文章信息
- 阿霉素长循环热敏脂质体联合射频热疗的药效学研究
- Pharmacodynamics of Doxorubicin Long-circulating Thermo-sensitive Liposomes Combined with Radiofrequency Thermotherapy
- 肿瘤防治研究, 2016, 43(5): 350-354
- Cancer Research on Prevention and Treatment, 2016, 43(5): 350-354
- http://www.zlfzyj.com/CN/10.3971/j.issn.1000-8578.2016.05.007
- 收稿日期: 2015-06-10
- 修回日期: 2015-11-10
阿霉素(doxorubicin,DOX)是目前临床使用最广泛的光谱抗癌化疗药物之一,但由于有较大的心脏毒性,严重限制了其在临床上的使用[1]。开发新型的DOX给药途径是目前研究的重中之重,有功能性的脂质体成为研究的热点。其中长循环热敏脂质体(long-circulating thermo-sensitive liposomes,LCTSLs)作为一种优秀的治疗载体,近年来被广泛研究[2, 3]。LCTSLs即具有脂质体本身的优点,还具有体内长循环特性及温度敏感控释特性。温度控释是近年来研究较广泛的一种控释技术,其利用外界刺激通过温度的变化释放药物,最主要的外界刺激手段有近红外光(near-infrared,NIR)[4]、微波[5]、交变磁场[6]、射频[7]等。本研究使用临床上已广泛使用的射频(radio frequency,RF)热疗技术与DOX-LCTSLs联合治疗人宫颈癌HeLa荷瘤裸鼠,从药效学方面全面评价此种疗法的抗肿瘤作用。
1 材料与方法 1.1 仪器与材料盐酸阿霉素(DOX,上海晶纯生化科技股份有限公司)、DMEM培养液(美国Hyclone公司)、胎牛血清(杭州四季青生物工程公司)、二棕榈酰磷脂酰胆碱(DPPC,上海笛柏化学品技术有限公司)、胆固醇及DSPE-PEG2000(国药集团化学试剂有限公司)、人宫颈癌HeLa细胞系(上海复祥生物科技有限公司)、雌性裸鼠(4~6周龄,20~22 g,购自湖南斯莱克景达公司)、SR1000型射频热疗机(深圳先科医疗设备有限公司)。
1.2 阿霉素长循环热敏脂质体的制备本实验室采用逆向蒸发法制备出DOX-LCTSLs[8],最终测得其包封率为88.5%,粒径为(190.7±4.8)nm。具体实验步骤如下:准确称量DPPC 16 mg、胆固醇4 mg、DSPE-PEG2000 2 mg(8:2:1质量比)溶于5 ml氯仿并置于茄形瓶中。将DOX水溶液(1 mg/ml)加入上述脂质溶液中,超声乳化2 h得到w/o乳剂后旋转蒸发,减压除去有机溶剂得到脂质体的水性混悬液。使用孔径为0.1 μm的超滤管离心去除游离DOX,得DOX-LCTSLs溶液。使用激光纳米粒度仪测定其粒径,并使用高效液相法测定其包封率。
1.3 HeLa荷瘤裸鼠模型构建取对数生长期的HeLa人宫颈癌细胞,胰蛋白酶消化,将细胞悬液浓度调整至2×107个每毫升。将每只BALB/c裸鼠(雌性,4~6周,18~22 g)右上肢背部皮下接种200 μl细胞悬液,隔日观察并测量肿瘤的长径(A:单位mm)和短径(B:单位mm),根据下列公式计算肿瘤体积:肿瘤体积V=(A×B2)/2。当肿瘤体积达到100 mm3以上时,认为肿瘤模型接种成功。
1.4 体内分布考察将裸鼠随机分为2组:DOX组和DOX-LCTSLs组,每组24只(4个时间点,每个时间点6只),DOX的最终给药浓度为5 mg/kg。分别在给药后0.5、1、4及12 h,每组于每个时间点摘除裸鼠眼球取血约0.5 ml后处死裸鼠,取心、肝、脾、肺、肾及肿瘤组织称重,将其放入0.9%氯化钠溶液中冰浴下以超声波细胞粉碎机匀浆,瘤组织: 0.9%氯化钠溶液=1:3(W/W)。然后将匀浆液与4倍体积的有机溶剂(氯仿:甲醇=4:1)混合,涡旋3 min,12 000 r/min的转速离心15 min,取出有机溶剂层室温挥干。每个样品中加入100 μl甲醇,超声后8 000 r/min的转速离心10 min,取上清液通过HPLC法检测DOX浓度。HPLC条件为:安捷伦C18柱(150 mm×4.6 mm,5.0 μm);甲醇:0.01 mol/L的磷酸二氢钾缓冲液:冰醋酸(68:31.5:0.5);柱温30℃; 荧光检测波长:激发波长为480 nm、发射波长为550 nm。
1.5 荷瘤裸鼠给药将裸鼠随机分为6组:对照组、RF热疗组、DOX组、DOX-LCTSLs组、DOX+RF组和DOX-LCTSLs+RF组,每组6只。对各组裸鼠进行尾静脉注射,对照组和RF热疗组注射0.9%氯化钠溶液(0.2毫升/只/次);DOX组、DOX-LCTSLs组、DOX+RF组和DOX-LCTSLs+RF组DOX的最终给药浓度为5 mg/kg。每隔2日给药1次,共给药5次。RF热疗为给药4 h后进行(小鼠使用铜网包裹仅露出肿瘤部位,300 W,30 min)。最后一次治疗1天后将裸鼠脱颈处死,取各组裸鼠的心、肝、脾、肺、肾和瘤组织分为两部分,一部分制作石蜡切片进行HE染色,一部分进行TUNEL凋亡检测。
1.6 行为观察、体质量及抑瘤率检测每次注射前称重,绘制体质量变化曲线。注射后观察各组裸鼠的行为状态,测量肿瘤并计算抑瘤率。抑瘤率(%)=(1-实验组肿瘤体积/对照组肿瘤体积)×100%。
1.7 HE染色将新鲜组织使用12%的中性福尔马林固定24 h,后经脱水、包埋、切片、脱蜡、染色、封片,放于显微镜下采集图片。
1.8 TUNEL法检测肿瘤凋亡取瘤体组织石蜡切片,按常规方法进行脱蜡、水合、PBS漂洗,然后加入蛋白酶K工作液消化30 min,PBS漂洗,使用H2O2封闭液封闭10 min,加入TUNEL反应液,避光反应1 h,PBS漂洗,DAB显色。同时设立阳性对照及阴性对照组。将制备好的TUNEL染色玻片放置于显微镜下采集图片。
1.9 统计学方法应用SPSS19.0统计软件对结果进行数据处理,结果采用(x± s)表示,采用单因素方差分析,P<0.05为差异有统计学意义。
2 结果 2.1 DOX的组织分布结果显示,DOX-LCTSLs与DOX具有不同的体内分布情况。与DOX相比,不同时间段内DOX-LCTSL在心脏和肾脏中的分布均明显减少,其中DOX组在心脏中的分布约为DOX-LCTSLs组的4倍;DOX-LCTSLs组在肺部中的分布均明显增多;除了在0.5 h时单纯DOX组的分布浓度较高,其他时间点均显著低于DOX-LCTSLs组。在肿瘤部位的分布显示,DOX-LCTSLs在给药4 h后的浓度最高,且与DOX相比差异具有统计学意义(P=0.048),见图 1。
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| 图 1 不同时间DOX在小鼠体内分布图 Figure 1 Biodistribution of DOX in vivo at different times |
2.2 荷瘤裸鼠行为及体质量变化
对照组、RF热疗组、DOX组、DOX-LCTSLs组、DOX+RF组和DOX-LCTSLs+RF组裸鼠在进行尾静脉注射后,对其进行临床观测发现0.9%氯化钠溶液组及DOX-LCTSLs组裸鼠表现正常;DOX组在注射后10 min内有不同程度的不安,30 min后开始行为正常,整个治疗过程中出现不同程度的精神萎靡、皮毛不顺滑情况;进行RF热疗的小鼠,在治疗期间均有不同程度的躁动。从治疗前后的体质量变化情况可以看出,DOX组和DOX+RF组体质量变化较明显,见表 1。以上结果表明,DOX-LCTSLs可以在一定程度上降低DOX对裸鼠的毒性作用。
2.3 抑瘤率考察
根据各组肿瘤体积计算抑瘤率,见表 2。结果表明,热敏长循环脂质体联合射频热疗可有效抑制肿瘤生长,DOX-LCTSLs+RF组与RF组、DOX组、DOX-LCTSLs组及DOX+RF组相比P值分别为0.001、0.007、0.014、0.027,表明各组与DOX-LCTSLs+RF组相比差异均有统计学意义(P<0.05)。实验结果对比可知,将化疗与RF热疗联合治疗具有明显的协同增强作用。


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2.4 裸鼠主要器官HE染色结果
HE染色结果表明,Control组各脏器的细胞排列紧密、细胞体大、细胞形态完整。与Control组相比,其余5组裸鼠的肝、脾、肺、肾的HE染色切片无明显不同,但是DOX组和DOX+RF组的心脏HE切片结果表明这两组对心肌组织具有明显的毒性,心肌细胞呈现不规则排列,出现细胞核溶解,见图 2。肿瘤组织HE切片结果显示,与Control组相比,其他各组均有不同程度变化。其中DOX-LCTSLs+RF组出现明显的细胞结构消失及细胞核溶解。
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| 图 2 裸鼠各主要组织器官的HE染色结果 (×400) Figure 2 HE staining results of major organs and tissues of nude mice (×400) |
2.5 肿瘤组织凋亡检测
TUNEL法染色图片中凋亡细胞的形态特征为胞体缩小,胞核浓染呈棕色。结果显示Control组细胞体态完整,呈蓝色或深蓝色;RF组镜下出现少量凋亡细胞,DOX组凋亡细胞较Control组多,DOX-LCTSLs组、DOX+RF组和DOX-LCTSLs+RF组与前几组明显不同,呈棕色的凋亡细胞急剧增多,且多个镜下的DOX-LCTSLs+RF组凋亡细胞个数比DOX+RF组和DOX+RF组明显增多,见图 3。此结果证明,单纯的RF热疗可以少量引起肿瘤细胞凋亡,DOX-LCTSLs+RF组的凋亡效果比其他所有组效果都要明显,可以证明DOX-LCTSLs与RF热疗联合可有效促进细胞凋亡。
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| 图 3 裸鼠肿瘤组织TUNEL染色结果 (×400) Figure 3 TUNEL staining results of tumor tissues of nude mice (×400) |
3 讨论
心脏毒性是阻碍DOX临床应用的主要原因,因此降低DOX的毒性、提高DOX在靶器官或肿瘤中的浓度是提高其疗效的关键[9]。DOX脂质体目前已获美国食品药品监督管理局认证[10]。但是,单纯的DOX脂质体不具有控释作用,在到达肿瘤靶部位时不能有效释放药物。为了解决以上问题,本研究构建了一种通过RF热疗激发控释的LCTSLs并考察其在裸鼠体内的分布及其他行为。
RF是目前临床常用的抗肿瘤新型疗法,采用非接触式的治疗方式,利用射频波将组织加热到能杀灭肿瘤细胞的温度[11]。本研究利用RF的热疗作用,一方面用于在达到变相温度后迅速释放LCTSLs中包裹的DOX,另一方面利用热疗本身对肿瘤的杀伤作用及DOX的热疗敏感度联合增强对肿瘤的治疗。Wang课题组前期通过利用单壁碳纳米管的热疗作用与DOX化疗联合治疗MCF-7细胞及荷瘤裸鼠的实验结果表明,近红外热疗与化疗联合可有效抑制MCF-7肿瘤在体内和体外的发生及发展[12]。Shi课题组利用化学修饰的石墨烯荷载DOX,同时也证明了NIR热疗与化疗联合作用对肿瘤的抑制作用[13]。但是目前研究较多的NIR热疗具有一定的局限性,即NIR仅可用于浅表肿瘤,因此本课题选用了可穿透深层组织的RF热疗,这对深层肿瘤的防治具有很强的研究意义。
本课题体内分布实验证明,DOX-LCTSLs可有效维持治疗期间DOX在体内的血药浓度及在肿瘤部位的药物浓度,可有效降低DOX在心脏部位的分布。其结果在后期的HE染色切片中表现的更为确切,DOX-LCTSLs组的心脏HE切片表明,心脏细胞及组织形态无明显变化,而DOX组的心脏HE切片表现出明显的毒性。通过对荷瘤裸鼠肿瘤的抑制率及凋亡情况的考察,发现DOX-LCTSLs与其他实验组相比具有明显的肿瘤抑制作用(肿瘤抑制率达82.14%)及促细胞凋亡作用。这些实验结果都证明了,本实验构建的给药系统具有维持血药浓度、降低化疗毒性、提高肿瘤抑制效果的功能。将DOX-LCTSLs与热疗联合具有很强的研究价值,值得进一步的研究探索。
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2016, Vol. 43

