文章信息
- 错配修复系统hMutS、hMutL的变异与结直肠癌的相关性研究进展
- Recent Advances of Correlation of Mismatch Repair System hMutS, hMutL Variation and Colorectal Cancer
- 肿瘤防治研究, 2016, 43(7): 629-632
- Cancer Research on Prevention and Treatment, 2016, 43(7): 629-632
- http://www.zlfzyj.com/CN/10.3971/j.issn.1000-8578.2016.07.017
- 收稿日期: 2015-09-17
- 修回日期: 2016-01-15
2. 650500 昆明,生物能源持续开发与利用教育部工程研究中心
2. Engineering Research Center of Sustainable Development and Utilization of Biomass Energy, Ministry of Education, Kunming 650500, China
DNA错配修复系统(mismatch repair system,MMR)是存在于细菌、酵母和哺乳动物中的重要复制后修复系统,可修复DNA复制、基因重组过程中产生或由外源性损伤造成的碱基错配及插入/缺失环(insertion/deletion loops,IDLs),在维持基因组结构稳定性方面有重要的作用[1],人类MMR中,包括hMutS和hMutL两个子系统,它们对于癌症相关基因变异的修复尤为重要。hMutS、hMutL系统包含hMLH1、hMSH2、hMSH3、hMSH6、hPMS1和hPMS2,其中任何一种基因变异都会引起MMR功能缺陷,从而导致遗传不稳定,成为肿瘤发生的重要诱因。
结直肠癌(colorectal cancer,CRC)是人类主要恶性肿瘤之一,从世界范围看,其发病率和死亡率分别位于第三位和第四位[1]。在全球,每年有120万新确诊的病例,并且有超过60万名患者死于结直肠癌[2]。最常见的结直肠癌类型为遗传性非息肉型结直肠癌(hereditary non-polyposis colorectal cancer,HNPCC)(也称林奇综合征,Lynch syndrome)和散发性结直肠癌(sporadic colorectal cancer,SCC)。研究表明,hMutS和hMutL系统关键基因hMLH1、hMSH2、hMSH6和hPMS2单核苷酸多态性(single nucleotide polymorphisms,SNPs)、启动子甲基化(promoter methylation)水平改变,以及由此诱发的微卫星不稳定(microsatellite instability,MSI)增加都在结直肠癌发生和发展中起到重要作用[3-5]。
1 hMutS和hMutL的组成和功能hMutL是酵母MutL同源基因,包括hMLH1、hMLH3、hPMS1、hPMS2,hMutS是E.coli MutS同源基因,包括hMSH2、hMSH3、hMSH4、hMSH5、hMSH6。在进行错配修复时,两组同源基因指导合成的蛋白通过形成不同的复合物行使其功能。研究表明,hMLH1、hMSH2在结直肠癌错配修复中的作用尤为重要 [5-6]。
在hMutL系统中,hMLH1(human MutL homolog 1)本身没有已知的酶活性或作为适用的分子媒介,需要通过招募其他错配修复蛋白而发挥作用,其与hPMS2(human postmeiotic segregation 2)结合形成异源二聚体hMutLα,识别有缺口的新生DNA链。错配修复过程中,当hMutS结合到有错误的DNA 位点上后,hMutLα会与其结合形成一种暂时性的复合物,启动修复[7]。此外,hMLH1还能与hPMS1蛋白结合形成异源二聚体hMutLβ,但其在错配修复中的具体机制尚不清楚[8]。hMLH1和hMLH3形成异源二聚体hMutLγ,一方面对同源重组起重要作用[9];另一方面,体外培养细胞中当MutLα缺乏时,它对MutLα功能也有一定的补充作用[10]。
hMutS系统中,hMSH2(human MutS homolog 2)能与hMSH6结合形成二聚体hMutSα,识别存在碱基错配或其他错配形式的DNA[11],hMutSα与许多前后序列不同的且含有G或T错配的寡核苷酸底物的结合效率最高,而与其他类型碱基错配结合的效率很低;前后序列为微卫星重复序列的,其结合效率要比前后无重复序列的高。hMSH2也能与hMSH3结合形成hMutSβ,识别存在碱基缺失的DNA片段[12]。hMutSβ对碱基错配在体外没有明显的亲和性,但可与有螺旋外核苷酸的底物结合,而且它的亲和性随着IDLs的增大而增高;侧翼序列对此也有一定影响,可补偿环修复中的hMSH6缺失,使hMSH6突变细胞不再出现微卫星不稳定[13]。
2 hMutS和hMutL系统相关基因的SNPs与结直肠癌目前,常规检测SNPs技术已被广泛用于遗传药理学研究和遗传病诊断等多个领域[14-15]。通过检测,了解正常人hMutS和hMutL系统关键基因的特定位点SNPs情况,可以作为结直肠癌风险评估的一项重要依据。
hMutS和hMutL系统在识别和消除DNA复制过程中的IDLs突变起到重要作用,其发生缺陷会导致结直肠癌风险提高。Li等[16]的研究表明,hMutS和hMutL系统关键基因hMLH1、hMSH2的突变与结直肠癌风险密切相关,hMSH2基因内的SNPs、基因-基因和基因-环境的相互作用与结直肠癌易感性相关。他们检测了451例结直肠癌患者和630个对照者hMLH1和hMSH2基因内或启动子的SNPs,发现hMSH2基因中IVS15-214T>C和IVS11+107A>G与结肠癌风险密切相关,同时,发现有两个SNPs的不同携带者患结直肠癌的风险会不同程度的降低。
Wang等[17]研究了中国东北387例患者hMLH1和hMSH2中10个SNPs与结直肠癌预后情况的相关性,通过对基因型和结直肠癌患者整体存活率的检测,hMLH1的两个SNPs(-93G>A和IVS3-1403A>T)与结直肠癌患者整体存活率显著相关,并且在结肠癌和直肠癌患者中有差异,这也表明hMLH1这些位点的SNPs可能作为结直肠癌预后状况的评估指标。
Milanizadeh等[18]为研究hMLH1的两个SNPs与结直肠癌遗传易感的相关性,通过对219位结直肠癌患者和248位健康对照者的hMLH1基因1219V和IVS12-19C>T两个多态位点的分析,发现hMLH1基因1219V位点的多态性与结直肠癌易感性相关,1219V SNP可能作为结直肠癌易感性因子,然而,该位点多态性作为诊断因子的可靠性,还需进一步验证。
其他hMutS和hMutL相关基因的SNPs研究目前很少见报道,但因其指导合成的蛋白质是形成异源二聚体后相互作用的,故其中任何一个基因的任何一个位点发生改变,都可能对错配修复系统产生影响。
3 hMutS和hMutL系统相关基因的启动子甲基化水平改变与结直肠癌甲基化(methylation)水平和模式的改变是肿瘤发生的一个重要因素。在肿瘤细胞中,启动子(promoter)区域的CpG岛被高度甲基化,染色质构象发生改变,基因表达模式发生变化,可能导致抑癌基因、细胞周期调控基因、修复系统基因等抑制肿瘤发生相关的关键基因表达沉默,最终导致肿瘤发生。研究表明,在SCC中,MMR失活是由单个hMLH1基因启动子的甲基化所引起[19]。
hMLH1启动子高甲基化和一些结直肠癌hMLH1基因表达缺陷相关。最近,有学者在无MMR基因变异的HNPCC患者中发现 hMLH1的启动子存在高甲基化改变[20]。Kazama等[21]研究分化良好的结直肠癌及分化较差的结直肠癌之间的差异,发现22.6%分化较差的结直肠癌有hMLH1基因启动子区甲基化,而3.8%分化良好的结直肠癌有hMLH1基因启动子区甲基化,分化较差的结直肠癌hMLH1基因甲基化率明显高于分化良好的结直肠癌,且hMLH1基因动子区甲基化与分化差的结直肠癌的发生发展有密切的关系。
Kim等[22]研究了33位毕塞斯达的结直肠癌患者hMLH1甲基化和BRAF(原癌基因)突变情况,发现有36.4% hMLH1基因启动子甲基化,这表明临床病理变化与hMLH1甲基化相关性不明显,但这对于HNPCC和SCC的研究都有积极作用。
Ericson等[23]报道87%的HNPCC有MMR基因的蛋白表达缺失,其中hMSH2表达缺失率为49%,hMLH1的表达缺失率为39%。在SCC中也发现有MMR系统的功能缺失,尤其是hMLH1和hMSH2的突变是造成某些SCC发生的主要原因,而在SCC中hMLH1表达缺失率高于hMSH2,这主要是由于hMLH1基因启动子甲基化导致hMLH1基因的转录和翻译改变而出现蛋白的表达缺失进而引起MSI。在Malhotra等[19]对印度SCC患者hMLH1、hMSH2启动子甲基化和免疫组织化学表达的研究中,也有类似的发现。
hMutS和hMutL关键基因启动子甲基化水平的改变,可能导致其蛋白表达的缺失,进而影响错配修复系统功能的进行。在HNPCC和SCC患者中,可以通过对hMutS和hMutL相关基因启动子甲基化水平的检测,了解个体的结直肠癌易感性。
4 hMutS和hMutL系统相关基因的MSI与结直肠癌MMR系统的缺陷会导致严重MSI,近年来大量研究表明:MSI与肿瘤发生密切相关,尤其是结直肠癌、胃癌、子宫内膜癌等,其中HNPCC的致病因子也包括了hMutS和hMutL关键基因变异引起的MSI,主要是hMLH1和hMSH2,也有一部分来自hMSH6和hPMS2[24-27]。据文献报道[19],大约15%的结直肠癌中存在MSI现象,与无MSI的结直肠癌相比,携带有MSI的结直肠癌预后较差,并且二者药物反应也不一样。
Chaksangchaichot等[28]认为hMutS和hMutL系统相关基因的失活和MSI在SCC的发展过程中扮演了一个不可忽视的角色,MMR缺陷会使某些癌基因和抑癌基因的突变得到快速积累,最终影响正常细胞的增殖调控。对于具有高频率MSI的SCC患者,其hMutS和hMutL关键基因高甲基化以及BRAF突变可能高于HNPCC患者[22]。现已基本确定,MMR基因发生突变导致DNA错配修复系统功能缺陷或丧失是HNPCC发生的前提条件。
hMutS和hMutL相关基因功能缺陷与HNPCC和部分散发性结肠癌的发生、发展密切相关,hMSH2在其中有较高的突变率[29]。其变异主要与存在MSI的结直肠癌密切相关,一小部分SCC存在MSI,但没有MMR基因变异,提示有其他机制对MSI起作用,研究发现这些结直肠癌的MSI也与MMR缺陷有关,环境因素导致的甲基化可抑制MMR基因表达。
近年来,Jessri等[30]研究发现存在MSI的SCC患者中hMLH1等位基因缺失程度较高,说明hMLH1基因的突变在SCC的发生过程中占有重要的地位。Homayouni等[31]检测了40位HNPCC患者的MSI情况,hMSH2等位基因BAT-26对MSI检测有高敏感性,表明这些基因的MSI可作为预后标记,结合目前其他相关研究,也说明其对HNPCC患者治疗结果的预期也有重要作用。
hMutS和hMutL关键基因hMLH1和hMSH2的SNPs、启动子甲基化水平改变都可能会引起MSI,进而影响结直肠癌的发生、发展和预后[22-23]。因此,MSI可能成为结直肠癌预检的一个重要生物标记。
5 小结与展望hMutS和hMutL关键基因的SNPs和启动子甲基化水平改变都可能会引起MSI,其直接对结直肠癌错配修复产生影响,在结直肠癌发生、发展和预后中起到重要作用。同时,它们也对一些其他相关癌症产生影响,如子宫内膜癌、胃癌和膀胱癌等。近年来随着人民生活水平提高,各种健康问题日益被重视,结直肠癌由于其较高的死亡率引起大批研究人员注意,并且试图从不同角度找出其致病风险因素,研究有说服力的可靠检测标准,以便采取适当的防护措施,进行更好的治疗和愈后恢复。
| [1] | Jemal A, Center MM, DeSantis C, et al. Global patterns of cancer incidence and mortality rates and trends[J]. Cancer Epidemiol Biomarkers Prev, 2010, 19 (8) : 1893–907. DOI:10.1158/1055-9965.EPI-10-0437 |
| [2] | Siegel R, Naishadham D, Jemal A. Cancer statistics, 2013[J]. CA Cancer J Clin, 2013, 63 (1) : 11–30. DOI:10.3322/caac.v63.1 |
| [3] | Vaish M. Mismatch repair deficiencies transforming stem cells into cancer stem cells and therapeutic implications[J]. Mol Cancer, 2007, 6 : 26. DOI:10.1186/1476-4598-6-26 |
| [4] | Waldmann E, Ferlitsch M, Binder N, et al. Tumor and Patient Characteristics of Individuals with Mismatch Repair Deficient Colorectal Cancer[J]. Digestion, 2015, 91 (4) : 286–93. DOI:10.1159/000381284 |
| [5] | Gu L, Cline-Brown B, Zhang F, et al. Mismatch repair deficiency in hematological malignancies with microsatellite instability[J]. Oncogene, 2002, 21 (37) : 5758–64. DOI:10.1038/sj.onc.1205695 |
| [6] | Panigrahi GB, Slean MM, Simard JP, et al. Human mismatch repair protein hMutLα is required to repair short slipped-DNAs of trinucleotide repeats[J]. J Biol Chem, 2012, 287 (50) : 41844–50. DOI:10.1074/jbc.M112.420398 |
| [7] | Lipkin SM, Wang V, Jacoby R, et al. MLH3: a DNA mismatch repair gene associated with mammalian microsatellite instability[J]. Nat Genet, 2000, 24 (1) : 27–35. DOI:10.1038/71643 |
| [8] | Conde-Pérezprina JC, León-Galván MÁ, Konigsberg M. DNA mismatch repair system: repercussions in cellular homeostasis and relationship with aging[J]. Oxid Med Cell Longev, 2012, 2012 : 728430. |
| [9] | Ranjha L, Anand R, Cejka P, et al. The Saccharomyces cerevisiae Mlh1-Mlh3 heterodimer is an endonuclease that preferentially binds to Holliday junctions[J]. J Biol Chem, 2014, 289 (9) : 5674–86. DOI:10.1074/jbc.M113.533810 |
| [10] | Repmann S, Olivera-Harris M, Jiricny J. Influence of oxidized purine processing on strand directionality of mismatch repair[J]. J Biol Chem, 2015, 290 (16) : 9986–99. DOI:10.1074/jbc.M114.629907 |
| [11] | Mullins DN, Crawford EL, Khuder SA, et al. CEBPG transcription factor correlates with antioxidant and DNA repair genes in normal bronchial epithelial cells but not in individuals with bronchogenic carcinoma[J]. BMC Cancer, 2005, 5 : 141. DOI:10.1186/1471-2407-5-141 |
| [12] | Santucci-Darmanin S, Paquis-Flucklinger V. Homologs of MutS and MutL during mammalian meiosis[J]. Med Sci (Paris), 2003, 19 (1) : 85–91. DOI:10.1051/medsci/200319185 |
| [13] | Yamamoto H, Imai K. Microsatellite instability: an update[J]. Arch Toxicol, 2015, 89 (6) : 899–921. DOI:10.1007/s00204-015-1474-0 |
| [14] | Zhang J, Li K, Liao D, et al. Different application of polymerase with and without proofreading activity in single-nucleotide polymorphism analysis[J]. Lab Invest, 2003, 83 (8) : 1147–54. DOI:10.1097/01.LAB.0000081589.91390.DF |
| [15] | Yan ZH, Cui LH, Wang XH, et al. Comparative study of mutations in SNP loci of K-RAS, hMLH1 and hMSH2 genes in neoplastic intestinal polyps and colorectal cancer[J]. World J Gastroenterol, 2014, 20 (48) : 18338–45. DOI:10.3748/wjg.v20.i48.18338 |
| [16] | Li G, Hu F, Yuan F, et al. Intronic and promoter polymorphisms of hMLH1/hMSH2 and colorectal cancer risk in Heilongjiang Province of China[J]. J Cancer Res Clin Oncol, 2015, 141 (8) : 1393–404. DOI:10.1007/s00432-014-1898-6 |
| [17] | Wang Y, Li G, Hu F, et al. The prognostic significance of polymorphisms in hMLH1/hMSH2 for colorectal cancer[J]. Med Oncol, 2014, 31 (6) : 975. DOI:10.1007/s12032-014-0975-7 |
| [18] | Milanizadeh S, Khanyaghma M, Haghighi MM, et al. Molecular analysis of imperative polymorphisms of MLH1 gene in sporadic colorectal cancer[J]. Cancer Biomark, 2013, 13 (6) : 427–32. |
| [19] | Malhotra P, Anwar M, Kochhar R, et al. Promoter methylation and immunohistochemical expression of hMLH1 and hMSH2 in sporadic colorectal cancer: a study from India[J]. Tumour Biol, 2014, 35 (4) : 3679–87. DOI:10.1007/s13277-013-1487-3 |
| [20] | Kuismanen SA, Holmberg MT, Salovaara R, et al. Genetic and epigenetic modification of MLH1 accounts for a major share of microsatellite-unstable colorectal cancers[J]. Am J Pathol, 2000, 156 (5) : 1773–9. DOI:10.1016/S0002-9440(10)65048-1 |
| [21] | Kazama Y, Watanabe T, Kanazawa T, et al. Poorly differentiated colorectal edenoeareinomas show higher rates of microsatellite instability and promoter methylation of p16 and hMLH1:a study matched for T classification and tumor location[J]. J Surg Oncol, 2008, 97 (3) : 278–83. DOI:10.1002/(ISSN)1096-9098 |
| [22] | Kim SJ, Kim HR, Kim SH, et al. hMLH1 promoter methylation and BRAF mutations in high-frequency microsatellite instability colorectal cancers not fulfilling the revised Bethesda guidelines[J]. Ann Surg Treat Res, 2014, 87 (3) : 123–30. DOI:10.4174/astr.2014.87.3.123 |
| [23] | Ericson K, Halvarsson B, Nagel J, et al. Deffective mismatch repair in patents with multiple primary tumours including colorectal cancer[J]. Eur J Cancer, 2003, 39 (2) : 240–8. DOI:10.1016/S0959-8049(02)00584-1 |
| [24] | Gu L, Cline-Brown B, Zhang F, et al. Mismatch repair deficiency in hematological malignancies with microsatellite instability[J]. Oncogene, 2002, 21 (37) : 5758–64. DOI:10.1038/sj.onc.1205695 |
| [25] | Kamat N, Khidhir MA, Hussain S, et al. Chemotherapy induced microsatellite instability and loss of heterozygosity in chromosomes 2, 5, 10, and 17 in solid tumor patients[J]. Cancer Cell Int, 2014, 14 (1) : 118. DOI:10.1186/s12935-014-0118-4 |
| [26] | Kanth VV, Bhalsing S, Sasikala M, et al. Microsatellite instability and promoter hypermethylation in colorectal cancer in India[J]. Tumour Biol, 2014, 35 (5) : 4347–55. DOI:10.1007/s13277-013-1570-9 |
| [27] | Li HB, Zhang YH, Chen HZ, et al. Expression of human DNA mismatch-repair protein, hMSH2, in patients with oral lichen planus[J]. Exp Ther Med, 2015, 9 (1) : 203–6. |
| [28] | Chaksangehaichot P, Punyarit P, Petmitr S. Novel hMSH2, hMSH6 and hMLH1 gene mutations and microsatellite instability in sporadic coloroctai cancer[J]. J Cancer Res Clin Oncol, 2007, 133 (1) : 65–70. |
| [29] | Jensen LH, Kuramochi H, Crüger DG, et al. Gene expression of the mismatch repair gene MSH2 in primary colorectal cancer[J]. Tumour Biol, 2011, 32 (5) : 977–83. DOI:10.1007/s13277-011-0199-9 |
| [30] | Jessri M, Dalley AJ, Farah CS. MutSα and MutLα immunoexpression analysis in diagnostic grading of oral epithelial dysplasia and squamous cell carcinoma[J]. Oral Surg Oral Med Oral Pathol Oral Radiol, 2015, 119 (1) : 74–82. DOI:10.1016/j.oooo.2014.06.017 |
| [31] | Homayouni V, Salehi M, Kazemi M. Investigating of microsatellites instability in patients with hereditary non-polyposis colorectal cancer in Isfahan[J]. Adv Biomed Res, 2014, 3 : 145. DOI:10.4103/2277-9175.135163 |
2016, Vol. 43

