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RNA干扰沉默DJ-1基因对Hep-2细胞裸鼠移植瘤生长的影响
沈志森1, 邓红霞1, 叶栋1, 张建1, 裘世杰1, 李群1, 崔翔2     
1. 宁波市医疗中心李惠利医院耳鼻咽喉头颈外科, 浙江 宁波 315040 ;
2. 宁波大学医学院, 浙江 宁波 315040
摘要: 目的 观察沉默DJ-1基因对人喉癌Hep-2细胞株裸鼠移植瘤的作用及其机制。 方法 建立人喉癌Hep-2裸鼠移植瘤模型,24只裸鼠随机分为三组(每组8只):对照组(5%葡萄糖溶液)、小剂量组(20μg的DJ-1基因特异性小干扰RNA)、大剂量组(40μg的DJ-1基因特异性小干扰RNA)。各组瘤体内分别注射相应液体50μL,2次/周,共6次,每次测量瘤体质量及大小。停药后48 h脱颈椎法处死裸鼠,剥离瘤体,测瘤体质量,计算抑瘤率。采用免疫组织化学法分别检测剥离瘤体组织Caspase-3、Ki-67的表达情况;实时定量RT-PCR和蛋白质印迹法分别检测各组移植瘤DJ-1、PTEN、survivin基因和蛋白的表达。 结果 小剂量组[(0.66±0.15)g]和大剂量组[(0.48±0.11)g]的瘤体质量均小于对照组[(0.83±0.16)g,均P < 0.05],且抑瘤率分别为(20.48±0.18)%和(42.16±0.13)%。小剂量组和大剂量组Caspase-3表达增高,Ki-67表达减少,与对照组差异均有统计学意义(均P < 0.05);与对照组比较,小剂量组和大剂量组DJ-1、survivin的mRNA和蛋白表达均减少(均P < 0.05),而PTEN的mRNA和蛋白表达均增加(均P < 0.05)。 结论 大剂量的DJ-1小干扰RNA可能通过下调DJ-1和促进PTEN的表达,从而阻断PI3K-PKB/Akt信号通路并调节survivin表达来促进肿瘤细胞凋亡,抑制人喉癌Hep-2裸鼠移植瘤的生长。
关键词: 喉肿瘤/病理生理学     癌, 鳞状细胞/病理生理学     RNA干扰     基因沉默     肿瘤蛋白质类/代谢     疾病模型, 动物    
Effect of DJ-1 silencing by RNA interference on growth of xenografted human laryngeal squamous cell carcinoma Hep-2 cells in nude mice
SHEN Zhisen1, DENG Hongxia1, YE Dong1, ZHANG Jian1, QIU Shijie1, LI Qun1, CUI Xiang2     
1. Department of Otorhinolaryngology, Ningbo Medical Center Lihuili Hospital, Ningbo 315040, China ;
2. Ningbo University School of Medicine, Ningbo 315040, China
Corresponding author: SHEN Zhishen,E-mail:szs7216@163.com; http://orcid.org/0000-0001-6660-0488
Abstract: Objective To investigate the effect of silencing DJ-1 on xenografted human laryngeal squamous cell carcinoma (LSCC) Hep-2 cells in nude mice. Methods Xenograft model of human LSCC was established by subcutaneous transplantation of Hep-2 cells in 24 nude mice. The LSCC-bearing nude mice were randomly divided into 3 groups (n=8 in each):DJ-1 siRNA low dose group and DJ-1 siRNA high dose group were injected in tumors with 20μg of DJ-1 siRNA or 40μg of DJ-1 siRNA in 50μL, respectively; control group was injected with 5% glucose solution in 50μL, twice a week for 3 weeks. The weight and size of tumors were measured before injection. The animals were sacrificed 48 h after the final treatment, and the tumors were harvested and weighed. The apoptosis and proliferation of tumor cells were determined; the expressions of Caspase-3 and Ki-67 in tumor specimens were detected with immunohistochemistry. The expression of DJ-1, PTEN, survivin mRNA and protein in tumor tissues were detected by RT-PCR and Western blotting, respectively. Results Tumor weight in low dose group[(0.66±0.15)g] and high dose group[(0.48±0.11)g] were significantly lower than that in control group[(0.83±0.16)g, all P < 0.05]. The inhibition rates of low dose group and high dose group were (20.48±0.18)% and (42.16±0.13)%, respectively. Immunohistochemistry showed that the expression of Caspase-3 was increased and Ki-67 was reduced in tumor specimens, compared with the control group (all P < 0.05). RT-PCR and Western blot results showed that in low dose group and high dose group the mRNA and protein expression of DJ-1 and survivin significantly decreased (all P < 0.05), while PTEN mRNA and protein content increased (all P < 0.05). Conclusion High dose DJ-1 siRNA can inhibit the tumor growth in human LSCC xenograft nude mouse model, which indicates that down-regulating DJ-1 and survivin, and up-regulating PTEN expression may lead to blockage of PI3K-PKB/Akt signaling pathway and promoting tumor cell apoptosis.
Key words: Laryngeal neoplasms/physiopathology     Carcinoma, squamous cell/physiopathology     RNA interference     Gene silencing     Neoplasm proteins/metabolism     Disease models, animal    

喉癌是仅次于肺癌的第二大呼吸道高发癌,其发病率呈逐年上升趋势,喉鳞状细胞癌(laryngeal squamous cell carcinoma,LSCC)为其主要病理类型[1]。手术切除是目前治疗喉癌的主要方式,但由于手术治疗中晚期喉癌的疗效及患者术后功能恢复有限,因此,需要寻找一种喉癌的早期诊断和治疗方法。近年研究表明,DJ-1基因在多种恶性肿瘤中异常表达,与肿瘤的发生、发展及预后密切相关[2]。DJ-1能调节抑癌基因PTEN的表达,从而促进肿瘤发展[3]。本课题组前期研究发现,DJ-1的小干扰RNA(siRNA)能显著抑制喉癌Hep-2细胞增殖,并与survivin基因表达相关[4]。为进一步阐明DJ-1与喉癌的相关性,本研究拟通过构建人喉癌裸鼠移植瘤模型,采用RNA干扰技术沉默DJ-1基因,观察移植瘤生长增殖及其survivin、PTEN表达的变化,探讨DJ-1基因对喉癌发生、发展的作用及其可能机制。

1 材料与方法 1.1 实验材料

细胞株:人喉癌Hep-2细胞株由浙江中医药大学实验动物中心提供。

实验动物:24只雄性BALB/cA nu/nu裸鼠,体质量14~16 g,SPF级,购于上海实验动物中心。实验动物使用许可证号SYXK(浙)2009-0123。

主要试剂:DJ-1 siRNA、转染试剂均购自北京英格恩生物科技有限公司。RNA提取试剂盒(德国QIAGENE公司)、逆转录试剂盒(德国QIAGEN公司)、引物探针、TaqMan®基因表达预混试剂(美国ABI公司)、荧光定量PCR试剂盒(美国ABI公司)、质粒提取试剂盒(上海生工生物工程技术服务有限公司)、DAB辣根过氧化物酶显影试剂盒(上海碧云天生物技术有限公司)、BCA蛋白浓度试剂盒(上海碧云天生物技术有限公司)、免疫组织化学超敏SP试剂盒(北京中杉金桥生物技术有限公司)、一抗(英国Abcam公司)、二抗(英国Abcam公司)。

1.2 细胞培养

人喉癌Hep-2细胞株用含10%FBS的RPMI 1640培养液,于37 ℃、5%二氧化碳孵箱内培养,以0.25%胰蛋白酶消化传代。取指数生长期的细胞用于实验。细胞接种于无菌培养皿中,扩增至足够数量后用于实验。

1.3 人喉癌裸鼠移植瘤模型的建立与分组

裸鼠在浙江中医药大学SPF级裸鼠饲养系统饲养,所有饮用水、饲料及笼具均经无菌处理。取BALB/C裸鼠24只,均腋下皮下接种Hep-2细胞悬液0.2 mL(含细胞0.87×107),待肿瘤生长达100 mm3以上,将符合实验条件的裸鼠随机分为三组:对照组、小剂量组、大剂量组,每组8只,分别给予5 %葡萄糖溶液、20 μg的DJ-1基因特异性siRNA、给予40 μg的DJ-1基因特异性siRNA。各组均向瘤体注射50 μL相应液体(表 1),液体在每次注射前15 min配制,2次/周,连续21 d(共6次)。

表 1 各组给予液体配制成分表 Table 1 The composition of corresponding liquids
组别液体配制成分(50 μL/只)
对照组DEPC水25 μL+10 %葡萄糖25 μL
小剂量组DEPC水12.5 μL+DJ-1 siRNA(20 μg/8.5 μL DEPC水)4.25 μL+转染试剂 8.25 μL+10%葡萄糖25 μL
大剂量组DJ-1 siRNA(40 μg/8.5 μL DEPC水)8.5 μL+转染试剂16.5 μL+10%葡萄糖25 μL
1.4 移植瘤体积及抑瘤率的计算

参照文献[5],从第7天开始,每周二用游标卡尺测量肿瘤最大长径(a)和横径(b),记录数据直至实验结束。计算肿瘤体积:肿瘤体积(mm3)=1/2ab2。停药次日,颈椎脱臼法处死小鼠、剥离肿瘤组织、测量瘤体质量,计算各组抑瘤率(%)。抑瘤率=(对照组平均瘤体质量-给药组平均瘤体质量)/对照组平均瘤体质量×100%。剥离的肿瘤组织于-80 ℃保存。

1.5 免疫组织化学法检测Caspase-3和Ki-67的表达

石蜡切片常规脱蜡,免疫组织化学染色按SP试剂盒说明书进行,采用PBS代替一抗作阴性对照,用已知阳性片作阳性对照。Caspase-3阳性产物定位于细胞质,呈棕黄色或出现棕褐色颗粒;Ki-67阳性产物定位于细胞核,呈棕黄色或棕褐色颗粒。主要步骤包括:切片脱蜡、梯度乙醇水化、抗原修复孵化、DAB显色液显色、苏木素复染、封片观察。采用人工半定量积分法进行综合评价判定结果[6]:根据阳性细胞数和着色深度计分,每例均随机选取癌细胞区(非坏死区)观察计数5个高倍视野(×400),确定每个视野中阳性表达细胞数所占的比例,取其平均数即得该切片阳性细胞百分率,即阳性率。按下列梯度计分:无阳性细胞为0分,阳性细胞少于11%为1分,阳性细胞11%~50%为2分,阳性细胞51%~75%为3分,阳性细胞超过75%为4分;阳性细胞表达的DAB着色深度:基本不着色为0分,浅黄色为1分,棕黄色为2分,棕褐色为3分。

1.6 荧光定量RT-PCR检测DJ-1、survivin、PTEN基因mRNA表达

裸鼠肿瘤组织总RNA用试剂盒提取,具体操作过程详见说明书,然后采用NanoDrop 2000微量紫外分光光度计测定RNA的浓度。cDNA通过逆转录反应获得,逆转录引物为随机引物N6,由上海生工生物工程技术服务有限公司合成。RT-PCR扩增采用TaqMan探针法,在荧光定量PCR仪ABI 7500上进行,引物、探针均由上海吉玛生物有限公司合成(表 2)。PCR反应程序:95 ℃变性3 min;95 ℃ 12 s,62 ℃ 40 s ,40个循环(检测survivin为36个循环)。相对表达量用Δct方法计算,先对每个组织标本的ct值进行测定,Δct(DJ-1、survivin、PTEN) = ct(DJ-1、survivin、PTEN) -ct(GAPDH),取三次实验结果进行统计学分析。

表 2 RT-PCR引物序列一览 Table 2 The sequences of real time quantitive RT-PCR primers
基因名称引物(5’-3’)探针(5’-3’)产物(bp)
DJ-1正向:GACGGTCATCCCTGTAGATGTC,反向:GCTACACTGTACTGGGTCTTTTCCAGCTGGGATTAAGGTCACCGTTGC88
PTEN正向:TGTTGTTTCACAAGATGATGTTTG,反向:TATCTTCACCTTTAGCTGGCAGACAACTATTCCAATGTTCAGTGGCGGA97
survivin正向:TCTTCTGCTTCAAGGAGCTGG,反向:ACCGGACGAATGCTTTTTATGAGCCAGATGACGACCCCATAGAGGA92
GAPDH正向:CATGAGAAGTATGACAACAGCCT,反向:AGTCCTTCCACGATACCAAAGTTCCTGCACCACCAACTGCTTAGCACC113
1.7 蛋白质印迹法检测DJ-1、survivin、PTEN蛋白表达

裸鼠组织剪碎研磨后,用放射免疫沉淀(RIPA)缓冲液裂解,收集上清液,所有过程按照说明进行处理,制备细胞总蛋白提取液。用BCA蛋白浓度试剂盒测定蛋白总浓度,加入适量的5×SDS-PAGE上样缓冲液,混匀,煮沸5 min变性。取约30 μg的总蛋白在SDS-PAGE上120 V分离1 h,然后恒压60 V 2 h转移至PVDF膜上(美国Millipore公司产品),用TBST溶解的5% BSA封闭液4 ℃冰箱封闭,在水平摇床上用TBST清洗膜三次,每次5 min。将膜分别置于稀释的DJ-1(1∶200)、survivin(1∶500)、PTEN(1∶100)、GAPDH(1∶800)单克隆抗体反应液中,室温水平摇动1 h,TBST洗膜三次,每次5 min。将二抗用5% BSA的封闭液稀释至适当浓度1∶10 000,将洗净的膜放在二抗稀释液中,室温下孵育1 h后,再用TBST缓冲液在脱色摇床上室温洗三次,每次5 min。取DAB辣根过氧化物酶显影试剂盒中的A和B两种试剂在避光盒中等体积混合,将膜蛋白面朝下与此混合液充分接触,5~10 min后观察蛋白条带,并用去离子水终止反应。用凝胶成像仪扫描拍摄图片。

1.8 统计学方法

数据采用SPSS 17.0软件分析,符合正态分布的计量资料以均数±标准差(x±s)表示,两样本均数比较采用独立样本t检验,多组比较采用单因素方差分析,各组裸鼠移植瘤的生长曲线比较采用重复测量设计的方差分析,P<0.05为差异有统计学意义。

2 结 果 2.1 三组瘤体体积及质量比较

图 1A所示,观察期间各组裸鼠移植瘤体积均增大,小剂量组和大剂量组第9天开始瘤体减小。直至实验结束,小剂量组和大剂量组的抑瘤率分别为(20.48±0.18)%和(42.16±0.13)%,与对照组(0.00±0.26)%比较差异均有统计学意义(均P<0.05),而小剂量组与大剂量组比较差异无统计学意义(P>0.05)。观察解剖的移植瘤,小剂量组瘤体较小,大剂量组瘤体更小,呈球形,淡红色,质软;瘤体质量小剂量组(0.66±0.15)g和大剂量组(0.48±0.11)g均小于对照组(0.83±0.16)g,差异均有统计学意义(均P<0.05),见图 1B

A:三组移植瘤的生长曲线比较.与对照组比较,*P < 0.05;B:三组移植瘤大体标本比较.与对照组比较,小剂量组和大剂量组瘤体较小,大剂量组更明显,呈球形,淡红色. 图 1 三组瘤体体积比较 Fig. 1 The inhibition of DJ-1 siRNA on the growth of LSCC xenograft model
2.2 三组Caspase-3和Ki-67表达阳性率比较

Caspase-3基因表达阳性染色主要定位于细胞质中,为粗细不一的棕黄色颗粒。对照组中被染棕黄色颗粒较少,小剂量组和大剂量组中较多,见图 2。Caspase-3在对照组、小剂量组、大剂量组的阳性率分别为25.0%(2/8)、62.5%(5/8)、75.0%(6/8),差异均有统计学意义(均P<0.05),表明Caspase-3能促进肿瘤细胞凋亡。

A:对照组在细胞质中的棕黄色颗粒较少(如箭头所示);B:小剂量组在细胞质中棕黄色颗粒较多(如箭头所示),细胞破裂也较多;C:大剂量组棕黄色颗粒在细胞质中更多(如箭头所示).SP染色,标尺=250 μm. 图 2 免疫组织化学检测各组Caspase-3的表达 Fig. 2 The expression of Caspase-3 in tumor specimens by immunohistochemistry

Ki-67基因表达阳性染色主要定位于细胞核中,为大小不一的棕黄色颗粒。对照组棕黄色颗粒较多,小剂量组部分细胞核被染色,而大剂量组细胞核很少见到棕黄色颗粒,见图 3。Ki-67在对照组、小剂量组和大剂量组的阳性率分别为100.0%(8/8)、50.0%(4/8)、37.5%(3/8),小剂量组和大剂量组Ki-67表达减少(P<0.05),大剂量组减少更明显,差异均有统计学意义(均P<0.05),表明Ki-67能抑制肿瘤细胞增殖。

A:对照组细胞核中棕黄色颗粒很多(如箭头所示);B:小剂量组细胞核中棕黄色颗粒减少(如箭头所示);C:大剂量组细胞核中棕黄色颗粒明显减少(如箭头所示),且部分细胞破裂.SP染色,标尺=250 μm. 图 3 免疫组织化学检测各组Ki-67的表达 Fig. 3 The expression of Ki-67 in tumor specimens by immunohistochemistry
2.3 三组DJ-1、survivin、PTEN mRNA表达比较

与对照组比较,DJ-1和survivin mRNA表达小剂量组、大剂量组减少,且大剂量组比小剂量组表达更少,差异均有统计学意义(均P < 0.05)。而与DJ-1和survivin相反,PTEN mRNA表达小剂量组、大剂量组增多,与对照组比较,差异均有统计学意义(均P < 0.05),见图 4

与对照组比较,*P < 0.05. 图 4 三组DJ-1、survivin、PTEN mRNA表达比较 Fig. 4 DJ-1,survivin and PTEN mRNA expression in experimental and control groups
2.4 三组DJ-1、survivin、PTEN蛋白表达比较

与对照组比较,DJ-1和survivin蛋白表达小剂量组、大剂量组均减少(均P < 0.05),而大剂量组与小剂量组表达差异无统计学意义(P>0.05)。与DJ-1和survivin相反,PTEN蛋白表达小剂量组、大剂量组增多,与对照组差异均有统计学意义(均P < 0.05),见图 5

A:三组DJ-1、PTEN、survivin表达的蛋白质免疫印迹图;B:三组DJ-1、PTEN、survivin蛋白相对表达量比较.与对照组比较,*P < 0.05. 图 5 三组DJ-1、survivin和PTEN蛋白的表达 Fig. 5 Western blot results of the expression of DJ-1,survivin and PTEN in experimental and control groups
3 讨 论

近年来,手术结合放疗、化疗等综合措施使喉癌患者5年存活率有所提高,但喉癌的复发、转移、放疗抵抗及化学药物耐受等问题仍是患者死亡的主要原因[1]。恶性肿瘤的发生、发展与癌基因的异常扩增以及抑癌基因的突变、缺失或低表达等密切相关[7]。我们前期在体外采用RNA干扰沉默喉癌Hep-2细胞株的DJ-1基因,发现Hep-2细胞的生长和增殖显著抑制[4],本研究则在体内水平探讨DJ-1基因对喉癌裸鼠移植瘤生长的抑制作用。

前期研究发现,与其他恶性肿瘤类似,DJ-1基因在喉癌临床标本中也呈现高表达,且与survivin基因的表达呈正相关[8]。在喉癌Hep-2细胞株中,下调DJ-1基因的表达,能显著抑制喉癌细胞的生长[4]。为了进一步阐明DJ-1基因在喉癌发生发展过程中的作用,本研究建立了喉癌裸鼠移植瘤的动物模型,并采用RNA干扰技术沉默DJ-1基因的表达。我们发现与体外研究结果类似,DJ-1基因干扰(小剂量组和大剂量组)的裸鼠瘤体生长均慢于对照组,移植瘤大小及质量均小于对照组,且大剂量组比小剂量组效果更明显;凋亡相关Caspase-3基因表达多于对照组,而生长增殖相关Ki-67基因表达低于对照组,证实了DJ-1 siRNA对喉癌细胞生长抑制和促进凋亡作用,与体外实验的结果相符。

DJ-1基因是Nagakubo等[9]在1997年发现的一种新的丝裂原依赖性癌基因,近年研究发现,DJ-1在各种肿瘤如胃癌、乳腺癌、非小细胞肺癌、肝癌、宫颈癌等多种肿瘤组织中高表达,并发现其与恶性肿瘤的发展及预后等密切相关[10-12],但其作用机制尚不明确。有研究显示,DJ-1基因通过调节PTEN基因对磷脂酰肌醇3激酶(PI3K)/Akt/mTOR通路产生促进作用而使多种解毒酶增多,形成一个利于细胞生长的微环境,促进细胞不断增殖、生长[13]

PTEN基因是一个具有双重特异磷酸酶活性的抑癌基因。在生长因子的刺激下,细胞中的PI3K能够被激活并磷酸化磷脂酰肌醇二磷酸(PIP2)生成三磷酸磷脂酰肌醇3(PIP3),PIP3 能引起蛋白激酶(PDK)的聚集并磷酸化激活激酶PKB/Akt,形成利于细胞生长的微环境而促进细胞生长和增殖。而PTEN基因能抑制PIP2的磷酸化,以减少PIP3的生成,阻断PKB/Akt通路的激活,抑制细胞的生长和增殖[14]

基于上述结果,我们推测DJ-1 siRNA对喉癌Hep-2裸鼠移植瘤的生长有抑制作用。为了进一步探索DJ-1 siRNA在裸鼠移植瘤内可能的作用机制,我们分别检测了剥离的移植瘤的相关基因如DJ-1、survivin、PTEN基因 mRNA及其蛋白的表达,研究结果显示,DJ-1基因干扰后DJ-1和survivin的mRNA及蛋白表达水平低于对照组,且大剂量组比小剂量组抑制作用更显著,而PTEN的表达却相反,其mRNA和蛋白表达均高于对照组,这与喉癌Hep-2细胞的研究结果也是一致的[4]

综上所述,DJ-1 siRNA能显著抑制喉癌Hep-2裸鼠移植瘤模型的生长及增殖,其作用途径可能如下:一方面下调了DJ-1和survivin基因的表达,促进细胞凋亡;另一方面释放了PTEN基因,阻断PI3K-PKB/Akt通路的激活,从而抑制细胞的生长和增殖。本研究结果为DJ-1 siRNA作为新的抗肿瘤药物提供了新的依据。

参考文献
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文章信息

沈志森, 邓红霞, 叶栋, 张建, 裘世杰, 李群, 崔翔
SHEN Zhisen, DENG Hongxia, YE Dong, ZHANG Jian, QIU Shijie, LI Qun, CUI Xiang
RNA干扰沉默DJ-1基因对Hep-2细胞裸鼠移植瘤生长的影响
Effect of DJ-1 silencing by RNA interference on growth of xenografted human laryngeal squamous cell carcinoma Hep-2 cells in nude mice
浙江大学学报(医学版), 2016, 45(4): 349-355
Journal of Zhejiang University(Medical Sciences), 2016, 45(4): 349-355.
http://dx.doi.org/10.3785/j.issn.1008-9292.2016.07.04

文章历史

收稿日期: 2016-04-10
接受日期: 2016-06-24
基金项目: 浙江省自然科学基金(LY14H160003);浙江省医药卫生省部培育计划(2014PYA017);浙江省医药卫生科技计划项目(2012ZDA042);宁波市科技创新团队(2012B82019,2015B11050);宁波市自然科学基金(2012A610208);浙江省医学会临床科研资金项目(2015ZYC-A49)
通讯作者: 沈志森(1959-), 男, 硕士, 主任医师, 教授, 博士生导师, 主要从事喉癌的基因诊断与分子治疗研究; E-mail:szs7216@163.com; http://orcid.org/0000-0001-6660-0488

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