随着生命科学的发展，各种元素对人体健康影响的研究逐渐广泛。人体血液、尿液、头发、指(趾)甲等生物样品中元素的含量能不同程度地反映元素在人体内的暴露水平，对人体生物材料中元素含量的监测是评价其对人群健康影响，制定某些卫生标准的重要依据。人体生物样品往往样品量小且基质复杂，元素含量低，为ng/g~μg/g量级，给检测带来很大麻烦。
电感耦合等离子体质谱(ICP-MS)是20世纪80年代发展起来的元素分析技术。与传统的无机分析技术如石墨炉原子吸收法、原子荧光光度法等相比具有更低的检出限，更宽的动态线性范围，干扰少，精密度高，分析速度快，可进行多元素同时测定等优点[1]，常用于生物样品中元素含量测定和形态分析。
1 ICP-MS用于生物样品中元素含量测定 1.1 样品前处理生物样品由于基体复杂，必须经过适当的前处理才能进行仪器分析，常用的前处理方法主要是稀释法、湿法消解和微波消解。常见生物样品的前处理方法见表 1。
| 样品 | 元素 | 前处理 | 内标元素 | 参考文献 |
| 全血 | Ca、Fe、Zn、Cu、Mn、Se、Mo、Pb | 500 μL样品+5 mL HNO3进行微波消解，消解结束后赶酸转移定容至10 mL | Sc、Ge、In、Bi | [2] |
| 全血 | Be、Al、Co、Mo、Pb、Cd、V、Cr等14种元素 | 1+19稀释，稀释剂：0.01% TritonX-100+0.1% HN03+ 0.01% EDTA+200 μg/L Au | Li、Sc、Ge、In、Y、Tb、Bi、 | [3] |
| 血浆 | Be、Al、V、Cr、Mn、Co、Ni等20种元素 | 稀释剂：1% (g/L) HNO3+ 0. 01% (v/v) Triton X-100+0.5% (v/v)正丁醇，血浆样品取0.2 mL，用稀释剂稀释至4 mL，混匀待测 | In | [4] |
| 血清和唾液 | Pb、Cd、Cu、Zn、Mn | 取血清和唾液各1 mL，分别装入10 mL比色管中，以1% HNO3(BV-Ⅲ级)溶液稀释至10 mL，摇匀待测 | Rh | [5] |
| 全血 | Al、As、Ba、Cd、Co、Cr、Li、等12种元素 | 1 mL血样加入2 mL HNO3，微波消解后，消解液用去离子水1+9稀释 | Ga、Rh | [6] |
| 血清 | Al、Co、Cr、Mn、Ni、Se | 去离子水1+19稀释 | Ga | [7] |
| 全血、尿液 | Cr、Mn、As、Se、Cd、Hg、Pb | 稀释液：0.01% HNO3+0.1% 2-巯基乙醇+ 0.1% Triton-X 100，血样与稀释液l+9 (v/v)稀释，尿样与稀释液1+4 (v/v)稀释。稀释后7 000 r/min离心10 min，取上清液待测 | In、Bi | [8] |
| 全血 | Pb、Cd、Hg | 稀释剂0.5% (v/v) HNO3+ 0.005%(v/v) Triton X-100+1 mg/L Au；1+49稀释 | Rh、Ir | [9] |
| 全血 | As、Cd、Co、Cr、Cu、等10种元素 | 稀释液：0.5% (v/v) HNO3+ 0.01% (v/v) Triton X-100，1+49稀释 | Rh、Ir | [10] |
| 血浆 | Pr、Nd、Sm、Eu、Gd、Dy等9种稀土元素 | 取1.0 mL血浆于10 mL容量瓶中，定量加入内标In后，以1%(v/v) HNO3稀释至刻度。 | In | [11] |
| 尿液 | V、Cr、Mn、Co、Zn、As、Se、Pb | 300 μL样品加入1 mL HNO3预消解1 h，之后补加1mL H2O2，微波消解样品，消解完毕冷却后转移消解液于5 mL容量瓶中，电热板赶酸至300 μL以下，用2% HNO3转移至离心管中定容3 mL混匀待测。 | In | [12] |
| 尿液 | Cr、Ni | 0.5 mL样品，加入1%的HNO3溶液4.5 mL，混匀待测 | Rh | [13] |
| 尿液 | Sb、Ba、Be、Cd、Cs、Co、等11种元素 | 用含有2% (v/v)双蒸馏的HNO3和10 μg/L内标元素稀释液10倍稀释 | Rh、Ir | [14] |
| 尿液 | As、Ba、Be、Co、Cd、Cu、Cr等22种元素 | 1 mL尿液加入100 μL浓硝酸，500 μL内标溶液，去离子水定容至5 mL | Tb | [15] |
| 尿液 | As | 0.25 mL尿液+2.25 mL稀释剂(2%(v/v)HNO3 +10 μg/L Ga) | Ga | [16] |
| 发样 | Se、Pb、Cd、Mn、Co、Zn、等16种元素 | 准确称取50~100 mg发样，加入1 mL25%(g/L)TMAH，室温消解过夜后1% (v/v) HNO3稀释至10mL | Rh | [17] |
| 趾甲 | As | 洗净的趾甲在层流通风橱内室温干燥后进行冷冻干燥，干燥后用不锈钢的研钵捣成粉末，置于硅胶式干燥器中保存。测量时准确称取粉末(60 mg)左右，加入4 mL HNO3和1 mL H2O2，按设定的程序微波消解，消解液定量转移到聚四氟乙烯管中，置于110℃热平板中蒸发至无液体，加入1 mL 3%(v/v)HNO350℃电热板加热10分钟，超纯水定容至3 mL | Te | [18] |
| 指甲 | Ni、Cu、Mn、Pb、Zn、Cd | 10~20 mg指甲+1 mL0.25%(g/L)TMAH室温静置过夜，1%(v/v)HNO3定容至10 mL | Rh | [19] |
| 肺癌患者肺组织 | Li、B、Cr、Fe、As、Cd、Ba、Pb、U等33种元素 | 从冰箱中取出肺组织样品，用组织剪剪碎，放入真空冷冻干燥机中低温干燥48 h，取出研磨成粉状并记下干重。称量0.10 g样品置于消解管中，加入1.5 mL浓HNO3、2 mL过氧化氢(30%)和1 mL超纯水，放入微波消解系统进行消解。消解完毕冷却后取出，移至聚乙烯塑料瓶中，加超纯水稀释，用称重法定容至30 mL，静止24 h后分析。 | Rh、Re | [20] |
| 乳腺组织 | Ag、As、Cd、Co、Cu、Cr、Mn、Mo、N、Pb、Se、Zn | 0.1~1 g组织超纯水洗涤并在60℃干燥至恒重后研磨3分钟至直径小于100 μm的颗粒，于密闭的聚四氟乙烯管4℃保存准确称取(20~30 mg)样品与聚四氟乙烯管中加入0.3 mL HNO3，微波消解 | Ge、Rh、In | [21] |
| 人肝脏组织 | Cr、Mn、Fe、Ni、Cu、Zn、Rb、Pb | 冷冻干燥的肝组织(0.5~2 mg干重)准确称量置于6 mL聚四氟乙烯的消化管中，加入100 μL浓硝酸，置于含10 mL纯水的120 mL的大消化罐中进行微波消解，消解液定容至1 mL，取200 μL消解液超纯水稀释至4 mL | Y | [22] |
| 指甲、发样 | Li、Be、B、Na、As、Se、Rb、Sr、Y、Zr, 、Nb、Mo等71个元素 | 丙酮、去离子水和0.5% Triton X-100依次洗涤后，超纯水反复冲洗，100级洁净房间干燥；取500 mg左右的样品于消化管中，加入0.5 mL HNO3和0.5 mL H2O2，微波消解(325 W消解30 min)消解液冷却后加入9 mL去离子水，定量转移于聚苯乙烯管中待测 | In | [23] |
1.1.1 直接稀释法
直接稀释法多用于血液、尿液等液态生物样品。稀释剂除了超纯水和HNO3外，还可以加入表面活性剂或有机试剂，以增加灵敏度。除了酸性稀释剂，碱性稀释剂也逐渐开始使用。如：四甲基氢氧化铵(Tetramethyl ammonium hydroxide，TMAH)可使有机质中的酯键、酰胺键、醚键水解和甲基化，并能打破蛋白质中的二硫键[24]。McShane等[25]使用含0.25%(g/L)TMAH和0.05%(v/v)Triton X-100的稀释剂稀释全血样品50倍，并在稀释剂中加入0.01%(g/L)焦赖氨酸二硫代氨基甲酸铵(ammonium pyrolidinedithiocarbamate，APDC)消除Hg等元素的记忆效应，建立了快速测定全血中Pb、Hg、Cd元素的方法。对于发样、指甲、肝脏等内脏组织，TMAH也有较好的消解效果[26-27]。Rodrigues等[26]将发样置于0.25%(g/L)TMAH的溶液中过夜后，使用1%(v/v)HNO3中和过量的碱液，并将消解液定容后上机测定，在4个工作日内可以完成至少500个样品的测定。由此可见，稀释法的优点是简单快速，适合于大批量样品的测定，并且能减少样品污染和元素损失的风险。稀释法的缺点在于样品的基体效应不能很好的消除，有机质含量较多的基体如全血样品等还可能造成进样锥孔的堵塞。
1.1.2 湿法消解湿法消解常使用的酸解体系包括硝酸—硫酸、硝酸—高氯酸、硝酸—盐酸、硝酸—氢氟酸，硝酸—过氧化氢等，因盐酸和硫酸增加了如35Cl16O+、40Ar35Cl、40Ar37Cl、34S18O+、32S2+等多原子离子干扰，从而影响V、Cr、As、Se等元素的测定，因此湿法消解中最常使用硝酸。硝酸—过氧化氢体系也常被使用。张秀武等[28]加入浓HNO3 2 mL和30% H2O2 1 mL于0.5 mL全血样品中，放置于控温电热板上，逐渐升温至120℃，样品消解完全。D′Ilio[29]等使用超纯HNO3过夜预消解全血样品后，加入1 mL 30% H2O2在60℃下消解3 h，也达到理想的消解效果。作为比较经典的消解方式，湿法消解适用的样品类型广泛，但消解的时间较长，通常几个小时到十几个小时不等，且消耗试剂量大。消解后通常有赶酸的步骤，在敞开的环境下操作会增加元素的损失或者样品的污染。
1.1.3 微波消解微波消解系统可在高温高压下迅速消解样品，除了减少试剂使用量以外，还能减少As、Hg等元素的挥发。借助这种方法可以快速消解血液[30-31]、尿液[32]、头发和指甲[33]、组织和器官[20-21]等多种生物样品。微波消解比湿法消解更为快速和完全，消解过程可自动化控制，有逐渐取代传统湿法消解的趋势。
1.2 ICP-MS测定血浆、尿液、唾液等样品常直接稀释后进样测定，样品与标准曲线的基体差异可能影响测定结果的准确度。样品中存在的有机分子和高盐基体带来的分子离子干扰增加了测定的难度。消除的方法主有3点：一是通过基体匹配的方法使标准曲线的性质与样品一致或者接近；二是通过加入有机试剂来增加元素的灵敏度；三是使用碰撞/反应池(Collision/Reaction Cell)、动态反应池(Dynamic Reaction Cell，DRC)等技术消除干扰。
柳洁等[3]在稀释中加入表面活性剂Triton X-100和金属络合剂EDTA增强元素的分析信号，碰撞/反应池技术来消除质谱干扰，建立了全血中14种有毒重金属元素的快速测定方法，各元素检出限在0.04~0.98 μg/L，标准参考物质的分析结果准确。宋娟娥等[4]在酸性稀释剂中加入正丁醇作为碳素的来源来改善实际样品和标准品之间的匹配性。但是这种元素增敏剂的效果却并不见得稳定，如王小燕等[8]发现1.4-丁二醇、甲醇等有机溶剂在增加了As、Se的信号强度的同时，对其他元素信号也产生了一定的抑制作用。使用动物血作为标准曲线溶液的基体进行匹配的方法也有报道[9-10]。William等[25]则使用了健康成人血进行基体匹配，建立了适用于职业暴露中毒、环境污染等突发事件的Cd、Pb和Hg元素应急检测方法，并得到了多家实验室的验证。但是标准曲线匹配难以找到空白值低的，与样品基体相同或者类似的基体进行匹配。
由于As、Ni、Se等元素测定时往往存在质谱干扰，需要借助碰撞/反应池、动态反应池或者高分辨率质谱等手段对干扰进行校正。Heitland等[34]采用碰撞反应池消除高盐基体的干扰，快速、可靠地测定了尿液中23个痕量元素，建立了大批量尿液连续测定的方法。动态反应池技术可以选择多种反应气体如氨气(NH3)、甲烷气(CH4)、氢气(H2)、氧气(O2)等[35]。Batista等[10]使用直接稀释的前处理方法处理全血样品，标准模式下同时测定多种微量元素，标准参考样品Cr、Cu、V、Zn测定结果不理想，通过使用NH3作为反应气，动态反应池模式测定，结果的准确度均符合要求，并建议每次测定都应对DRC参数进行优化以达到最佳的干扰校正效果。Jarrett等[16]使用Ar2-H2混合气为DRC反应气消除尿液As含量测定中的ArCl+干扰。通过比较不同的Ar2/H2的体积比对测定结果的影响，发现使用100% Ar2或者90% Ar2-10% H2时测定结果准确度最佳。Olesik等[36]介绍了使用DRC消除质谱干扰的方法建立，包括选择合适的反应气体，质谱通带的调整和载气流速的选择优化等。
高分辨率ICP-MS(ICP-HR-MS)如扇形场电感耦合等离子体质谱(SF-ICP-MS)可有效的分离目标谱线和干扰谱线，几乎可以解决所有的质谱干扰问题[37]。Rodushkin等[23]利用微波消解对人发和指甲样品进行前处理，扇形磁场双聚焦电感耦合等离子体质谱法(ICP-SMS)测定了71种元素，通过实验室间测定结果的对比和人发标准参考物质考察了方法的准确性。
2 ICP-MS用于生物样品中元素形态分析许多元素的生物活性或者毒性很大程度上取决于其不同的化学形态，如甲基汞、乙基汞等有机汞化合物的毒性远大于无机汞，无机砷的毒性大于砷甜菜碱等有机砷化合物。因此，检测元素的不同形态化合物对于考察元素在环境和生物体中的化学行为具有重要意义，形态分析也成为当前化学分析的热点研究领域之一。由于高效液相色谱(HPLC)出色的分离能力和ICP-MS的高灵敏度，HPLC-ICP-MS联用已成为目前形态分析技术中最有前景的手段之一。目前形态分析主要关注于As、Se、Hg等元素，HPLC-ICP-MS在人体生物样品的应用见表 2。
| 元素种类 | 元素形态 | 基质 | 色谱条件 | 参考文献 |
| Se | SeⅣ、SeⅥ、SeCys、TMSe+、Sesuger1、Sesuger3 | 血清 | 阳离子交换柱，PRP-X200，流动相：20 mM甲酸铵内含3%甲醇，pH=3.0；阳离子交换住，Ionospher 5C，流动相：10 mM吡啶，pH=2.5；阴离子交换柱PRP-X100，流动相10 mM磷酸盐1%甲醇, pH=5；阴离子交换柱PRP-X100，流动相20 mM磷酸盐, pH 6.0；反向色谱柱Atlantis C18，流动相20 mM甲酸铵, 3%甲醇, pH 3.0 | [38] |
| SeAlb、GPx、SelP | 血清 | SynergiHydro-RP C18柱，缓冲液(A)：0.05 mol/ L醋酸铵(pH=7)；淋洗液(B)：1.5 mol/ L醋酸铵(pH=7) 梯度洗脱反相离子对色谱：0.1% PFPA内含2%CH3OH | [39] | |
| MeSeCys、SeⅣ、SeⅥ、L-SeMet、D-SeMet | 人血清、尿液 | Phenomenex Luna C18，流动相A：0.075%四乙基氯化铵，pH=4.5流动相B：0.01%2-巯基乙醇和0.06 M醋酸铵，内含5%甲醇，梯度洗脱 | [40] | |
| SeⅥ、SeⅣ、SeCys、SeMet、SeUr、TmSe+ | 人血清、尿液 | RP18反相柱，流动相为0. 1% HFBA，含甲醇0.3%(v/v)和2%(v/v) | [41] | |
| As | As(Ⅴ)、As(Ⅲ)、MA(Ⅴ)、DMA(Ⅴ)、AsB | 白血病人血细胞血浆 | CAPCELL PAC C18 MG Ⅱ柱，流动相：10 mM丁烷磺酸钠，4 mM丙二酸，4 mM四甲基氢氧化铵，0.5%甲醇，pH=2.0 | [42] |
| AsB、AsC、TMAO、As(Ⅴ)、As(Ⅲ)、MMA、DMA | 尿液 | Hamilton PRP Ⓒ-X100，流动相A：10 mM碳酸铵，10 mM三羟甲基氨基甲烷，pH=8.7；流动相B：10 mM碳酸铵，10 mM三羟甲基氨基甲烷，15 mM硫酸铵，pH=8.0，梯度洗脱 | [43] | |
| As(Ⅲ)、As(Ⅴ)、MMA(Ⅴ)、DMA、AsB | 尿液 | 阴离子交换柱，流动相：1.6 mM磷酸二氢钠，0.16 mM EDTA-Na2，8 mM醋酸钠，2.4 mM硝酸钠和1% (v/v)乙醇，pH=11 | [44] | |
| As(Ⅲ)、As(Ⅴ)、MMA、DMA、AsB、TMAO | 尿样 | 阳离子交换树脂填充Shodex RSpak NN-614柱，流动相5 mM HNO3/6 mM NH4NO3/1.5 mM 2, 6-吡啶二羧酸 | [45] | |
| As(Ⅲ)、As(Ⅴ)、DMA(Ⅴ)、MA(Ⅴ) | 趾甲 | 阴离子交换柱PRP-X100，流动相：硝酸铵，pH=8.65，梯度洗脱 | [18] | |
| As(Ⅲ)、MMA(Ⅴ)、DMA(Ⅴ) | 血清 | Inertsil AS柱，流动相：10 mM丁烷磺酸钠，4 mM丙二酸，4 mM四甲基氢氧化铵pH=3.0 | [46] | |
| As(Ⅲ)、As(Ⅴ)、MMA(Ⅴ)、DMA(Ⅴ) | 人发 | RP-C18柱，0.35 mM硫酸氢四丁基铵，pH=5.75 | [47] | |
| Hg | CH3Hg+ | 发样 | ACE3 C18柱，流动相：1:1(v/v)甲醇：水，含0.01% (v/v)2-巯基乙醇 | [48] |
| Hg2+、CH3Hg+ | 发样标准参考物质 | C18反相柱，流动相：0.06 mol/L醋酸氨，20 μg/L Bi，0.1% (v/v) 2-巯基乙醇的5% (v/v)甲醇—水溶液 | [49] | |
| 注：SeⅣ，Selenite亚硒酸盐；SeⅥ，Selenate硒酸盐；SeCys，Selenocystine硒代胱氨酸；TMSe+，Trimethylselenium-cation三甲基硒；SeAlb，Selenoalbumin，硒白蛋白；GPx，Glutathione peroxidase，谷胱甘肽过氧化酶；SelP，Selenoprotein P，硒蛋白P；MeSeCys，Selenomethylcysteine硒甲基硒代半胱氨酸；SeMet,Selenomethionine硒代蛋氨酸；SeUr,Selenourea，硒代尿素；As(Ⅴ)，Arsenite亚砷酸盐；As(Ⅲ)，Arsenate砷酸盐；MMA(Ⅴ)，Methyarsonate，甲基胂酸；DMA(Ⅴ)，Dimethylarsinic acid，二甲基砷酸；AsB，Arsenobetaine，砷甜菜碱；AsC，Arsenocholine砷胆碱；TMAO，Arsenictrimethide Oxygen，三甲基砷氧；PFPA,pentafluorpropionic acid；CH3Hg+，methylmercury，甲基汞；Hg2+，inorganic mercury，无机汞 | ||||
2.1 样品前处理 2.1.1 血液样品
为分离血液样品中的低分子量化合物，常采用截取滤膜超滤装置去除高分子量物质。如Yoshino等[42]分析白血病人血清和血细胞中的砷形态，使用截留分子量10 KDa的离心过滤装置超滤，滤液直接进样分析。这种前处理方式操作比较简便。高分子的蛋白质也可以通过沉淀法分离。Kokanig等[38]分析血清中的硒形态时，加入乙腈沉淀蛋白，然后取上清液离心冷冻浓缩至干后，用流动相稀释后测定，Selenosugar 1、TMSe+、SeMet、SeⅥ、MeSeCys的加标回收率为73%~103%。但是由于蛋白质沉淀过程导致的损失，SeⅣ的回收率仅为44%。
2.1.2 尿液样品尿液样品通常采用直接稀释或者过滤的前处理方法。如Moreno等[40]将尿样10倍稀释后，再经0.45 μm微孔滤膜过滤，以防止色谱柱的堵塞。Verdon等[43]研究了不同pH对不同砷形态的影响，发现用pH＞7的缓冲液稀释尿样时会促进As(Ⅲ)氧化成As(Ⅴ)，因此选择0.1 M，pH=5的醋酸铵溶液稀释尿液样品，然后冷冻离心5 min，取上清液进行HPLC-ICP-MS的分析。建立的方法对AsC、As(Ⅴ)、As(Ⅲ)、MMA、DMA分离良好，并用于2003—2004年美国国家健康与营养调查研究(National Health and Nutrition Examination Survey, NHANES)中2 557份样品的测定。
2.1.3 发样和指甲样品对发样和指甲这类固态样品中元素形态的提取常用浸提法。首先需要对样品进行洗涤以去除样品的外源性污染。浸提液可以是酸液、碱液或者去离子水。去离子水的提取效率主要受水温影响。在室温或者50℃时不同砷形态回收率较低，而温度较高会导致挥发性成分的损失[47]。超声或者微波的辅助能有效的缩短前处理时间。使用非中性的提取液需要注意pH对不同形态间互相转化的影响。如Qvarnstrom等[50]发现在TMAH对不同Hg形态的提取过程中，pH的调节导致甲基汞和无机汞形态间发生互相转化，因此建议在TMAH提取24 h后再进行pH的调节。de Souza等[51]使用含有0.10% (v/v)HCl，0.05%(g/L)L-半胱氨酸，0.10%(v/v)2-巯基乙醇的溶液浸提发样中的甲基汞和无机汞，超声浸提10 min后，浸提液经0.2 μm的滤膜过滤即可进样，相关标准物质的分析结果显示，提取液中甲基汞和无机汞可在室温中放置4 h而不发生形态改变。Chen等[52]依次使用5 mol/L的盐酸溶液和纯水在室温下超声浸提头发样品，浸提液经0.45 μm的滤膜过滤后，再采用Triton X-114-二乙基二硫代氨基甲酸酯为金属螯合剂(DDTC)浊点萃取体系进行分离和富集，HPLC-ICP-MS分离测定甲基汞、苯基汞和无机汞的检出限可分别达到13 ng/L，8 ng/L，6 ng/L，但乙基汞会浊点萃取过程中损失。
2.2 不同形态ICP-MS的测定使用HPLC-ICP-MS联用技术的困难之一就是接口的问题，即样品溶液经HPLC分离后在线引入ICP的雾化系统导致色谱峰变宽，且大量有机溶剂的引入抑制了ICP-MS的灵敏度，缓冲液中的盐类及大量有机物质可能阻塞进样系统和接口锥孔。为减少仪器耗损和分析时间，Yukihiro等[53]使用挥发性的碳酸氢铵缓冲液，有效减少ICP-MS锥口的积碳现象。Heitland等[54]在流动相中加入乙酸钠和硝酸钠进行基体匹配，加入乙醇提高As的灵敏度，pH调节至11时，能良好避免40Ar35Cl的干扰，建立了HPLC-ICP-MS分析尿液中5种砷形态的方法，在10 min内快速分离出As(Ⅲ)、As(Ⅴ)、MMA(Ⅴ)、DMA、AsB 5种形态。并用于比较不同程度砷暴露人群尿砷的含量和形态[44]，对于非暴露人群来说，尿中砷的主要形态是DMA(Ⅴ)，占81%，其次是MMA(Ⅴ)和无机As。急性砷中毒后尿砷形态主要为As(Ⅲ)和As(Ⅴ)，经药物治疗后砷浓度显著下降，尿液中主要砷形态为MMA(Ⅴ)和As(Ⅲ)。
3 展望从第1台ICP-MS至今已有30 a时间，ICP-MS仪器分析性能和分析方法都飞跃发展，ICP-MS在元素分析领域逐渐占据主导地位。ICP-MS用于生物样品元素含量分析需要克服的主要问题是复杂的样品基体对元素分析的影响。提高样品前处理的效率，发展快速简便而又准确稳定的测定方法将是ICP-MS在元素含量分析的发展方向。随着人们对元素性质和生理功能的进一步了解，ICP-MS与其他分离技术联用在元素形态分析方面的应用也会更加广泛。可以预见，ICP-MS将在评价人体内元素的含量，监测有毒有害金属元素的暴露，研究药物代谢动力学等方面发挥重要作用。
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