甘蔗糖业 2013 Issue (6): 12-18   PDF    
酶解除去蔗汁中的右旋糖酐
岑成福1, 蚁细苗2, 梁达奉2,3 , 黄玉南2, 黄曾慰2, 黄海波1, 林荣珍3    
1. 广西大学轻工与食品工程学院, 广西南宁530004;
2. 广州甘蔗糖业研究所 广东省甘蔗改良与生物炼制重点实验室, 广东广州510316;
3. 广西糖业研发中心, 广西南宁530002
摘要:右旋糖酐对制糖过程以及糖产品的危害早已在国内外引起高度关注。目前除去蔗汁中存在的右旋糖酐最有效的方法是酶解。在单因素实验基础上,通过响应面法优化,建立回归模型,得到应用右旋糖酐酶催化水解蔗汁中右旋糖酐的最佳反应条件:酶剂量0.05U/mL蔗汁、pH5.3、反应时间15min、反应温度51℃。在该条件下,可将蔗汁中含量为800~900mg/kg°Bx的右旋糖酐完全去除。
关键词酶解     右旋糖酐酶     右旋糖酐     响应面法     蔗汁    
Apply Dextranase to Hydrolyze Dextrans in Sugarcane Juice
CEN Cheng-fu1, YI Xi-miao2, LIANG Da-feng2,3 , HUANG Yu-nan2, HUANG Zeng-wei2, HUANG Hai-bo1, LIN Rong-zhen3    
1. Light Industry and Food Engineering College of Guangxi University, Guangxi, Nanning 530004;
2. Guangzhou Sugarcane Industry Research Institute, Guangdong Key Lab of Sugarcane Improvement & Biorefinery, Guangzhou 510316;
3. Guangxi Sugarcane Industry R&D Center, Nanning 530002
Abstract: The hazard of dextran in sugar manufacture has been highly concerned around the world. The application of dextranase is the most effective method to breakdown dextran. The optimization of dextranase to hydrolyze dextran in sugarcane juice was carried out by using response surface methodology. A Box-Behnken factorial designed with four factors and three levels, was used to determine the influence of enzyme dosage (U/mL), pH, temperature (℃) and reaction time (min), and regression model was built. The optimum operational conditions were as follows: enzyme dosage 0.05 U/mL, pH value 5.3, reaction time 15 min and temperature 51℃. In this condition, dextranase can hydrolyze all of 800~900 mg/(kg·°Bx) dextran in sugarcane juice.
Key words: Hydrolyze     Dextranase     dextran     Response surface method     Sugarcane juice    
0 前言

右旋糖酐(又称葡聚糖)是以葡萄糖单体形成 的聚合多糖,分子量由数万到数百万,其粘性随分 子量增大而增大。制糖中出现的右旋糖酐是由肠膜 明串珠菌分泌的右旋糖酐蔗糖酶催化合成产生[1], 它主要存在于砍收后甘蔗、火烧蔗、病虫害甘蔗和 压榨后的蔗汁中。右旋糖酐产生速度很快,在气温 比较高、生产卫生环境比较差的条件下,情况尤为 严重。国内研究人员作过调查发现:人工收割后的 新鲜甘蔗在自然条件下存放24 h后,初压汁中右旋 糖酐含量达到95.4 mg/kg°Bx,48 h 后达到150.3 mg/kg°Bx。机械收割甘蔗24 h 后右旋糖酐含量为 246.6 mg/kg°Bx,48 h后达到400 mg/kg°Bx 以上。 蔗汁中右旋糖酐可以每小时38%~44%的速度增长[2]。右旋糖酐的产生通常还伴随着蔗汁变酸变坏, 因为右旋糖酐蔗糖酶催化作用将蔗糖分子结构一半 的葡萄糖分子聚合形成右旋糖酐,而剩余的另一半 果糖分子随后被分解成有机酸[3]。右旋糖酐的存在 会对制糖生产造成不良后果,如蔗糖损失[4]、旋光 度虚假升高[5]、粘度增大、过滤性降低、影响沉降 速度和清净效率、降低传热效能、延长蒸发煮糖时 间、增加能耗、影响结晶[6]、影响产品的适用性等。

制糖生产中,主要通过提高甘蔗质量、重视生 产车间环境卫生以及使用一定量的杀菌剂,抑制肠 膜明串珠菌等微生物的生长繁殖,以减少甘蔗或蔗 汁中的右旋糖酐含量。但实际上很难做到完全避免 制糖原料中右旋糖酐的存在,尤其在榨季后期。除 去糖液中右旋糖酐最有效的方法是在制糖生产中加 入一定量的右旋糖酐酶,将右旋糖酐水解成小分子 量的寡糖或者葡萄糖单体,可有效地降低右旋糖酐 对制糖生产和产品质量的不良影响[7, 8, 9]。目前国内相 关研究主要应用外国生产的右旋糖酐酶,但是进口 的右旋糖酐酶价格较昂贵。本试验应用本研究室自 主研发生产的右旋糖酐酶进行除去蔗汁中右旋糖酐 的试验,探索其最佳条件,为其在制糖生产的应用 提供科学数据。 1 材料与方法 1.1 材料与仪器

甘蔗汁:广州甘蔗糖业研究所;右旋糖酐酶: 广州甘蔗糖业研究所;标准右旋糖酐:美国法玛西 亚公司;右旋糖酐单克隆抗体免疫比浊检测试剂盒: 广州甘蔗糖业研究所;氢氧化钠,盐酸为分析纯。

MCA-SucroseTM浊度计(配套四面透光型1 cm 的一次性塑料测试皿):美国Midland公司;pH测 定仪:梅特勒-托利多仪器(上海)有限公司;自动 阿贝折射仪:上海精密科学仪器有限责任公司; DK-S24型电热恒温水浴箱:上海精宏实验设备有限 公司;AL104电子分析天平:美国Mettler公司。 1.2 检测方法

右旋糖酐酶酶活测定:DNS法[10];蔗汁右旋糖 酐含量测定:免疫比浊法[11, 12]1.3 实验方法 1.3.1 原料预处理及酶活测定

取新鲜蔗汁,接入少量肠膜明串珠菌,在自然 条件下放置并不定时采样测定其右旋糖酐含量,待 含量达到800~900 mg/kg°Bx(对锤度)时用于实验, 取右旋糖酐酶发酵液准确测定其酶活,并适当稀释, 置于4℃冷藏,并于当天实验使用。 1.3.2单因素试验 1.3.2.1 pH值

取800 mL蔗汁,测定其右旋糖酐含量,再平 均分装到100 mL锥形瓶中,用NaOH或HCl溶液 分别将pH值调到4.5、5.0、5.5、6.0、6.5、7.0、7.5、 8.0,每个样品加入1 mL右旋糖酐酶稀释液(加入 量为0.1 U/mL蔗汁),置于60℃水浴中搅拌10 min, 迅速取出加热煮沸灭活2 min,冷却至室温后分别测 定各组样品的右旋糖酐含量。 1.3.2.2 温度

取5个编号的锥形瓶,分别装入100 mL蔗汁, 测定其右旋糖酐含量,再用NaOH或HCl溶液将pH 值调至6.0,然后分别都加入1 mL右旋糖酐酶稀释 液(加入量为0.1 U/mL蔗汁),分别置于40、45、 50、55、60℃(温度控制±1℃)的水浴中搅拌10 min, 之后操作与1.3.2.1同。 1.3.2.3 反应时间

取6个编号的锥形瓶,分别装入100 mL蔗汁, 测定其右旋糖酐含量,再用NaOH或HCl溶液将pH 值调至6.0,然后分别都加入1 mL右旋糖酐酶稀释 液(加入量为0.1 U/mL蔗汁),分别置于60℃水浴 中搅拌5、10、15、20、25、30 min,之后操作与 1.3.2.1同。 1.3.2.4 物料浓度

各取100 mL蔗汁用精糖将其锤度分别调成15、 20、25、30、35、40、45、50、55、60 °Bx(浓度 控制±1 °Bx)的蔗汁,测定其右旋糖酐含量,再用 NaOH或HCl溶液将pH值调至6.0,然后分别都加 入1 mL右旋糖酐酶稀释液(加入量为0.1 U/mL蔗 汁),再置于60℃水浴中搅拌10 min,之后操作与 1.3.2.1同。 1.3.2.5 酶剂量

取不同右旋糖酐含量的蔗汁(100±50、300±50、 500±50、700±50、900±50、1100±50、1300±50 mg/kg°Bx)各500 mL,准确测定其右旋糖酐含量, 再用NaOH或HCl溶液将pH值调至6.0,再分别将 每个右旋糖酐含量梯度的蔗汁分到5个编号锥形瓶 中,每个编号分别加入右旋糖酐酶稀释液0.2、0.5、 1.0、1.5、2.0 mL(酶加入量分别是0.02、0.05、0.1、 0.15、0.2 U/mL蔗汁),再置于60℃水浴中搅拌10 min,迅速取出加热煮沸灭活2 min,冷却至室温后 分别测定各组样品的右旋糖酐含量。 1.3.3 响应曲面优化试验

响应面法(RSM)是采用多元二次回归方程作 为函数估计的工具,将实验中多因素与指标的相互 关系用多项式近似拟合,依此可对函数的响应值进 行分析,研究因子与目标函数之间因子与因子之间 的相互关系[13]。在单因素对右旋糖酐酶水解右旋糖 酐效果基础上,通过响应曲面法对右旋糖酐酶除去 蔗汁中右旋糖酐的效果进行优化,得到右旋糖酐酶 应用于制糖生产除去蔗汁中右旋糖酐的最佳工艺条 件。响应面分析因素与水平见表1。

表1 Box-Behnken试验设计因素编码及水平
2 结果与分析 2.1 单因素试验 2.1.1 pH对右旋糖酐酶降解右旋糖酐效果的影响

其影响见图1。从图1可知,在加酶量为0.1 U/mL蔗汁、反应温度为60℃、反应时间为10 min 条件下,随着pH升高,蔗汁中右旋糖酐的去除率 先升后降:当pH为5.5~6.0时,右旋糖酐的去除 率最高达到80%以上;此后随着pH升高,右旋糖 酐去除效果逐渐降低;当pH大于7.0时,酶的作用 效果急剧下降。说明右旋糖酐酶在pH为5.5~6.0 的条件下酶的活性最高,该条件与制糖生产过程中 的初压汁、预灰之前混合的pH范围一致。

图1 pH对右旋糖酐酶降解右旋糖酐效果的影响
2.1.2 温度对右旋糖酐酶降解右旋糖酐效果的影响

其影响见图2。结合制糖生产中混合汁及渗浸 稀汁的温度条件,将试验温度范围设计在40~60℃ 之间。从图2可知:在温度为40~55℃范围,随着 温度的升高,右旋糖酐酶的作用效果越来越好,对 蔗汁中右旋糖酐去除率也随之增大,但增加幅度不 显著,去除率从40℃的75.89%提高到55℃的 82.00%;60℃比较55℃右旋糖酐去除率稍有下降。 实验表明在30℃~60℃之间该右旋糖酐酶的稳定性 良好,随着温度的升高酶蛋白的活化分子增加,酶 促反应加快,右旋糖酐去除率随之增加,但当温度 升高到酶蛋白的热变性点时,酶活性开始下降[14]。 温度在40~60℃范围内,该酶均保持较高活性,对 蔗汁中右旋糖酐去除率达到75%以上。

图2 温度对右旋糖酐酶降解右旋糖酐效果的影响
2.1.3 反应时间对右旋糖酐酶降解右旋糖酐效果影响

其影响见图3。从图3看出,在0~5 min范围 内,随着反应时间的增加,右旋糖酐去除率显著增 大,5 min时去除率达到76.35%,反应时间大于5 min 后去除率没有明显增大。酶是一种高效催化剂,在 反应中未被消耗,理论上,随着反应时间的增加, 右旋糖酐的去除率也逐渐增加,但实验结果显示并 非如此,说明在60℃的条件下作用5 min后使该α 右旋糖酐酶活性有所下降。

图3 反应时间对右旋糖酐酶降解右旋糖酐效果的影响
2.1.4 物料浓度对右旋糖酐酶降解右旋糖酐效果影响

其影响见图4。从图4可知:在蔗汁浓度为15~ 35 °Bx范围内,蔗汁浓度的增大对右旋糖酐酶催化 水解右旋糖酐没有明显影响;当蔗汁浓度大于35 ゜Bx,随着浓度的增大,酶促反应速率逐渐下降; 达到65 °Bx时,右旋糖酐的去除率只有34.73%。其 原因可能是在浓度小于35 °Bx时,传质效果良好, 酶与底物接触充分;当蔗汁浓度大于35 °Bx时,随 着浓度增加、粘度增大,酶与底物不能有效充分接 触,或活化水减少使酶促反应下降[15]

图4 物料锤度对右旋糖酐酶降解右旋糖酐效果的影响
2.1.5 酶剂量对右旋糖酐酶降解右旋糖酐效果的影响

其影响见图5。从图5可以看出:在反应温度 为60℃、反应时间为10 min的相同条件下,当蔗汁 中右旋糖酐含量只有89 mg/kg°Bx时,添加酶剂量 为0.02 U/mL对蔗汁,右旋糖酐去除率达100%;当 蔗汁中右旋糖酐含量为494 mg/kg°Bx时,添加酶剂 量为0.02 U/mL对蔗汁,去除率37.25%;当加酶量 为0.05 U/mL对蔗汁可去除全部右旋糖酐;当蔗汁 右旋糖酐达到870~1508 mg/kg°Bx时,添加0.05 U/mL对蔗汁的酶剂量,亦可去除80%以上右旋糖 酐;当加酶量增加到0.1 U/mL对蔗汁时,可全部除 去蔗汁中的右旋糖酐。

图5 酶剂量对右旋糖酐酶降解右旋糖酐效果的影响
2.2 响应面优化试验[16, 17] 2.2.1 模型的建立与显著性分析

根据Box Benhnken的中心组合试验设计原理, 综合单因素试验影响结果,选择酶剂量(A)、酶解 pH(B)、酶解反应时间(C)和酶解反应温度(D)4 个因 素,进行3水平响应面分析试验,利用Design Expert 软件试验数据进行二次多元回归拟合,得到右旋糖 酐酶作用的效果模型,即蔗汁中右旋糖酐去除率与 自变量A、B、C、D 的二次回归方程: R1=97.35+11.73A+0.34B+4.74C-34.69D-1.63AB-2.14 AC+2.57AD-2.01BC+0.91BD-0.027CD-3.11A2-9.40B2-1.513C2-42.98D2

方差分析及显著性检验结果见表2、表3。结 果 表明:该回归模型极显著(P<0.0001),其决定系数 为R2=0.9759,Pred R2=0.8611,说明该模型预测性 良好;变异系数C.V<10%,表明实验数据的变异性 程度小。因此可以用该模型分析和预测右旋糖酐酶 水解蔗汁中右旋糖酐的效果。此外,一次项A、D 以及二次项A2、D2对右旋糖酐酶作用效果影响极显 著;一次项C和二次项B2对右旋糖酐酶作用效果影 响显著;交互项均不显著,说明各因素之间相互作 用不明显。

表2 回归方程方差分析

表3 模型的可信度分析

图6为响应面立体分析图及等高线图。通过观 察可以直观地反应A、B、C、D各因素对响应面值 的影响,如图6所示。从图6-1、6-2和6-3可知: 随着酶剂量的增加,酶解作用效果越来越明显,对 蔗汁中右旋糖酐的去除率越高,可观察到立体图向 酶剂量增加方向上扬趋势;当酶剂量一定时,随着 酶解pH值的增加,酶解作用对右旋糖酐去除率先 增大后减小,在pH 5.5处达到最高;随着酶解反应 时间的增加,右旋糖酐去除率也随之增加,但是超 过13 min后变化趋势很微弱,原因可能是反应13 min后酶活有较大损失;随着酶解反应温度的增加, 右旋糖酐去除率先增大后减小,在53℃达到最大; 从图6-4、6-5和6-6可以看出:酶解pH值固定时, 右旋糖酐去除率随时间的增加而增加、随着温度的 增加先增加后降低,在53℃处达到最高;当酶解反 应温度一定时,随着酶解pH增大右旋糖酐去除率 先增大后减小,在pH5.5达到最大,去除率随着反 应时间的增加而增加。从响应面立体图可看出,右 旋糖酐去除率对酶剂量(A) 及酶解反应温度(D)2 个 因素较敏感,曲面较陡;酶解反应时间和酶解pH 代表的曲面比较平缓,说明在4.5~6.5pH范围内, 该右旋糖酐酶较稳定且催化活性较高,5 min酶解反 应可分解大部分右旋糖酐。

图6 响应面立体分析图及等高线图
2.2.2 最佳响应值的确定

通过软件分析出右旋糖酐酶水解蔗汁中右旋糖 酐的最佳工艺条件:酶剂量为0.05 U/mL蔗汁,pH 为5.31,反应时间为14.94 min,反应温度为:51.35 ℃。根据优化条件进行验证试验,将条件选为:酶 剂量为0.05 U/mL蔗汁,pH为5.3,反应时间为15 min,反应温度为51℃,蔗汁右旋糖酐含量为859 mg/kg。试验结果表明,5组平行试验中4组样品酶 解反应后检测不出右旋糖酐,1 组测出7.21 mg/kg°Bx,所以在该优化条件下,右旋糖酐酶可以 很有效地除去蔗汁中右旋糖酐。 3 结论

通过单因素实验探讨了右旋糖酐酶剂量、酶解 pH、酶解反应时间、酶解反应温度和物料浓度对应 用右旋糖酐酶水解蔗汁中右旋糖酐效果的影响,并 在此基础上采用响应面法试验设计建立主要因素对 酶解作用效果影响的预测模型,确定了最佳工艺条 件:酶剂量为0.05 U/mL蔗汁,pH为5.3,反应时 间为15 min,反应温度为51℃,在此条件下可将蔗 汁中859 mg/kg°Bx的右旋糖酐除去。该工艺条件适 合在制糖生产压榨工段应用右旋糖酐酶,除去混合 汁中存在的右旋糖酐,为进一步研究右旋糖酐酶在 制糖工业上应用提供参考。

参考文献
[1]CLARKE M A, ROBERTS E J, GOLDSHELL M A, et al. Sucrose loss in manufacture of cane sugar[J]. Sugar Y Azucar 1980, 75:64-68. (1)
[2]梁达奉, 曾练强, 郭亭, 等. 葡聚糖对制糖工业的影响及对策(上)[J]. 甘蔗糖业, 2008(3):28-33. (1)
[3]EGAN B T. Gum content and pH as measures of the losses due to sour storage rot[J]. Proc Queensland Soc. Sugar Cane Technol 1967, 35:31-37. (1)
[4]贺湘, 赵振刚, 于淑娟, 等. 葡聚糖酶在甘蔗混合汁澄清中的应用[J]. 生物工程, 2012, 33(9):175-179. (1)
[5]周文红, 刘慧霞, 张建法, 等. 葡聚糖含量使糖度测定值虚假增加的影响研究[J]. 广西蔗糖, 2009(3):38-41. (1)
[6]GILLIAN E. Deterioration of cane juice -sources and indicators[J]. Food Chemistry, 2002, 78:95-103. (1)
[7]CLARKE M A, EDYE L, COLE F, et al. Sugarcane factory trials with dextranase enzme[J]. Sugar Journal, 1997:20-22. (1)
[8]MADHU G L, PRABHU K A. Application of dextranase in the removal of dextran from cane juice[J]. Internatonal Sugar Journal, 1986, 1025:136-138. (1)
[9]GILLIAN E, ADRIAN M, BELISARIO M. Application of dextranases in sugarcane factory: Overcoming practical problems[J]. Sugar Tech, 2009, 11(2):135-141. (1)
[10]黎志德, 蚁细苗, 黄思鸿, 等. 聚乙二醇一硫酸铵双水相体系萃取α-葡聚糖酶[J]. 甘蔗糖业, 2013(1):38-42. (1)
[11]LIANG D F, YAN J H, ZENG L Q. Generation of anti-dextran monoclonal antibody and development of immunonephelometry for quantitative detection of dextran[J]. International Sugar Journal, 2011, 113:1354. (1)
[12]柳颖, 蚁细苗, 林荣珍, 等. 免疫比浊法定量检测葡聚糖的研究[J]. 甘蔗糖业, 2013(5):1-2. (1)
[13]慕运动. 响应面方法及其在食品工业中的应用[J]. 郑州工程学院学报, 22(3):91-94. (1)
[14]张佳程, 师进生. 食品物理化学[M]. 北京:中国轻工 业出版社, 2007:50-54. (1)
[15]GILLIAN E, ADRIAN M, BELISARIO M. Application of dextranases in sugarcane factory: Overcoming practical Problems[J]. Sugar Tech, 2009, 11(12):135-141. (1)
[16]孙海涛, 邵信儒. 响应面法优化超声波提取山核桃壳色素工艺[J]. 东北林业大学学报, 2012, 40(2):75-77. (1)
[17]贺湘, 赵振刚, 于淑娟, 等. 葡聚糖酶应用于甘蔗混合汁的工艺优化[J]. 食品工业科技, 2012, 33(4):330-335. (1)
(本篇责任编校:朱涤荃)