肿瘤防治研究  2017, Vol. 44 Issue (12): 850-854
本刊由国家卫生和计划生育委员会主管,湖北省卫生厅、中国抗癌协会、湖北省肿瘤医院主办。
0

文章信息

G蛋白耦联受体与肿瘤的研究进展
Research Progress of G Protein-coupled Receptor and Cancer
肿瘤防治研究, 2017, 44(12): 850-854
Cancer Research on Prevention and Treatment, 2017, 44(12): 850-854
http://www.zlfzyj.com/CN/10.3971/j.issn.1000-8578.2017.17.0262
收稿日期: 2017-03-13
修回日期: 2017-09-23
G蛋白耦联受体与肿瘤的研究进展
熊鹏1, 李国良2, 朱明闯2, 朱珉2     
1. 430000 武汉,华中科技大学同济医学院附属武汉中心医院重症医学科;
2. 430030 武汉,华中科技大学同济医学院附属同济医院胸外科
摘要: G蛋白耦联受体(G protein-coupled receptor, GPCR)家族是真核生物中最大且最具多样性的膜蛋白家族,具有7个α螺旋跨膜结构域,具有广泛的生物学功能。近年来,越来越多的研究表明GPCR的失调与癌症相关,其可能作为原癌基因或抑癌基因参与到肿瘤的发生与发展的过程中,且GPCR具有多样化的信号机制。本文简要总结了GPCR多样化的信号机制,多个GPCRs参与到肿瘤发生和发展中的研究进展。
关键词: G蛋白耦联受体     肿瘤     信号机制    
Research Progress of G Protein-coupled Receptor and Cancer
XIONG Peng1, LI Guoliang2, ZHU Mingchuang2, ZHU Min2     
1. Intensive Care Unit, The Central Hospital of Wuhan, Tongji Medical College, Huazhong University of Science and Technology, Wuhan 430000, China;
2. Department of Thoracic Surgery, Tongji Hospital, Tongji Medical College, Huazhong University of Science and Technology, Wuhan 430030, China
Corresponding author: ZHU Min, E-mail: mzhu@tjh.tjmu.edu.cn.
Abstract: The G protein-coupled receptor (GPCR) family is the largest and most diverse family of membrane proteins in eukaryotes. It has seven α-helix transmembrane domains and a wide range of biological functions. In recent years, more and more studies have shown that the disorders of GPCRs are related to cancer, which may be involved in the development and progression of tumors as proto-oncogenes or tumor suppressor genes, and GPCR has a diverse signaling mechanism. This paper briefly summarizes the diverse signaling mechanism of GPCRs, and recent research progress of a number of GPCRs in the development and progression of tumor.
Key words: G protein-coupled receptor     Cancer     Signal mechanism    
0 引言

G蛋白耦联受体(G protein-coupled receptor, GPCR)家族是真核生物中最大的一类膜蛋白家族,至少编码800个人类基因,其中仍有超过140种GPCR的内源性配基仍未明确,这类GPCR称为孤儿GPCRs(orphan GPCRs, oGPCRs)。多种胞外信号或者特异性配体能与GPCR结合,激活G蛋白异源三聚体及下游的第二信使,在行为、视觉及肿瘤发生发展等多种生理病理过程中发挥着重要的作用。GPCR具有七个跨膜α螺旋立体结构,肽链的氨基端位于膜外,羧基端位于胞质,在第五和第六个跨膜螺旋的胞内环及肽链的羧基端,这两处结构存在G蛋白(鸟苷酸结合蛋白)结合位点[1]。根据序列相似性,GPCR主要分成四个类型:A类视紫红质样受体、B类分泌素受体、C类代谢型谷氨酸受体、D类Frizzled受体。由于GPCRs特殊的结构、信号机制的多样性和功能的多样化,目前市场上有30%~50%的药物靶向GPCRs及其耦联的下游信号分子,但基于GPCRs设计的治疗肿瘤的靶向药物相对较少。因此,更好地理解GPCRs在肿瘤发生、发展中的作用及分子机制,将有助于设计有效的用于肿瘤预防和治疗的靶向药物。本文简要综述了GPCR多样化的信号机制,多个GPCRs参与到肿瘤发生和发展中的研究进展。

1 GPCR信号机制的多样性

细胞外配体(第一信使)、GPCRs、G蛋白、第二信使及附属蛋白之间的复杂交互作用促使GPCRs信号机制的多样化。

早前的研究表明,不同的细胞外信号分子结合GPCRs,GPCRs耦联G蛋白调节不同的细胞内信号通路,发挥不同的生物学效应。研究发现,一些GPCRs,如1-磷酸鞘氨醇受体1,仅耦联一个G蛋白;然而,有的GPCRs如溶血磷脂酸受体,能耦联多个G蛋白,以触发不同的下游信号级联[2]。G蛋白由GαGβGγ三个亚单位组成,Gα亚单位又分为四个亚家族:Gαs, Gαi/o, Gαq/11和Gα12/13,每一个Gα亚单位家族成员能传递不同的GPCR信号至下游信号分子,触发不同的信号通路。Gαs亚单位能激活腺苷酸环化酶(AC),增加环腺苷一磷酸的生成,而Gαi/o亚单位则抑制AC的活性,降低环腺苷一磷酸的生成。Gαq/11亚单位激活磷脂酶C(PLC),引起细胞内钙离子释放和多个蛋白激酶的激活,如蛋白激酶C等。Gα12/13亚单位参与Rho家族和小GTPases的活化。Gα亚单位四个亚家族能分别传递不同的细胞内信号,且GβGγ亚单位也可触发不同的下游信号级联,包括PI3K-AKT、PLCβ、AC和离子通道,从而调节不同的细胞功能。

β-arrestin蛋白在调控GPCRs信号级联中发挥重要作用。GPCRs激活后,GPCR激酶使相应的受体发生磷酸化,β-arrestin蛋白家族可介导GPCR-G蛋白解耦联,终止G蛋白信号。β-arrestin蛋白家族还能通过内化受体,招募信号蛋白,触发G蛋白非依赖性的GPCR信号级联,在促进GPCR信号级联中发挥重要作用。

研究证实,G蛋白信号调控蛋白(regulator of G protein signaling proteins, RGS)在负向调节GPCRs信号级联中发挥重要作用。RGS能加速GTP酶的活性,GTP的水解作用使G蛋白失活[3]。除此之外,研究表明,RGS蛋白可作为一种动力支架,一方面,作为效应激动剂竞争性结合激活的Gα亚单位,阻断下游信号;另一方面,促进Gα亚单位激活与失活状态的快速周期化,调节GPCRs信号级联[4]

不同的配体-GPCRs受体相结合,不同G蛋白亚单位的信号耦联,G蛋白信号调控蛋白参与调控信号级联,以上多种因素导致GPCRs信号机制的多样化。

2 GPCR参与肿瘤发生、发展

大量研究揭示GPCRs、G蛋白及其下游信号分子参与肿瘤的发生和发展[5-9]。一方面,GPCRs通过激活MAPKs,AKT/mTOR和Hippo信号通路影响细胞的异常增殖和生存;另一方面,GPCRs可通过改变细胞骨架和激活Rho GTPases,促进肿瘤侵袭和转移[10]。除此之外,GPCRs能促进肿瘤血管生成,为肿瘤的生长和转移提供营养物质及转移路线[10]

2.1 GPCR促进肿瘤增殖

多项研究表明,多个有丝分裂原如多肽激素、生物活性脂类介质和神经递质,作用于GPCR及其下游的Gαq/11和Gα12/13亚单位,引起多种细胞增殖。Liang等[11]研究揭示,通过构建GPCR48过表达质粒,转染前列腺癌细胞系Du145和PC-3中,发现GPCR48过表达促进细胞增殖和抑制细胞凋亡。同时,GPCR48过表达上调了AKT,mTOR和GSK-3β(glycogen synthase kinase 3β),这表明GPCR48介导下游PI3K信号通路,促进肿瘤细胞增殖。Dho等[12]证实GPR171在肺癌组织中过表达,通过使用抗GPR171抗体拮抗GPR171后,抑制了肺癌细胞增殖,在小鼠移植瘤模型中则抑制了肿瘤进展。

还有研究表明GPR137在前列腺癌[13]、肝癌[14]、胰腺癌[15]等多种肿瘤中具有促癌效应,促进癌细胞增殖和抑制凋亡,促进肿瘤发生、发展。有研究证实,使用慢病毒RNA干扰技术敲减成神经管细胞瘤细胞系Daoy中GPR137基因,细胞增殖和克隆形成明显受到抑制,且G0/G1期细胞比例增加,S期细胞比例减少,亚G1期凋亡细胞明显增加[16]

GPCRs可激活多个MAPK信号级联控制细胞的生长和迁移。如一组丝/苏氨酸激酶ERK1/2、JNK1-3、p38α-δ MAPKs和ERK5,可连接细胞表面GPCRs与转录因子。多个MAPK在细胞增殖和转移中发挥重要作用,且在恶性肿瘤中常见其异常表达。PI3K-AKT-mTOR信号通路在细胞的增殖和迁移中发挥关键作用[1, 17]

Hippo信号通路中一个关键的转录共激活分子YAP,在细胞增殖状态下处于激活状态,一旦细胞融合,触发生长抑制性Hippo激酶级联的激活,引起两个激酶LATS1/LATS2的活化及磷酸化,并抑制YAP[18]。耦联至Gα12/13的GPCR抑制LATS的活性,减轻LATS依赖性的抑制YAP;然而,耦联至Gαs的GPCR,可促进LATS活化而抑制YAP[18]。GPCRs激活,YAP活化可能代表一个关键的促癌通路。GPCRs通常依赖于MAPK级联的持续激活、PI3K/AKT/mTOR、Ras和Rho GTPases,进而调节核转录因子和共激活分子如JUN、FOS、YAP的活性[19],最终促进细胞异常增殖。

2.2 GPCR促进肿瘤侵袭、迁移和转移

新近的研究显示,孤儿GPCR GPR78在肺癌细胞中过表达,体外实验敲减GPR78后明显抑制了癌细胞的侵袭和迁移,体内试验也证实敲减GPR78抑制了肺癌细胞的体内转移,这些发现表明GPR78是一个新的肺癌转移的调控者,为治疗转移性肺癌提供新的药物靶点[20]。研究发现,GPR116通过Gαq-p63RhoGEF-Rho GTPase信号路径在调控乳腺癌转移中发挥重要作用[21]。研究人员在高转移性乳腺癌细胞系MDA-MB-231中敲减GPR116,抑制了细胞侵袭和迁移。相反,在低转移性乳癌细胞系MCF-7和Hs578T中过表达GPR116,促进了细胞侵袭。在两个乳腺肿瘤转移老鼠模型中敲减GPR116,则抑制了乳腺癌细胞转移。

GPR34是G蛋白偶联受体超家族的一个成员,在多个实体瘤中高表达,如转移性黑色素瘤、MALT淋巴瘤、胃癌、结肠癌,且促进这些恶性肿瘤的增殖、侵袭和转移[22]。研究表明,GPR34在淋巴瘤和Hela细胞中高表达引起ERK、PKC和CREB的磷酸化,进一步诱导CRE、AP1和NF-κB介导的基因转录,促进细胞增殖[22]

GPR30与ERα均为雌激素的受体。研究发现,ERα在子宫内膜癌中表达下调,其下调表达激活PI3K信号通路和EMT信号分子,引起Stathmin蛋白表达上调,PTEN表达下调,Snail表达上调,E-cadherin下调,促进了上皮间质转化(epithelial-mesenchymal transition, EMT)的发生,促进肿瘤的侵袭和转移[23]。TGF-β结合TGF-β受体,激活非经典non-smad信号通路,激活Akt、NF-κB、ERK1/2、p38、JNK等,引起核内因子ZEB1、Snail、TWIST活化,促进了EMT的发生。此外,ERα下调表达,引起TGF-β信号分子SERPINE-1表达上调,激活了TGF-β信号通路,TGF-β可能参与到ERα下调介导的EMT的发生[23]

CXCL12/SDF-1-CXCR4轴参与肿瘤生长微环境的调节,促进肿瘤发生发展[24]。CXCR4是驱使肿瘤转移最具代表性的趋化因子受体,肿瘤细胞异常表达CXCR4,促进肿瘤细胞增殖和迁移。而肿瘤最常出现转移的位点包括淋巴结、肺、肝脏和骨髓,这些部位通常高表达趋化因子配体CXCL12/SDF-1。研究提示,CXCR4在正常乳腺组织低表达,而在乳腺癌组织和细胞中高表达,CXCR4能通过Gα12/13-RhoA依赖性方式驱使癌细胞转移,抑制CXCR4可防止乳腺癌细胞和多种肿瘤细胞的转移扩散[25]。其他趋化因子受体,如CCR7和CCR10,已证实在多种癌细胞的转移归巢中发挥直接作用,且促进癌细胞增殖[26]

2.3 GPCR参与肿瘤血管形成

GPCRs和相应的配体结合,能直接促进内皮细胞增殖,还可间接促进多种如基质、免疫和肿瘤细胞释放VEGF和其他促血管生成因子,从而促进肿瘤血管形成。

血管内皮细胞表达GPCRs,许多促血管生成因子作用于GPCRs,如前列腺素和趋化因子。肿瘤微环境中释放的炎症因子促进前列腺素2的局部表达,进一步促进肿瘤细胞和基质细胞表达促血管生成因子VEGF、CXCL8和CXCL5。许多趋化因子CCL2、CCL5和CXCL8/IL-8,招募白细胞和巨噬细胞至肿瘤位点,进而释放VEGF和其他促血管生成因子,有助于肿瘤新生血管的形成[27]

CD97,黏附GPCR家族成员之一的一种膜蛋白,在炎性反应细胞和一些肿瘤细胞表面高表达。CD97通过结合到细胞表面整联蛋白,刺激内皮细胞的运动性和侵袭能力,从而促进血管形成。研究表明,CD97在胰腺正常组织中低表达或不表达,但在胰腺癌组织中高表达,特别是在胰腺癌转移及血管侵袭的样本中高表达,其可以促进肿瘤细胞侵袭和肿瘤血管生成[28]

研究已证实,GPR4在上皮性卵巢癌血管内皮中高表达,且伴有更高微血管密度,而在良性卵巢肿瘤组织中低表达;进一步分析发现GPR4表达与微血管密度、淋巴结转移、临床分期密切相关,而与病理分型、分化程度、年龄、肿瘤大小无关,可参与上皮癌的增殖、转移和血管形成,这表明GPR4促进上皮性卵巢癌的血管形成,进而促进肿瘤转移[29]

3 GPCR抑制肿瘤发展

大多数GPCRs、G蛋白及其介导的下游信号路径发挥促癌效应,然而,也有一些GPCRs在某些恶性肿瘤中发挥肿瘤抑制效应。

Liu等[30]研究发现GPR37在肝癌患者癌组织中低表达,癌旁正常组织中高表达,且GPR37表达越低,预后越差。使用特异性siRNA下调HuH7细胞中GPR37,明显减少了肝癌细胞的凋亡,且激活了PI3K信号通路。Ren等[31]发现卵巢癌细胞系HEY中OGR1基因内源性低表达,通过构建OGR1稳定转染高表达细胞系,明显抑制了卵巢癌细胞增殖和迁移能力,但促进了细胞黏附到细胞外基质。他们同时证实了OGR1可抑制前列腺癌的转移。

GPR56,黏附受体家族成员之一,研究发现GPR56在三种不同的Gpr56−/−转基因动物肿瘤模型中发挥不同的功能,在前列腺癌模型(TRAMP)中可抑制肿瘤的进展,但在乳腺癌模型(MMTV-PyMT)中,GPR56发挥边缘效应;而在黑色素瘤模型(Ink4a/Arf−/−Tyr-HRAS)中则无法抑制肿瘤的进展[32]。值得注意的是,GPR56在人黑色素瘤细胞系构建的移植瘤模型中可抑制肿瘤生长和转移,发挥抑癌基因的作用[32]。有研究证实GPR56 mRNA在不同的胰腺癌细胞系PANC-1、Capan-1、MiaCaPa-2中高表达,但GPR56蛋白在这些癌细胞系中低表达或未检测到,表明人胰腺癌细胞抑制GPR56蛋白的表达,进而抑制其发挥抑癌功能[33]

研究表明,转移抑制性蛋白Kisspeptin,其受体为GPR54,Kisspeptin/GPR54可以通过Gαq/11亚单位激活磷脂酶C,生成DAG和IP3,DAG进一步通过蛋白激酶C依赖性方式促进胞内磷酸化蛋白激酶D1(protein kinase D1, PKD1)的表达,从而抑制多种乳腺癌细胞系的增殖和迁移[8]。相反,阻断GPR54或者PKD1,或阻断了Kisspeptin诱导的PKD1磷酸化,则促进乳腺癌细胞的侵袭和迁移。此外,GPR54下调导致Slug表达增高,E-cadherin表达降低,促进了EMT的发生。因此,Kisspeptin/GPR54信号可通过PKD1维持上皮表型,抑制癌细胞侵袭和迁移[8]。有研究报道,S1P2受体缺陷的小鼠易形成弥漫性大B细胞淋巴瘤,在次级淋巴小结中,生发中心B细胞表达S1P2受体,S1P2受体耦联Gα12/13亚单位,进而激活下游信号分子p115RhoGEF,从而拮抗Akt信号通路和维持B细胞生存,最终发挥肿瘤抑制功能。而S1P2低表达引起细胞过度增殖,反过来促进弥漫性大B细胞淋巴瘤的进展[34]

4 展望

总之,由于GPCRs信号机制的多样性和功能的多样化,GPCRs在肿瘤的发生、发展中发挥着重要作用。随着GPCRs受体种类、孤儿受体配体的鉴定和对受体功能研究的深入,人们对其在肿瘤中的功能定位逐渐清晰。然而仍有许多问题有待于解决:(1)GPCRs受体的功能结构域认识不全,可能存在尚未认知的新受体;(2)多种孤儿受体配体未知及配体调控机制不清;(3)多种受体在肿瘤中的信号通路及功能定位未完全理解。这需要我们今后进一步研究不同肿瘤微环境中GPCRs的功能。鉴定GPCRs/G蛋白下游信号通路中关键信号分子,将有助于我们进一步认识GPCRs的生物学功能和制定更有效的肿瘤靶向治疗策略。

参考文献
[1] Hemmings BA, Restuccia DF. PI3K-PKB/Akt pathway[J]. Cold Spring Harb Perspect Biol, 2012, 4(9): a011189.
[2] Noguchi K, Herr D, Mutoh T, et al. Lysophosphatidic acid (LPA) and its receptors[J]. Curr Opin Pharmacol, 2009, 9(1): 15–23. DOI:10.1016/j.coph.2008.11.010
[3] Schoeber JP, Topala CN, Wang X, et al. RGS2 inhibits the epithelial Ca2+ channel TRPV6[J]. J Biol Chem, 2006, 281(40): 29669–74. DOI:10.1074/jbc.M606233200
[4] Zhong H, Wade SM, Woolf PJ, et al. A spatial focusing model for G protein signals. Regulator of G protein signaling (RGS) protien-mediated kinetic scaffolding[J]. J Biol Chem, 2003, 278(9): 7278–84. DOI:10.1074/jbc.M208819200
[5] Andradas C, Blasco-Benito S, Castillo-Lluva S, et al. Activation of the orphan receptor GPR55 by lysophosphatidylinositol promotes metastasis in triple-negative breast cancer[J]. Oncotarget, 2016, 7(30): 47565–75. DOI:10.18632/oncotarget.v7i30
[6] Kargl J, Andersen L, Hasenohrl C, et al. GPR55 promotes migration and adhesion of colon cancer cells indicating a role in metastasis[J]. Br J Pharmacol, 2016, 173(1): 142–54. DOI:10.1111/bph.13345
[7] Moreno E, Andradas C, Medrano M, et al. Targeting CB2-GPR55 receptor heteromers modulates cancer cell signaling[J]. J Biol Chem, 2014, 289(32): 21960–72. DOI:10.1074/jbc.M114.561761
[8] Tan K, Cho SG, Luo W, et al. KiSS1-induced GPR54 signaling inhibits breast cancer cell migration and epithelial-mesenchymal transition via protein kinase D1[J]. Curr Mol Med, 2014, 14(5): 652–62. DOI:10.2174/1566524014666140603115314
[9] Zhang X, Liu D, Hayashida Y, et al. G Protein-Coupled Receptor 87 (GPR87) Promotes Cell Proliferation in Human Bladder Cancer Cells[J]. Int J Mol Sci, 2015, 16(10): 24319–31. DOI:10.3390/ijms161024319
[10] O'Hayre M, Degese MS, Gutkind JS. Novel insights into G protein and G protein-coupled receptor signaling in cancer[J]. Curr Opin Cell Biol, 2014, 27: 126–35. DOI:10.1016/j.ceb.2014.01.005
[11] Liang F, Yue J, Wang J, et al. GPCR48/LGR4 promotes tumorigenesis of prostate cancer via PI3K/Akt signaling pathway[J]. Med Oncol, 2015, 32(3): 49. DOI:10.1007/s12032-015-0486-1
[12] Dho SH, Lee KP, Jeong D, et al. GPR171 expression enhances proliferation and metastasis of lung cancer cells[J]. Oncotarget, 2016, 7(7): 7856–65. DOI:10.18632/oncotarget.v7i7
[13] Ren J, Pan X, Li L, et al. Knockdown of GPR137, G Protein-coupled receptor 137, Inhibits the Proliferation and Migration of Human Prostate Cancer Cells[J]. Chem Biol Drug Des, 2016, 87(5): 704–13. DOI:10.1111/cbdd.2016.87.issue-5
[14] Shao X, Liu Y, Huang H, et al. Down-regulation of G protein-coupled receptor 137 by RNA interference inhibits cell growth of two hepatoma cell lines[J]. Cell Biol Int, 2015, 39(4): 418–26. DOI:10.1002/cbin.v39.4
[15] Cui X, Liu Y, Wang B, et al. Knockdown of GPR137 by RNAi inhibits pancreatic cancer cell growth and induces apoptosis[J]. Biotechnol Appl Biochem, 2015, 62(6): 861–7. DOI:10.1002/bab.1326
[16] Wang C, Liang Q, Chen G, et al. Inhibition of GPR137 suppresses proliferation of medulloblastoma cells in vitro[J]. Biotechnol Appl Biochem, 2015, 62(6): 868–73. DOI:10.1002/bab.1331
[17] Laplante M, Sabatini DM. mTOR Signaling[J]. Cold Spring Harb Perspect Biol, 2012, 4(2): pii: a011593.
[18] Yu FX, Zhao B, Panupinthu N, et al. Regulation of the Hippo-YAP pathway by G-protein-coupled receptor signaling[J]. Cell, 2012, 150(4): 780–91. DOI:10.1016/j.cell.2012.06.037
[19] Vaqué JP, Dorsam RT, Feng X, et al. A genome-wide RNAi screen reveals a Trio-regulated Rho GTPase circuitry transducing mitogenic signals initiated by G protein-coupled receptors[J]. Mol Cell, 2013, 49(1): 94–108. DOI:10.1016/j.molcel.2012.10.018
[20] Dong DD, Zhou H, Li G. GPR78 promotes lung cancer cell migration and metastasis by activation of Galphaq-Rho GTPase Pathway[J]. BMB Rep, 2016, 49(11): 623–8. DOI:10.5483/BMBRep.2016.49.11.133
[21] Tang X, Jin R, Qu G, et al. GPR116, an adhesion G-protein-coupled receptor, promotes breast cancer metastasis via the Galphaq-p63RhoGEF-Rho GTPase pathway[J]. Cancer Res, 2013, 73(20): 6206–18. DOI:10.1158/0008-5472.CAN-13-1049
[22] Ansell SM, Akasaka T, McPhail E, et al. t(X; 14)(p11;q32) in MALT lymphoma involving GPR34 reveals a role for GPR34 in tumor cell growth[J]. Blood, 2012, 120(19): 3949–57. DOI:10.1182/blood-2011-11-389908
[23] Wik E, Raeder MB, Krakstad C, et al. Lack of estrogen receptor-alpha is associated with epithelial-mesenchymal transition and PI3K alterations in endometrial carcinoma[J]. Clin Cancer Res, 2013, 19(5): 1094–105. DOI:10.1158/1078-0432.CCR-12-3039
[24] 陆瑞祺, 俞继卫, 姜波健. CXCL12(SDF-1)-CXCR4轴在胃癌中作用的研究进展[J]. 中国普通外科杂志, 2010, 19(4): 430–3. [ Lu RQ, Yu JW, Jiang BJ. Research progress in roles of CXCL12(SDF-1)-CXCR4 axis in gastric cancer[J]. Zhongguo Pu Tong Wai Ke Za Zhi, 2010, 19(4): 430–3. ]
[25] Burger JA, Kipps TJ. CXCR4: a key receptor in the crosstalk between tumor cells and their microenvironment[J]. Blood, 2006, 107(5): 1761–7. DOI:10.1182/blood-2005-08-3182
[26] Zlotnik A, Burkhardt AM, Homey B. Homeostatic chemokine receptors and organ-specific metastasis[J]. Nat Rev Immunol, 2011, 11(9): 597–606. DOI:10.1038/nri3049
[27] Richard DE, Vouret-Craviari V, Pouyssegur J. Angiogenesis and G-protein-coupled receptors: signals that bridge the gap[J]. Oncogene, 2001, 20(13): 1556–62. DOI:10.1038/sj.onc.1204193
[28] He Z, Wu H, Jiao Y, et al. Expression and prognostic value of CD97 and its ligand CD55 in pancreatic cancer[J]. Oncol Lett, 2015, 9(2): 793–7.
[29] Ren J, Jin W, Gao YE, et al. Relations between GPR4 expression, microvascular density (MVD) and clinical pathological characteristics of patients with epithelial ovarian carcinoma (EOC)[J]. Curr Pharm Des, 2014, 20(11): 1904–16. DOI:10.2174/13816128113199990530
[30] Liu F, Zhu C, Huang X, et al. A low level of GPR37 is associated with human hepatocellular carcinoma progression and poor patient survival[J]. Pathol Res Pract, 2014, 210(12): 885–92. DOI:10.1016/j.prp.2014.07.011
[31] Ren J, Zhang L. Effects of ovarian cancer G protein coupled receptor 1 on the proliferation, migration, and adhesion of human ovarian cancer cells[J]. Chin Med J, 2011, 124(9): 1327–32.
[32] Xu L, Begum S, Barry M, et al. GPR56 plays varying roles in endogenous cancer progression[J]. Clin Exp Metastasis, 2010, 27(4): 241–9. DOI:10.1007/s10585-010-9322-3
[33] Huang Y, Fan J, Yang J, et al. Characterization of GPR56 protein and its suppressed expression in human pancreatic cancer cells[M]. Mol Cell Biochem, 2008: 133-9.
[34] Green JA, Suzuki K, Cho B, et al. The sphingosine 1-phosphate receptor S1P(2) maintains the homeostasis of germinal center B cells and promotes niche confinement[J]. Nat Immunol, 2011, 12(7): 672–80. DOI:10.1038/ni.2047