军团菌双重荧光定量PCR检测方法的建立与应用
牛莉娅1, 程欣1, 郭玉梅2, 王颖童3, 阮杰1, 亢继文1, 孙殿兴1     
1. 白求恩国际和平医院;
2. 石家庄市疾病预防控制中心;
3. 河北省疾病预防控制中心
摘要: 目的 建立一种特异、快速、敏感,同时能区分嗜肺和非嗜肺军团菌的荧光定量PCR方法,用于检测临床和环境样品。方法 利用军团菌属特异性23S rRNA基因和嗜肺军团菌种mip基因的保守序列,设计引物和TaqMan探针。提取嗜肺军团菌标准菌株(LP1)DNA,分别构建2个含有目的基因的标准质粒作为阳性模板。优化荧光PCR反应条件和反应体系,对方法的特异性、敏感性、重复性进行评价。并对环境水样及80份临床痰样进行检测。结果 该方法检测灵敏度达10标准质粒拷贝数/反应,具有高度特异性、稳定性。整个过程约需2 h。对35份环境水样进行检测,检出3株嗜肺军团菌和3株非嗜肺军团菌,所有水样经传统分离培养法和普通PCR法检测均显示为阴性。对临床80份随机痰液标本进行检测,2份嗜肺军团菌阳性。结论 TaqMan探针荧光定量PCR双管检测是一种可同时区分嗜肺与非嗜肺军团菌的特异、敏感、稳定的方法,可用于基层医院对环境标本及临床痰样的检测。
关键词: 军团菌     荧光定量PCR     TaqMan探针     23S rRNA基因     mip基因    
Construction and Application of Duplex Quantification Fluorescence-PCR Assay for Legionella Detection
Niu Liya1, Cheng Xin1, Guo Yumei2, Wang Yingtong3, Ruan Jie1, Kang Jiwen1, Sun Dianxing1     
Abstract: Objectives To develop a specific, rapid and sensitive real-time fluorescence quantitative PCR assay for the detection of legionella pneumophila (LP) and for the differentiation of it from other legionella spp. in clinical and environmental samples. Methods The primers and TaqMan probes were designed in conservative sequence of LP mip gene and all legionella spp. 23S rRNA gene.Fragments were amplified from the standard strain of LP serotype I by PCR to construct 2 plasmid standards. The PCR reaction conditions and system were optimized.The specificity, sensitivity and reproducibility of the assay were evaluated.Some environmental samples and 80 clinical sputum samples were detected. Results The sensitivity of this real-time PCR assay was 10 copies/reaction.This assay proved to be specific and reproducible. The whole process could be done in about 2 hours. Of the 35 environmental samples for testing legionella, 3 were found to be positive for LP and 3 were found to be positive for other legionella spp. All environmental samples tested by both ordinary PCR and culture method were negative. Of 80 clinical sputum samples detected by this assay, 2 were found to be positive for LP, and all others were negative. Conclusions The study has developed a highly sensitive and specific TaqMan real-time PCR assay, which can detect both legionella at the genus level and LP. This assay could be used for detecting clinical and environmental samples in small hospitals.
Key words: legionella     real-time PCR     TaqMan Probe     23S rRNA gene     mip gene    

军团菌广泛存在于各种天然和人工水体中,其中嗜肺军团菌是引起人类非典型肺炎的重要病原菌[1-2],可经水源传播,引起爆发流行,在公共卫生上意义重大。但军团菌肺炎缺乏典型临床表现,诊断主要依靠实验室检查。传统的细菌培养,特异性好,但培养难度大、阳性率低,仅为50%~60%[3]。普通PCR、酶联免疫等检测技术,存在检测步骤复杂,耗时长、特异性差的不足,缺乏对环境监测和流行病学调查的必要的敏感性[4]。而尿抗原检测仅能检测LP1型抗原,且无法确定是新近感染还是既往感染[5]

近年来,实时荧光PCR技术以其敏感性高、特异性强及耗时短等优点得到广泛应用。本研究将军团菌属23S rRNA基因[6]和嗜肺军团菌mip基因[7]特异性相结合,采用TaqMan探针PCR检测技术,建立一种能同时区分军团菌属及嗜肺军团菌种的快速、敏感、污染小的检测方法,可用于环境调查和各基层医院临床标本的检测。

1 材料与方法 1.1 材料

1.1.1 菌株

嗜肺军团菌血清1型(legionella pneumophila serogroup 1,LP1,ATCC 33152)、嗜肺军团菌血清3型、5型、部分嗜肺军团菌地方株(未分型)、部分非嗜肺军团菌地方株(未分型);阴性对照肺炎克雷伯菌、产酸克雷伯菌、鲍曼不动杆菌、铜绿假单胞菌、大肠杆菌、阴沟肠杆菌、奇异变形杆菌、粪肠球菌、屎肠球菌、金黄色葡萄球菌、肺炎链球菌、弗氏柠檬酸杆菌、空肠弯曲杆菌、脑膜炎奈瑟菌、粘质沙雷菌、阿贡那沙门菌、肠炎沙门菌、副溶血性弧菌为本院实验室提供。

1.1.2 试剂和仪器

军团菌培养基基础粉及BCYE生长添加剂(友康基业生物科技北京有限公司);细菌基因组DNA提取试剂盒、各种限制性内切酶、TaqDNA聚合酶和dNTPs(大连Takara公司);琼脂糖和pGEM®-T载体(美国Promega公司);荧光定量PCR仪(TL 988型,西安天隆科技有限公司)。

1.2 方法

1.2.1 菌株培养

取ATCC 33152菌株划线接种于军团菌(BCYE)生长培养基上,放入恒温箱,CO2浓度5%,温度37℃,湿度80%,孵育3~5 d。取单个菌株传代培养,培养平皿菌液用于提取DNA。

1.2.2 引物与探针设计

选定军团菌属23S rRNA基因,和嗜肺军团菌mip基因的保守序列设计引物和TaqMan探针(表 1)。送上海生工生物工程技术服务有限公司合成。

表 1 RT-PCR检测引物和探针序列
引物和探针名称引物和探针序列 (5′-3′)目的片段大小
Leg23SF forwardCCCATGAAGCCCGTTGAA92 bp
Leg23SR reverseACAATCAGCCAATTAGTACGAGTTAGC
Lep23SP FAM-TAMRATCCACACCTTGCCTATCAACGTCGTAGT
LmipF forwardAAAGGCATGCAAGACGCTATG78 bp
LmipR reverseGAAACTTGTTAAGAACGTCTTTCATTTG
LmipP FAM-TAMRATGGCGCTCAATTGGCTTTAACCGA

1.2.3 DNA模板制备

取菌液1 mL,用细菌基因组DNA提取试剂盒提取DNA,作为模板。

1.2.4 嗜肺军团菌的稀释与计数

取菌量为n×108 cfu/mL(用活菌计数办法估算)的LP1菌液,10倍系列稀释,用各浓度稀释液100 μL涂布培养基,每稀释度做3个平皿,培养5 d后计数。同时取不同稀释度的菌液各1 mL,提取DNA为模板,用做PCR敏感性试验。

1.2.5 标准质粒的构建

以ATCC 33152菌株为模板,分别扩增23S rRNA、mip目的基因,PCR产物纯化回收,连接至pGEM®-T载体,挑取阳性克隆转化至DH5a大肠杆菌中,经蓝白筛选,选择合适菌落提取质粒DNA进行酶切及序列测定,鉴定插入序列,并测定质粒DNA浓度,进行拷贝数的换算。构建2个标准质粒:pUC-Lp-23S、pUC-Lp-mip。

1.2.6 TaqMan探针PCR实验条件的优化

PCR反应时同一模板按2个引物各自反应体系分别配制,双管同时检测,反应条件相同。因TaKaRa公司的荧光定量PCR试剂反应预混液已为最优化,所以本研究对引物和探针用量、热循环参数进行优化,以达到最佳扩增效率。

1.2.7 荧光定量PCR方法验证 1.2.7.1 敏感性检验

分别取梯度含量的质粒标准品进行方法敏感性检测,每个PCR反应中标准品质粒拷贝数依次为100~106个。同时,将1×106 cfu/mL的菌液提取DNA,对不同稀释度进行方法敏感性评价。

1.2.7.2 特异性检验

对6株嗜肺军团菌、6株非嗜肺军团菌及18株其他菌株提取DNA,验证方法的特异性。

1.2.7.3 重复性检验

取3个不同稀释度质粒标准品,对每个稀释度作3次重复检测,计算Ct值的变异系数(Cv)验证检测体系的稳定性。

1.2.8 PCR阳性结果判定 1.2.8.1 普通PCR

电泳条带明显者为阳性,不明显者为阴性。

1.2.8.2 荧光定量PCR

Ct值小于35且扩增曲线良好可直接判定为阳性,Ct值35~37之间需要重复实验,2次实验均能得到良好S型扩增曲线方可判定为阳性。

1.2.9 环境水样及痰样的处理 1.2.9.1 环境水样的处理

取环境水样500 mL,无菌滤纸过滤后,用装有0.3 μm孔径醋酸纤维滤膜的过滤器过滤,剪去滤膜的外围受压部分,将膜转移到灭菌塑料离心管内,加入2 mL灭菌蒸馏水,充分振荡,取1 mL,用试剂盒提取DNA,共35份水样。同时另取同样的水样500 mL送石家庄市疾病预防控制中心做军团菌的菌培养,共35份。

1.2.9.2 模拟痰样的处理

刮取适量LP1菌落于1 mL无菌蒸馏水中,以10倍系列稀释法制成不同浓度的细菌悬液,做活菌计数。将不同浓度的LP1 细菌悬液加入到TaqMan探针PCR结果阴性的临床标本中制成模拟痰标本。Saccomanno液与DTT液等体积混合,1~2倍体积加入到模拟痰样中,震荡液化30 min。用试剂盒提取DNA。

1.2.9.3 临床痰样的处理

Saccomanno液与DTT液等体积混合液按上述方法处理痰样及制备DNA。

2 结果 2.1 PCR最优反应体系和优化的反应条件

最优反应体系见表 2,总反应体积为25 μL(冰上配置)。

表 2 RT-PCR最优反应体系
试剂23S rRNA基因检测mip基因检测
2×Premix Ex TaqTM12.5 μl12.5 μl
上游引物0.5 μl0.7 μl
下游引物0.5 μl0.7 μl
探针1.0 μl1.0 μl
模板2.0 μl2.0 μl
ddH2O8.5 μl8.1 μl
注:优化的反应条件为:95℃ 2 min,1个循环;95℃ 5 s,60℃ 30 s,40个循环

2.2 灵敏度

2.2.1 标准质粒灵敏度

不同稀释度标准质粒做荧光PCR检测,生成扩增曲线(图 1),并绘制标准曲线(图 2),23S rRNA基因检测、mip基因检测标准曲线的相关系数R2分别为0.996、0.990,表明不同浓度质粒标准品在标准曲线上的数据点与曲线拟合良好,最低可检测到10拷贝数/反应载量的质粒标准品。

注:A,以pUC-LP-23S质粒为模板,荧光PCR扩增曲线;B,以pUC-LP-mip质粒为模板,荧光PCR扩增曲线;由左向右各条曲线对应的模板拷贝数分别为106~100 图 1 质粒扩增曲线

注:A,以pUC-LP-23S质粒为模板,根据荧光PCR获得的Ct值绘制标准曲线;B,以pUC-LP-mip质粒为模板,根据荧光PCR获得的Ct值绘制标准曲线;横坐标为质粒拷贝数的对数值,纵坐标为荧光PCR获得的Ct值 图 2 质粒标准曲线

2.2.2 利用活菌进行评价

分别取10-2~10-7稀释度的LP1菌液涂板,菌落计数相应为3 562、690、70、8 cfu/mL。不同稀释度菌液分别提取DNA,用普通PCR和荧光PCR进行检测,普通PCR灵敏度达690 cfu/mL(图 3)。而荧光PCR方法可检测到8 cfu/mL。可见,荧光PCR方法较普通PCR方法灵敏度高。

注:A,从不同稀释度的LP1菌液中提取DNA为模板,普通PCR法扩增23S rRNA基因片段后琼脂糖电泳图像;B,从不同稀释度的LP1菌液中提取DNA为模板,普通PCR法扩增mip基因片段后琼脂糖电泳图像;1—6号样品 菌液菌落计数依次为3.0×105,3×104,3.5×103,6.9×102,7.0×101,8.0×100cfu/mL;M,50 bp DNA marker 图 3 普通PCR检测质粒标准品结果

2.3 特异性

所有嗜肺军团菌23S rRNA基因检测及mip基因检测均为阳性,非嗜肺军团菌23S rRNA基因检测阳性而mip基因检测阴性,而其他非军团菌两种基因检测均呈阴性结果,可见本方法具有良好的特异性。

2.4 重复性

3个稀释度质粒标准品配制反应体系(102拷贝数/反应、103拷贝数/反应、104拷贝数/反应),每个稀释度分别做3次重复检测,结果23S rRNA基 因检测Ct值的变异系数分别为1.235%、2.059%和2.136%;mip基因检测Ct值的变异系数分别为1.153%、1.871%和0.748%。

3 方法的应用 3.1 环境水样的检测

用该方法对采集的35份环境水样进行检测(表 3),结果检出3株非嗜肺军团菌和3株嗜肺军团菌,经重复测定结果相同。而所有水样经传统分离培养法和普通PCR法检测均显示为阴性。

表 3 环境水样检测结果
水样种类采样数(份)阳性数
定量PCR分离培养普通PCR
23S rRNA基因检测mip基因检测
民心河54200
自来水100000
分体空调102100
浴室喷头100000

3.2 痰样的检测

用该方法对不同稀释度菌液模拟痰样检测,菌量为102 cfu/mL及以上浓度的模拟痰样均可检出,再低浓度未见荧光。

对临床80份随机痰液标本进行检测,2份23S rRNA基因检测及mip基因检测均阳性,而其余标本均阴性。对此2例检测阳性患者随访:1例为住院患者,中年男性,诊断为“肺炎”,检测结果回报后即给予左氧氟沙星治疗,治疗半月症状消失,肺部病灶明显吸收,出院;1例为门诊患者,表现为干咳、肌肉酸痛、乏力,门诊给予服用阿奇霉素治疗,治疗7 d后症状消失。

4 讨论

军团菌属数量庞大,致病菌90%以上为嗜肺军团菌[2]。因此,区分嗜肺军团菌与非嗜肺军团菌有非常重要的临床意义。本研究采用军团菌属23S rRNA基因和嗜肺军团菌种mip基因保守序列设计引物和探针,建立了一个具有高度特异性和敏感性、能同时区别军团菌属和嗜肺军团菌种的快速检测方法。该方法对PCR仪器要求不高,普通单通道PCR仪即可实现检测,使基层医院开展军团菌的定量检测成为可能。

本研究所建立的标准质粒,最低能检测到10拷贝数/反应体系;比普通PCR灵敏度高,与国外报道结果一致[8]。荧光定量PCR从根本上解决了普通PCR扩增产物污染和不能定量的问题。本方法具有引物和探针双重特异性,不与其他细菌发生交叉反应,稳定性好,检测快速,整个过程可在2 h内完成。

经验证,本研究建立的方法可用于临床标本检测和环境水源污染情况的调查,对军团菌病的早期诊断、疗效观察和环境监测提供了有效的手段。本次调查石家庄民心河军团菌检出率达80%、嗜肺军团菌检出率40%,分体空调军团菌检出率20%、嗜 肺军团菌检出率10%,自来水及浴室喷头未有军团菌检出。说明环境水源中军团菌普遍存在,而随着经济发展,空调、热水器等人工水环境越来越普及,军团菌污染对人群健康的潜在威胁将越来越重。本研究临床痰标本检出率为2.5%,考虑到痰液为随机抽取,未区分社区获得性与医院获得性,但也说明军团菌是本地区肺炎患者的病原体之一,应引起临床医生的警惕。

参考文献
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中国疾病预防控制中心主办。
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牛莉娅, 程欣, 郭玉梅, 王颖童, 阮杰, 亢继文, 孙殿兴
Niu Liya, Cheng Xin, Guo Yumei, Wang Yingtong, Ruan Jie, Kang Jiwen, Sun Dianxing
军团菌双重荧光定量PCR检测方法的建立与应用
Construction and Application of Duplex Quantification Fluorescence-PCR Assay for Legionella Detection
环境卫生学杂志, 2014, 4(1): 76-80
Journal of Environmental Hygiene, 2014, 4(1): 76-80

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