理、生化反应和新陈代谢紊乱,甚至导致DNA、酶蛋白和生物膜的过氧化损伤。本次研究中暴露组GSH-Px活性显著升高、CAT活性明显降低,两者在反映饮水暴露Cr6+的机体氧化损伤上较敏感,提示GSH-Px和CAT今后有可能作为饮水暴露Cr6+的早期效应生物标志物。
综上所述,饮用Cr6+超标2.82~3.22倍的饮水人群肝肾功能损伤不明显,但会影响GSH-Px、CAT等氧化应激指标,对机体产生氧化应激损伤。
| [1] | Costa M. Potential hazards of hexavalent chromate in our drinking water[J]. Toxic OLAP Pharmaco, 2003, 188(1): 1–5. doi: 10.1016/S0041-008X(03)00011-5 |
| [2] | 张京川, 王明清, 于光祥, 等. 饮水中六价铬在人发中的蓄积水平[J]. 宁夏医学杂志, 1989, 11(1): 47–48. |
| [3] | 中华人民共和国卫生部, 中国国家标准化管理委员会. GB/T 5750-2006生活饮用水标准检验方法[S]. 北京: 中国标准出版社, 2007. |
| [4] | 中华人民共和国卫生部, 中国国家标准化管理委员会. WS/T 37-1996尿中铬石墨炉原子吸收光谱法[S]. 北京: 中国标准出版社, 1997. |
| [5] | 中华人民共和国卫生部, 中国国家标准化管理委员会. GB 5749-2006生活饮用水卫生标准[S]. 北京: 中国标准出版社, 2007. |
| [6] | 王晓峰, 傅文宇, 朱欣, 等. 六价铬对大鼠肝细胞体外的毒作用[J]. 癌变·畸变·突变, 2005, 17(6): 343–345. |
| [7] | 王心如, 徐锡坤, 王守林, 等. 急性铬化物暴露肾毒效应的生化评价[J]. 中国公共卫生学报, 1996, 15(6): 336–338. |
| [8] | 王禹, 金凌之, 宋鹏, 等. 饮水暴露六价铬对SD大鼠外周血DNA损伤和氧化应激的影响[J]. 环境与职业医学, 2013, 30(2): 117–121. |
| [9] | 宋艳双, 王天成, 贾光, 等. 职业接触铬酸盐对机体氧化损伤及其与叶酸等物质代谢的关系[J]. 中华预防医学会自由基预防医学专业委员会2012年夏季学术交流会议, 2012: 110–112. |



