淀粉样蛋白-β(Aβ)是阿尔茨海默病(Alzheimer′s disease，AD)的主要病理标志，Aβ诱导的神经毒性和神经纤维缠结被认为是引起和延续AD神经退行性过程的关键事件。Aβ级联假说认为Aβ在脑内异常升高、聚集、交联、沉积形成老年斑(senile plaque，SP)，造成神经元变性、坏死、突触可塑性下降和记忆障碍。Aβ主要有Aβ1-42和Aβ1-40两种，其中Aβ1-42的疏水性更强，更易形成寡聚体，形成SP沉淀的核心。Aβ通过β分泌酶和γ分泌酶先后剪切β淀粉样蛋白前体蛋白(amyloid β-protein precursor，APP)而产生[1]。正常情况下，Aβ的产生和清除保持平衡，但是当APP基因突变、APP裂解酶或Aβ降解酶中任一者功能异常时，Aβ产生和清除间的平衡就被打破，Aβ异常升高导致级联病理损伤，形成AD [2]。
半胱氨酰白三烯受体1(cysteinyl leukotriene receptor 1，CysLT1R)是一种G蛋白偶联受体，由6个亲水环连接着7个跨膜疏水区组成[3]。CysLT1R在外周的气道平滑肌细胞和上皮细胞、血管内皮细胞以及嗜酸性粒细胞等均有表达，在中枢的神经元和胶质细胞也有表达[4]。有研究资料显示，生理状态下大脑CysLT1R表达水平明显低于病理状态下的水平[5]，这提示CysLT1R表达上调很可能是组织器官病理反应的信号。近年来，人们研究发现基因敲除CysLT1R和药物阻断(普鲁司特和孟鲁司特)CysLT1R可通过抑制小胶质细胞激活、神经炎症和神经毒性，减轻LPS和链脲佐菌素诱导的AD样损伤[6-8]；向小鼠脑海马注射CysLT1R激动剂半胱氨酰白三烯D4(leukotriene D4，LTD4)可以降低小鼠学习记忆能力[9]；而CysLT1R拮抗剂普仑司特可以显著改善Aβ诱导的AD模型小鼠认知功能障碍[10]。本课题组近期研究结果显示，AD患者海马和前额叶皮层中CysLT1R蛋白和mRNA水平明显增加[11]。以上研究均表明CysLT1R在AD的发病过程中起重要作用，但目前其作用机制仍不清楚。本研究的目的是探究CysLT1R对APP-HEK293细胞中Aβ生成的影响并探寻其可能的作用机制，为进一步阐明CysLT1R在AD发病过程中的重要作用提供理论依据。
1 材料与方法 1.1 材料 1.1.1 细胞系稳定表达APP的人胚胎肾293细胞(APP-HEK293)由中国药科大学徐晓军副教授课题组惠赠。
1.1.2 试剂YM17690(108806-41-3，上海康曼生物科技有限公司)，普仑司特(150821-03-7，美国Sigma-Aldrich公司)，LV- CysLT1R-EGFP(00015399，上海吉凯基因化学技术有限公司)，DMEM培养基(12100046，美国Hyclone公司)，人Aβ1-40酶联免疫试剂盒、人Aβ1-42酶联免疫试剂盒(CSB-E06928Eq、CSB-E10684h，武汉华美生物工程有限公司)，兔抗APP抗体、兔抗BACE1抗体、兔抗NF-κB p65抗体(2452S、5606S、4764T，美国CST公司)，兔抗PS1抗体、兔抗PS2抗体、鼠抗CysLT1R抗体(sc-7860、sc-1456-R、sc-514181，美国Santa cruz公司)，兔抗β-actin抗体、山羊抗兔二抗IgG(BM3873、BA1039，中国博士德生物工程有限公司)，Alexa Fluor 488标记驴抗兔IgG、Alexa Fluor 594标记山羊抗小鼠IgG(34206ES60、33212ES60，上海翊圣生物科技有限公司)，BCA蛋白浓度测定试剂盒、DAPI(P0012、C1002，碧云天生物技术有限公司)，膜蛋白、核蛋白和胞质蛋白抽提试剂盒(C510002，上海生工生物工程股份有限公司)，Clathrin siRNA、β-arrestin-2 siRNA、Rab-5 siRNA(苏州吉玛基因股份有限公司)，Lipofactamine 2000(11668-019，美国Invitrogen公司)，Protein A agarose琼脂糖珠(16-156，美国Sigma-Aldrich公司)。
1.1.3 仪器RT-6000型酶标仪(深圳雷杜生命科学股份有限公司)，转移电泳槽和转移电泳仪(美国Bio-Rad公司)，Tanon4200型化学发光成像分析系统、Tanon3500型数码凝胶成像分析系统(上海天能科技有限公司)，Eppendorf Master Cycler PCR仪(德国Eppendorf)，DMI3000 B荧光显微镜(德国LEICA)。
1.2 方法 1.2.1 试剂的配置含普仑司特的培养基配制：称取普仑司特0.490 5 g，溶解到1 mL PBS(0.1 mol·L-1，pH 7.4)中，得到终浓度为1.0 mol·L-1的母液。临用取1.0 μL母液，用培养基稀释至1 000 mL。含YM17690的培养基配制：称取YM17690 0.491 5 g，溶解到1 mL PBS(0.1 mol·L-1，pH 7.4)中，得到终浓度为1.0 mol·L-1的母液。临用取1.0 μL母液，用培养基稀释至1 000 mL。
1.2.2 APP-HEK293细胞的病毒转染APP-HEK293细胞接种于细胞瓶中。用促转染溶液(enhanced infection solution，Eni.S)将慢病毒稀释成病毒滴度为1×1010 TU·L-1的病毒稀释液。细胞瓶中加入病毒稀释液和Polybrene(50 mg·L-1)稀释液，转染5 d(120 h)后，检查病毒转染效率。
1.2.3 ELISA法检测细胞培养基中Aβ的含量给予CysLT1R激动剂YM17690(1 μmol·L-1)及拮抗剂普仑司特(1 μmol·L-1)12 h后，收集各组细胞的培养基上清液，按照试剂盒说明书规定的方法测定细胞培养基中Aβ1-40和Aβ1-42的含量。
1.2.4 Western blot法检测APP、BACE1、PS1、PS2蛋白表达水平和CysLT1R和NF-κB p65的细胞分布药物干预后用细胞刮收集细胞，按照试剂盒说明书步骤分步提取细胞的膜蛋白、核蛋白和胞质蛋白。用BCA法检测蛋白含量，上样、电泳、转膜，加入一抗APP(1 ∶ 1 000)、BACE1(1 ∶ 1 000)、PS1(1 ∶ 1 000)、PS2(1 ∶ 1 000)、β-actin(1 ∶ 3 000)、CysLT1R(1 ∶ 1 000)、NF-κB p65(1 ∶ 1 000)、β-actin(1 ∶ 3 000)、Histone 3(1 ∶ 3 000)和Na+-K+-ATPase(1 ∶ 3 000)，4 ℃过夜，洗去一抗，加入适当的二抗(1 ∶ 5 000)，室温孵育2 h，洗去二抗，随后采用化学发光成像系统成像，蛋白条带积分光密度值用Gel-Pro扫描分析。其中以β-actin为胞质蛋白内参、Histone 3为核蛋白内参、Na+-K+-ATPase为膜蛋白内参。
1.2.5 细胞免疫荧光法检测CysLT1R和NF-κBp65的细胞分布细胞接种于24孔板中，培养过夜。给予CysLT1R激动剂YM17690(1 μmol·L-1)及拮抗剂普仑司特(1 μmol·L-1)2 h后，固定封闭处理细胞，孵育抗体CysLT1R(1 ∶ 200)、NF-κB p65(1 ∶ 200)，4 ℃过夜，PBS冲洗5 min×3次。加入适当的荧光二抗(1 ∶ 500)，室温避光孵育2 h，PBS冲洗5 min×3次，加入少量DAPI染核5 min，PBS冲洗5 min×3次，加入防淬灭甘油，Leica DMI3000荧光显微镜下观察。
1.2.6 siRNA转染将细胞接种于6孔板中。取clathrin siRNA、β-arrestin-2 siRNA、Rab-5 siRNA按说明书制成siRNA-Lipofactamine 2000复合物。6孔板加入siRNA-Lipofactamine 2000复合物后，细胞无血清培养基培养6 h后更换为完全培养基，12 h后细胞分组并开展后续药物干预实验。
1.2.7 免疫共沉淀法分析CysLT1R和NF-κBp65的蛋白相互作用单独给予CysLT1R激动剂YM17690(1 μmol·L-1)或同时给予拮抗剂普仑司特(1 μmol·L-1)2 h后，RIPA裂解液裂解细胞，离心后收集上清液，加入Protein A琼脂糖珠，离心，收集上清，弃去Protein A琼脂糖珠。BCA法测定蛋白含量，稀释蛋白至1 g·L-1，以每1 mL总蛋白中加入1 μg抗体的比例(1 ∶ 1 000)加入NF-κB p65抗体，4 ℃过夜，等量Normal Rabbit IgG作为阴性对照。加入Protein A琼脂糖珠，4 ℃孵育过夜。洗涤、离心，重复6次。上样缓冲液重悬琼脂糖珠-抗原抗体复合物，99 ℃变性10 min，电泳，转膜，加入一抗CysLT1R(1 ∶ 1 000)4 ℃过夜。洗去一抗，加入适当的二抗(1 ∶ 5 000)，室温孵育2 h，洗去二抗，随后采用化学发光成像系统成像。
1.3 数据统计和分析采用SPSS 20.0软件进行统计分析，实验数据以x±s表示。两组间比较采用Student′s t检验进行统计分析；多组间比较采用单因素方差分析(One-way ANOVA)，并采用Dunnett′s进行post hoc test统计分析。
2 结果 2.1 激活CysLT1 R增加APP-HEK293细胞中Aβ的生成转染LV-CysLT1R-EGFP 5 d后，Western Blot验证病毒转染效率，结果显示：与阴性对照组相比，感染LV-CysLT1R-EGFP的APP-HEK293细胞中CysLT1R表达水平明显增加(Fig 1)。ELISA检测结果显示，CysLT1R激动剂YM17690升高APP-HEK293细胞中Aβ1-40和Aβ1-42的分泌水平，而预先给予CysLT1R拮抗剂普仑司特能抑制Aβ1-40和Aβ1-42的分泌(Fig 2A、B)。
|
| Fig 1 LV-CysLT1R-EGFP transfection significantly increased CysLT1R expression (x±s, n=4) Western blot detection of the expression of CysLT1R in APP-HEK293 cells after LV-CysLT1R-EGFP transfection. *P<0.01 vs LV-EGFP group. |
|
| Fig 2 Activation of CysLT1R increased Aβ production (x±s, n=3) 1:LV-EGFP+Veh+Veh; 2:LV-CysLT1R-EGFP+Veh+Veh; 3:LV-CysLT1R-EGFP+YM17690+Veh; 4:LV-CysLT1R-EGFP+YM17690+Pran. A: Levels of Aβ1-40 in cell culture medium; B: Levels of Aβ1-42 in cell culture medium. *P < 0.05 vs LV-CysLT1R-EGFP+Veh+Veh group. |
为了进一步探究CysLT1R影响Aβ生成的具体环节，给予CysLT1R激动剂YM17690(1 μmol·L-1)及拮抗剂普仑司特(1 μmol·L-1)12 h后，我们采用Western blot检测APP-HEK293细胞中APP、β分泌酶BACE1、γ分泌酶亚基PS1、PS2的表达，结果显示，激活CysLT1R对APP和PS1、PS2的表达没有影响，但能上调BACE1的表达，并且预先给予普仑司特能抑制BACE1的上调(APP: P>0.05; BACE1: P<0.05; PS1: P>0.05; PS2: P>0.05; n=4, Fig 3A-F)。
|
| Fig 3 Effect of CysLT1R activity on expression of APP, BACE1, PS1, PS2 (x±s, n=4) 1:LV-EGFP+Veh+Veh; 2:LV-CysLT1R-EGFP+Veh+Veh; 3:LV-CysLT1R-EGFP+YM17690+Veh; 4:LV-CysLT1R-EGFP+YM17690+Pran. A: Expression of APP and BACE1 in APP-HEK293 cells after administration of YM17690 (1 μmol·L-1) and pranlukast (1 μmol·L-1) for 12 h; B: Statistical analysis of the expression of APP; C: Statistical analysis of the expression of BACE1; D: Expression of PS1 and PS2 in APP-HEK293 cells after administration of YM17690 (1 μmol·L-1) and pranlukast (1 μmol·L-1) for 12 h; E: Statistical analysis of the expression of PS1; F: Statistical analysis of the expression of PS2. *P < 0.05 vs LV-CysLT1R-EGFP+Veh+Veh group. |
GPCR在激活后往往发生内化从而下调细胞表面受体的水平，因此，我们观察CysLT1R激活后细胞内受体的分布情况。Western blot结果显示，激活CysLT1R使细胞膜及细胞质中受体水平明显下降，而细胞核中受体水平升高，并且预先给予普仑司特能抑制受体分布的这种变化(Fig 4A-C)。免疫荧光实验也证实了这一结果(Fig 5)。已有研究表明，CysLT1R的激活与NF-κB信号通路有关[10]，为此我们研究了NF-κB p65亚基的细胞分布情况。Western blot结果显示，激活CysLT1R使细胞质中NF-κB p65亚基水平下降，而细胞核中其水平升高，并且预先给予普仑司特能抑制NF-κB p65亚基的分布变化(Fig 6A、B)。
|
| Fig 4 Nuclear translocation of CysLT1R by Western blot (x±s, n=4) 1:LV-EGFP+Veh+Veh; 2:LV-CysLT1R-EGFP+Veh+Veh; 3:LV-CysLT1R-EGFP+YM17690+Veh; 4:LV-CysLT1R-EGFP+YM17690+Pran. A: The expression of CysLT1R in nucleus. B: The expression of CysLT1R in cytoplasm. C: The expression of CysLT1R on the cell membrane.*P < 0.05vsLV-CysLT1R-EGFP+Veh+Veh group. |
|
| Fig 5 Nuclear translocation of CysLT1R by cell immunofluorescence staining (x±s, n=4) 1:LV-EGFP+Veh+Veh; 2:LV-CysLT1R-EGFP+Veh+Veh; 3:LV-CysLT1R-EGFP+YM17690+Veh; 4:LV-CysLT1R-EGFP+YM17690+Pran. A: The location of CysLT1R in the nucleus; B: Statistical results of the nuclear localization of CysLT1R. *P < 0.05 vs LV-CysLT1R-EGFP+Veh+Veh group. |
|
| Fig 6 Nuclear translocation of NF-κB p65 subunit (x±s, n=4) 1:LV-EGFP+Veh+Veh; 2:LV-CysLT1R-EGFP+Veh+Veh; 3:LV-CysLT1R-EGFP+YM17690+Veh; 4:LV-CysLT1R-EGFP+YM17690+Pran. A: The distribution of NF-κB p65 subunit in nucleus; B: The distribution of NF-κB p65 subunit in cytoplasm. *P < 0.05 vs LV-CysLT1R-EGFP+Veh+Veh group. |
已有文献报道，CysLT1R的内化依赖于clathrin、β-arrestin-2和Rab-5等蛋白的辅助[12]，为了探究CysLT1R对Aβ生成的影响是否与其内化后的核转位相关，我们首先应用siRNA分别敲减上述三个内化辅助因子。Western blot结果显示，敲减clathrin和β-arrestin-2显著抑制了APP-HEK293细胞中CysLT1R激活后发生的受体核转位，而敲减Rab-5对此无明显影响(Fig 7A-F)。免疫荧光实验也证实了这一结果(Fig 7G、H)。检测Aβ结果显示，敲减clathrin和β-arrestin-2显著抑制Aβ1-40和Aβ1-42的分泌，而敲减Rab-5对此无明显影响(Fig 7F-H)。此外，敲减clathrin和β-arrestin-2还显著抑制BACE1的表达，而对APP的表达没有明显影响(Fig 8A-C)。
|
| Fig 7 Inhibition of nuclear translocation of CysLT1R reduces Aβ production in cells (x±s, n=4) 1:Veh+Scramble siRNA; 2:YM17690+Scramble siRNA; 3:YM17690+Clathrin siRNA; 4:YM17690+β-arrestin-2 siRNA; 5:YM17690+Rab-5 siRNA. A-C: Expression of CysLT1R in nucleus, cytoplasm and cell membrane by Western blot and the statistical results; D-E: Expression of CysLT1R in nucleus, cytoplasm and cell membrane by cell immunofluorescence staining and the statistical results; F-H: Levels of Aβ1-40 and Aβ1-42 by Western blot and the statistical results. *P<0.05 vs YM17690+Scramble siRNA group. |
|
| Fig 8 Inhibition of nuclear translocation of CysLT1R reduced BACE1 expression (x±s, n=4) 1:Veh+Scramble siRNA; 2:YM17690+Scramble siRNA; 3:YM17690+Clathrin siRNA; 4:YM17690+β-arrestin-2 siRNA; 5:YM17690+Rab-5 siRNA. A-C: Expression of BACE1 and APP by Western blot and the statistical results. *P < 0.05 vs YM17690+Scramble siRNA group. |
CysLT1R核转位与NF-κB信号通路的相关性研究结果显示，敲减clathrin和β-arrestin-2能抑制NF-κB p65亚基的核转位(Fig 9A、B)。
|
| Fig 9 Knockdown of clathrin and β-arrestin-2 inhibited nuclear translocation of NF-κB p65 subunit (x±s, n=4) 1:Veh+Scramble siRNA; 2:YM17690+Scramble siRNA; 3:YM17690+Clathrin siRNA; 4:YM17690+β-arrestin-2 siRNA; 5:YM17690+Rab-5 siRNA. A: The distribution of NF-κB p65 subunit in nucleus by Western blot and the statistical results. B: The distribution of NF-κB p65 subunit in cytoplasm by Western blot and the statistical results. *P<0.05 vs YM17690+Scramble siRNA group. |
为了研究CysLT1R入核的意义，我们采用免疫共沉淀法研究了CysLT1R与NF-κB p65亚基是否存在相互作用。结果显示，单独给予YM17690激活CysLT1R时，核蛋白提取物经anti-NF-κB p65抗体沉淀后仍能检测到CysLT1R蛋白，表明CysLT1R与NF-κB p65亚基间存在相互作用，而预先给予普仑司特能抑制两者之间的这种相互作用(Fig 10A)。而在其胞质蛋白提取物中暂未发现CysLT1R与NF-κB p65亚基的相互作用(Fig 10B)。
|
| Fig 10 CysLT1R interacted with NF-κB p65 subunit in nucleus A: The nucleoprotein extracts were prepared and co-immunoprecipitated by NF-κB antibody with IgG as negative control. B: The cytoplasmic extracts were prepared and co-immunoprecipitated by NF-κB antibody with IgG as negative control. |
有研究表明，CysLT1R参与并调节AD的发病过程[8-11]，并且CysLT1R在脑内表达随年龄的增长而增加，这与Aβ沉积增加和行为缺陷密切相关[13]。但目前对CysLT1R调节Aβ积累的具体作用机制的研究仍较匮乏，同时CysLT1R与NF-κB途径之间的关系也需进一步阐明。YM17690是一种选择性CysLT1R激动剂，其远远优于LTD4的化学稳定性使它逐渐成为研究CysLT1R特性的一个重要工具药物[9-10]。因此，本实验采用YM17690作为CysLT1R特异性激动剂。
CysLT1R是一种G蛋白偶联受体，由6个亲水环连接着7个跨膜疏水区组成[4]。长久以来，GPCR都被视为是一类细胞表面受体，近年来，已发现越来越多的GPCR在细胞内其他的一些区室发挥作用，如细胞核、线粒体、内质网等。目前已发现超过40种细胞核GPCR，细胞核GPCR大部分来源于质膜转位[14]。已经有大量的研究表明，GPCR内化的最可能机制是通过clathrin包被的小泡进行内吞[15]。2005年首次有研究报道在细胞核中观察到了CysLT1R[16]。此后的研究表明，如同多数GPCR一样，CysLT1R在质膜被激活后随即经内吞作用发生内化。CysLT1R的内化由clathrin、β-arrestin-2和Rab-5共同介导[12]。基于此，我们使用siRNA在APP-HEK293细胞中分别敲减上述三种蛋白。结果显示，敲减clathrin或β-arrestin-2可以有效抑制CysLT1R的核转位，而敲减Rab-5对此无影响。Rab-5介导的内体融合通常标志着受体进入降解程序[12]，这提示我们本实验中高表达CysLT1R受体的APP-HEK293细胞受体内化后的去路是核转位，并且CysLT1R的核转位是其参与Aβ生成调控的必要环节。
有研究表明，Aβ激活NF-κB有2种可能机制：一种是通过RAGE间接激活，一种是直接激活方式[17]。并且，Aβ1-42诱导NF-κB报告基因的转录，诱导NF-κB p65亚基向细胞核移位[18]。本实验中，我们还发现激活CysLT1R可以引起NF-κB p65亚基的核转位，CysLT1R与NF-κB p65亚基间在细胞核内相互结合。因此，我们有理由推测，激活CysLT1R引起受体内化与核转位，从而上调BACE1表达进而诱导细胞生成Aβ1-42，后者诱导NF-κB p65亚基向细胞核转位。而NF-κB p65亚基向细胞核移位是激活NF-κB信号通路的重要步骤，从而进一步促进Aβ生成，最终导致AD的淀粉样变性和神经退行性变。当然，CysLT1R与NF-κB p65亚基间在细胞核内相互结合说明这两种蛋白之间存在相互作用，这种相互作用对NF-κB信号通路产生何种影响仍需进一步探究。
综上所述，CysLT1R的核转位及核分布参与了NF-κB信号通路的激活，这与该受体诱导Aβ的生成有关。
| [1] |
谢林江, 邓婷, 徐颖, 等. 阿尔茨海默病信号通路研究进展及对策研究[J]. 中国药理学通报, 2021, 37(2): 165-70. Xie L J, Deng T, Xu Y, et al. Research progress and countermeasures of Alzheimer's disease signaling pathways[J]. Chin Pharmacol Bull, 2021, 37(2): 165-70. doi:10.3969/j.issn.1001-1978.2021.02.004 |
| [2] |
Wang J, Gu B J, Masters C L, et al. A systemic view of Alzheimer disease - insights from amyloid-β metabolism beyond the brain[J]. Nat Rev Neurol, 2017, 13: 612-23. doi:10.1038/nrneurol.2017.111 |
| [3] |
McGeer P L, McGeer E G. The amyloid cascade-inflammatory hypothesis of Alzheimer disease: implications for therapy[J]. Acta Neuropathol, 2013, 126: 479-97. doi:10.1007/s00401-013-1177-7 |
| [4] |
Bäck M, Dahlén S E, Drazen J M, et al. International union of basic and clinical pharmacology. LXXXIV: Leukotriene receptor nomenclature, distribution, and pathophysiological functions[J]. Pharmacol Rev, 2011, 63: 539-84. doi:10.1124/pr.110.004184 |
| [5] |
Marschallinger J, Schaffner I, Klein B, et al. Structural and functional rejuvenation of the aged brain by an approved anti-asthmatic drug[J]. Nat Commun, 2015, 6: 8466. doi:10.1038/ncomms9466 |
| [6] |
Chen F, Ghosh A, Wu F, et al. Preventive effect of genetic knockdown and pharmacological blockade of CysLT1R on lipopolysaccharide (LPS)-induced memory defificit and neurotoxicity in vivo[J]. Brain Behav Immun, 2017, 60: 255-69. doi:10.1016/j.bbi.2016.10.021 |
| [7] |
Ghosh A, Chen F, Thakur A, et al. Cysteinyl leukotrienes and their receptors: Emerging therapeutic targets in central nervous system disorders[J]. CNS Neurosci Ther, 2016, 22: 943-51. doi:10.1111/cns.12596 |
| [8] |
Zhang C T, Lin J R, Wu F, et al. Montelukast ameliorates streptozotocin-induced cognitive impairment and neurotoxicity in mice[J]. Neurotoxicology, 2016, 57: 214-22. doi:10.1016/j.neuro.2016.09.022 |
| [9] |
Tang S S, Wang X Y, Hong H, et al. Leukotriene D4 induces cognitive impairment through enhancement of CysLT(1)R-mediated amyloid-beta generation in mice[J]. Neuropharmacology, 2013, 65: 182-92. doi:10.1016/j.neuropharm.2012.08.026 |
| [10] |
Tang S S, Ji M J, Chen L, et al. Protective effect of pranlukast on Abeta(1)(-)(4)(2)-induced cognitive deficits associated with downregulation of cysteinyl leukotriene receptor 1[J]. Int J Neuropsychopharmacol, 2014, 17: 581-92. doi:10.1017/S1461145713001314 |
| [11] |
Chen F, Fang S, Du Y, et al. CRISPR/Cas9-mediated CysLT1R deletion reverses synaptic failure, amyloidosis and cognitive impairment in APP/PS1 mice[J]. Aging (Albany NY), 2021, 13(5): 6634-61. |
| [12] |
Parhamifar L, Sime W, Yudina Y, et al. Ligand-induced tyrosine phosphorylation of cysteinyl leukotriene receptor 1 triggers internalization and signaling in intestinal epithelial cells[J]. PLoS One, 2010, 5(12): e14439. doi:10.1371/journal.pone.0014439 |
| [13] |
Na J Y, Song K, Lee J W, et al. 6-Shogaol has anti-amyloidogenic activity and ameliorates Alzheimer's disease via CysLT1R-mediated inhibition of cathepsin B[J]. Biochem Biophys Res Commun, 2016, 477(1): 96-102. doi:10.1016/j.bbrc.2016.06.026 |
| [14] |
Pavlos N J, Friedman P A. GPCR signaling and trafficking: The long and short of it[J]. Trends Endocrinol Metab, 2017, 28(3): 213-26. doi:10.1016/j.tem.2016.10.007 |
| [15] |
Eichel K, Jullié D, von Zastrow M. [beta]-Arrestin drives MAP kinase signalling from clathrin-coated structures after GPCR dissociation[J]. Nat Cell Biol, 2016, 18(3): 303-10. doi:10.1038/ncb3307 |
| [16] |
Naik S, Billington C K, Pascual R M, et al. Regulation of cysteinyl leukotriene type 1 receptor internalization and signaling[J]. J Biol Chem, 2005, 280(10): 8722-32. doi:10.1074/jbc.M413014200 |
| [17] |
Jo D H, Cho C S, Kim J H, et al. Intracellular amyloid-β disrupts tight junctions of the retinal pigment epithelium via NF-κB activation[J]. Neurobiol Aging, 2020, 95: 115-22. doi:10.1016/j.neurobiolaging.2020.07.013 |
| [18] |
Blanco A, Alvarez S, Fresno M, et al. Amyloid-beta induces cyclooxygenase-2 and PGE2 release in human astrocytes in NF-kappa B dependent manner[J]. J Alzheimers Dis, 2010, 22(2): 493-505. doi:10.3233/JAD-2010-100309 |