全球铝的应用极其广泛,人们每天都在接触铝,除工矿企业污染环境,如电解铝厂等生产过程会排放铝、氟等元素之外,甚至人们生活中使用铝制餐具、食品、食品添加剂等,都会成为人体铝的来源。自从发现老年痴呆症(AD)患者大脑里沉积大量铝之后,人们才开始探讨铝与AD之间的关系,并提出AD的铝中毒学说,用铝来复制AD模型。老年痴呆症(AD)又称阿尔茨海默病(Alzheimer),是老年人中常见的疾病,以认知能力迅速减退和记忆功能丧失为特征,以老年斑、神经纤维缠结和神经元丢失为病理改变(特别在大脑海马部位)[1]。由于发病机理极其复杂,尚未研究清楚,文献中提出有多种发病学说,如基因遗传学说、胆碱能神经学说[4]、自由基学说、铝中毒学说、铅中毒学说等[2],因而尚无根治药物;铝中毒学说中铝与AD发病的直接关系尚缺乏证据。若揭示两者间的直接关系,阐明其机理,并通过排铝方法防治此病,具有重要的现实意义。文献虽然报道了不少相关研究[2],获得了不少证据,但在海马部位形态学变化以及此部位变化引起的(ChAT)活力及脑铝含量变化的对比关系,以及治疗后的效果,尚缺少直接的有力数据。本实验用氯化铝拌饲料喂养小鼠复制AD模型,用具有排毒功能的中药复方提取液海尔福(专利号:ZL 200410013166.3) 治疗,与前人研究不同,本次测定大脑ChAT等生化指标,并和铝含量对比,在形态学变化方面,除观察大脑皮质变化外、重点观察海马部位的变化,以探讨铝的作用机理和评价治疗效果。
1 试剂与方法 1.1 试剂氯化铝、乙酸、硝酸、国产分析纯。乙酰胆碱转移酶(ChAT)试剂盒、乙酰胆碱酯酶(AchE)试剂盒、总胆固醇试剂盒,购自南京建成生物工程研究所。
1.2 实验动物及分组选用昆明种小鼠80只,右江民族医学院动物实验室提供,动物实验许可证SYXK桂2011—0010,动物生产许可证号:SCXK桂2012—0003。鼠龄3个月,雌雄各半。分成正常组、模型组、实验1组、实验2组。各鼠编号称体质量,分笼喂养,每笼5只,均用右江民族医学院动物室提供的混合饲料喂养。
1.3 中药海尔福复方提取液制备由金银花、茯苓、甘草、杨桃果等中药经加水煮沸提取。提取条件:药物干品称重,放煮药锅内,加10倍量水,加热煮沸60 min,将药液取出,药渣再加5倍水,继续加热煮沸30 min,取出药液,二次药液合并,过滤后放浓缩锅内加热浓缩,至每毫升含1 g生药浓度,取出冷却,药液经用95%乙醇沉淀,过滤去沉淀,回收乙醇,冷却后过滤药液加水定容,灌封灭菌等过程制成中药海尔福复方提取液,分1号和2号,配方剂量定容为1 g/mL生药(1号)和0.1 g/mL生药(2号)。
1.4 AD模型的建立除正常组外,其余3组用16 g/L浓度的AlCl3水溶液,每天按640 mg/kg体重剂量,拌饲料(动物室提供的标准饲料)喂养,直至实验结束,共90 d(3个月)。自由饮用自来水。
1.5 处理方法造模到60 d后,实验1组和实验2组开始分别用海尔福复方提取液1号和2号灌胃,剂量均为0.1 mL/只,1次/d,用蒸馏水稀释至0.3 mL后灌胃,直至实验结束(治疗30 d),正常组和模型组用等量的蒸馏水代替,方法相同。
1.6 实验方法从小鼠眼球后静脉取血0.8~1.0 mL,离心取血清待用。处死动物,取大脑,一部分用10%甲醛处理做病理检查,另一部分大脑保存在冰冻下,用生理盐水洗去血液,并用滤纸吸干水分,称重,在冰浴下用匀浆器匀浆,用生理盐水稀释成10%的匀浆,离心(3 500 rpm/min)10 min,取上清液,4℃冰箱保存备用。测定脑匀浆ChAT的活力,以乙酰辅酶A和胆碱为底物,在ChAT的催化下反应生成物(乙酰胆碱)与显色剂结合,在324 nm处测定吸光度(A),以此计算ChAT活力(U/g组织湿重);脑匀浆AchE活力测定,AchE催化乙酰胆碱水解成胆碱和乙酸,胆碱可以与巯基显色剂反应生成对称三硝基苯(TNB)黄色化合物,根据颜色深浅比色定量,水解产物胆碱的数量可反映胆碱酯酶的活力;用COD—CE—PAP法测定血清总胆固醇(TC)测定,以上具体操作均按试剂盒说明书;用原子吸收分光光度计测定(novAA400p石墨炉原子吸收分光光度计,德国)脑匀浆铝含量。造模前、造模后和治疗后小鼠的记忆功能,用水迷宫方法[1]测定。
1.7 统计学处理采用SPSS 13.0软件处理,进行方差分析,Q检验,用(x±s)表示。
2 结果 2.1 ChAT和AchE活力测定结果模型组ChAT活力明显低于其它3组,差异有统计学意义(P>0.05;表 1)。
| 组别 | ChAT (U/g组织湿重) | AchE(U/mg·prot) |
| 实验1组 | 85.80±17.62△△ | 0.94±0.15 |
| 实验2组 | 92.71±22.03△△ | 0.95±0.10 |
| 模型组 | 27.63±11.24 | 0.97±0.08 |
| 正常组 | 78.71±25.18△△ | 0.96±0.10 |
| 注:方差分析,ChAT,与模型组比较,△△P<0.01,差异有统计学意义;AchE,各组比较,P>0.05,差异无统计学意义 | ||
2.2 血清TC含量和脑铝含量测定结果
模型组血清TC明显高于其他3组,差异有统计学意义(P<0.01);模型组脑匀浆铝含量明显高于其他3组,差异有统计学意义(表 2)。
| 组别 | 血清TC(mmol/L) | 脑铝含量(μg/L) |
| 实验1组 | 3.25±0.39** | 22.33±2.89△△ |
| 实验2组 | 2.93±0.51** | 95.78±9.21△ |
| 模型组 | 4.21±0.26 | 337.00±12.39 |
| 正常组 | 3.06±0.37** | 64.14±3.90△ |
| 注:方差分析,TC与模型组比较,**P<0.01,差异有统计学意义;脑铝与模型组比较,△P<0.05,△△P<0.01,差异有统计学意义 | ||
2.3 各组水迷宫时间测定结果
造模前各组比较,P>0.05,差异无统计学意义;造模后,造模组(实验1组,实验2组,模型组)比正常组明显延长,△P<0.05,△△P<0.01,差异有统计学意义,同时比造模前明显延长,正常组反而缩短。治疗后,实验组还明显长于正常组,但比治疗前缩短(表 3)。
| 组别 | 造模前 | 造模后 | 治疗后 |
| 实验1组 | 4.30±1.16 | 7.44±2.69△△ | 5.97±1.91△ |
| 实验2组 | 4.36±1.23 | 6.49±2.52△ | 6.22±2.18△ |
| 模型组 | 5.24±1.82 | 6.13±1.78△ | 5.08±1.86 |
| 正常组 | 5.15±1.70 | 4.02±1.41 | 3.81±0.41a |
| 注:方差分析组间比较,造模前,各组比较,P>0.05,差异无统计学意义;造模后与正常组比较,△P<0.05,△△P<0.01,差异有统计学意义;治疗后与正常组比较,△P<0.05,差异有统计学意义。造模组组内与造模前比较,P<0.05,差异有统计学意义 | |||
2.4 脑组织切片检查结果
对照组:大脑皮质及海马区神经细胞、神经胶质细胞无变性、坏死,组织结构及层次未见著变;模型组:大脑皮质及海马区神经细胞、神经胶质细胞弥漫性变性、坏死、核固缩及微小软化灶形成;实验1组:大脑皮质及海马区神经细胞、神经胶质细胞弥漫性变性、坏死、核固缩及微小软化灶形成,与模型组病变程度基本一致,但较轻;实验2组:大脑皮质及海马区神经细胞、神经胶质细胞弥漫性变性、坏死、核固缩,病变程度比模型组、实验1组较轻,图 1-8。
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| 图 1 正常组大脑海马(200倍) |
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| 图 2 模型组大脑海马(200倍) |
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| 图 3 实验1组大脑海马(200倍) |
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| 图 4 实验2组大脑海马(200倍) |
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| 图 5 正常组大脑皮质(200倍) |
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| 图 6 模型组大脑皮质(200倍) |
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| 图 7 实验1组大脑皮质(200倍) |
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| 图 8 实验2组大脑皮质(200倍) |
3 讨论
模型组ChAT明显低于正常组。乙酰胆碱(Ach)是运动神经元、自主神经系统神经节前纤维、副交感神经纤维、中枢神经系统内许多神经元(如基底核、大脑皮层、胆碱能神经系统等)的主要神经递质。而ChAT和AchE分别是Ach的合成酶和水解酶,调节Ach的代谢。通过ChAT的催化,由胆碱和来自线粒体的乙酰辅酶A合成Ach;Ach释放后,刺激特殊的胆碱能受体,传递神经信息,这种相互作用很快被局部的AchE所终止,AchE将Ach水解为胆碱与乙酸盐。Ach的水平由ChAT和AchE以及胆碱的摄取所调控[3]。本实验显示,模型组在高含量铝的作用下,ChAT活性明显降低,因而Ach的合成也会减少。相比之下,正常组和实验组ChAT活性较高。胆碱能神经系统与人的记忆、人的认知能力有关,其功能紊乱,是造成AD发生的关键所在[2, 7],目前发现许多因素均可引起其功能紊乱,如铅,铝等中毒,造成神经递质Ach合成减少,必然会导致记忆、认知能力障碍,最终导致痴呆发生。实验证明[4, 6],高铝会导致大脑AchE活性降低,使Ach分解减少,有可能是Ach合成减少后,机体适应性地降低AchE活性,使Ach降解减慢。但本实验结果表明,AchE活性各组间差异尚无统计学意义(P>0.05),可能是早期尚未得到调节,原因还需进一步探讨。
铝的测定结果显示,模型组铝含量明显高于正常组,与ChAT活性呈负相关,模型组铝含量高,其ChAT活性低,正常组和实验组铝含量低,ChAT活性高。而正常组、实验1组、实验2组之间无明显差异。铝对ChAT活性产生影响,其原因有待探讨[5, 7]。
正常对照组大脑皮质及海马区神经细胞、神经胶质细胞无变性、坏死,组织结构及层次未见著变。模型组大脑皮质及海马区神经细胞、神经胶质细胞弥漫性变性、坏死、核固缩及微小软化灶形成。与模型组比较,实验1组,实验2组病变程度明显减轻,表明铝引起脑组织的损害,经治疗后有一定减轻。铝含量测定结果与形态改变基本相一致,正常对照组铝含量低,脑组织无损害,模型组铝含量最高,脑组织的损害较大。水迷宫测定记忆功能显示,实验开始各组间游水时间无明显差别,即记忆功能无明显差别,但造模后和治疗后,造模各组游水时间明显延长,长于正常组,而正常组治疗后游水时间还明显短于造模前,水迷宫记忆功能测定结果与酶活力,铝含量及形态学变化是一致的。在高铝作用下,模型组大脑皮质及海马区神经细胞神经胶质细胞弥漫性变性、坏死,受到严重的损害,导致ChAT的合成减少,活性降低,其催化的产物Ach减少,Ach是胆碱能神经系统的神经递质,减少后势必造成功能障碍,导致疾病发生,而实验组通过排铝后,细胞损害较轻,相关的各种指标都接近正常组,出现了明显的疗效。但是,动物实验是在较短的时间内(本次是3个月)使用了高含量的铝而造成了如此严重的后果,而人体一般不会如此快速、高含量摄入铝,而是慢性摄入过程,再者生物之间也有特异性,因此人体的发病尚需进一步探讨[8]。
血清总胆固醇模型组明显高于正常组和实验组,其意义有待探讨。目前环境污染形势比较严重,特别是重金属对环境水源、土壤[9]、粮食蔬菜等污染,进而使人类疾病的增加,是不容忽视的。
致谢:病理教研室黄炳臣、黄永秩老师病理片制作、诊断;实验中心姜艳老师使用原子吸收分光光度计测定铝含量
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