肺癌是高发病率和高死亡率的恶性肿瘤，自2018年以来，全球每年约有177万人死于肺癌^[1]。其中非小细胞肺癌（non-small cell lung cancer，NSCLC）占所有肺癌病例的80%。在过去的几十年里，NSCLC的诊断和治疗水平得到了较大的提升，然而，只有约16%的患者能够在早期得到诊断和治疗，肺癌的5年生存率仍然低于20%^[2]。因此，寻找更有价值的生物标志物和探索新的治疗靶点是NSCLC治疗中亟待解决的问题。

微RNA（microRNAs，miRNAs）是一种小的非编码RNA分子，通过与相应的靶点信使RNA（messenger RNA，mRNA）的3’非翻译性区域（3’untranslation region，3’UTR）直接相互作用来调控基因表达^[3]，与肿瘤的发生发展相关。研究^[3]表明，miRNAs的错误表达与多种人类癌症相关，有学者将其定义为肿瘤抑制因子或抑癌基因。本课题组前期研究发现，miR-29a/b/c、miR-135a、miR-203在NSCLC中均出现了不同程度的表达下调^[4]，且有证据表明miR-203参与了多种肿瘤的发生^[5-6]。但其在NSCLC发生及进展中的作用和机制尚不清楚。本研究通过检测miR-203在人NSCLC组织中的表达情况，结合体外实验，进一步研究miR-203在NSCLC中的作用，以期为NSCLC的治疗提供依据。

1 材料与方法 1.1 样本采集

选取2018年至2019年于我科接受手术治疗的NSCLC患者20例，术中留取新鲜NSCLC组织及其对应的癌旁组织。所有患者均签署知情同意书。本研究符合赫尔辛基宣言，并获得中国医科大学第四附属医院伦理委员会批准。

1.2 细胞培养与分组

人NSCLC细胞系H1650和LTEP-a-2购自中国科学院细胞库（上海）。细胞培养于含10%胎牛血清的DMEM高糖培养基中，在37 ℃、5% CO2细胞培养箱中常规培养。每2 d传代1次。将细胞分为对照组和miR-203过表达组2组。

1.3 方法

1.3.1 RNA提取、逆转录、实时定量聚合酶链反应

用TRIzol试剂（美国Invitrogen公司）提取总RNA。按照PrimeScript RT试剂试剂盒（日本TaKaRa公司）说明书进行互补DNA合成。采用正向引物5’-TCAAACTTCACAGGTTGCC-3’和反向引物5’-GATCATGTTCCACCACAATG-3’检测ABCE1转录水平。β-actin作为内参，正向引物序列为5’-AGACCTGTACGCCAACACAG-3’，反向引物序列为5’-CGGACTCGTCATACTCCTGC-3’。根据说明书，使用TaqMan miRNA分析（美国Applied Biosystems公司）试剂盒检测成熟miR-203的表达水平，并使用U6小核RNA作为内参。

1.3.2 细胞转染

将处于对数生长期的LTEP-a-2细胞按照3×10⁵/孔接种于6孔板中，在细胞培养箱中过夜。用2 mL不含血清的DMEM培养基饥饿处理4 h。在200 μL无血清DMEM培养基中加入2 μg DNA和2 μL PLUS试剂，室温孵育10 min，然后加入200 μL无血清DMEM培养基加入6 μL LTX试剂，配制成转染工作液，室温孵育30 min。弃掉孔中培养基，加入转染工作液并将6孔板置于细胞培养箱中孵育。4 h后加入200 μL胎牛血清。转染24~48 h后，进入功能试验。

1.3.3 划痕实验

取出6孔板，用1 mL移液器吸头在孔中垂直作一划痕。用PBS清洗细胞3次，随后加入不含血清的DMEM培养基，拍照。将6孔板置于细胞培养箱中培养，24 h后取出拍照。

1.3.4 流式细胞术检测细胞凋亡

细胞处理24 h后，移去培养基，更换成无血清培养基，常规条件下培养饥饿24 h。收集细胞到离心管中，1 000 r/min离心5 min，加入4 ℃预冷的PBS重悬细胞，再次离心沉淀细胞，小心吸除上清。加入1×结合缓冲液重悬细胞，调节细胞密度为（1~5）×10⁶/mL。取100 μL细胞悬液至于5 mL流式管中，加入5 μL Annexin V/FITC混匀后于室温避光孵育5 min，加入10 μL PI染液，并加入400 μL PBS后进行上机检测。采用Flowjo软件对流式结果进行分析处理。

1.4 统计学分析

采用SPSS 18.0统计分析软件对数据进行分析。计量资料以x±s表示，组间比较采用t检验，P < 0.05为差异有统计学意义。

2 结果 2.1 miR-203及ABCE1在NSCLC及癌旁组织的表达

采用实时PCR对20例NSCLC及癌旁组织进行检测，结果显示，NSCLC组织中miR-203平均表达水平（0.369±0.338）与癌旁组织（0.575±0.450）相比明显降低，差异有统计学意义（P = 0.019）。而NSCLC组织中的ABCE1表达水平（1.243±0. 716），较癌旁组织（0. 739±0. 316）明显升高，差异有统计学意义（P = 0.000 6）。

2.2 miR-203在体外负性调节ABCE1的基因表达

由于miR-203在非小细胞肺癌的组织和细胞系中表达较低，miR-203水平相对较低的肺腺癌细胞系H1650、LTEP-a-2被用来评估miR-203诱导的效果。采用miR-203 mimics模拟表达载体诱导miR-203表达，实时PCR结果显示，miR-203在H1650、LTEP-a-2中表达分别达到1.954±0.099和5.631±0.282，较对照组（1.021±0.046和0.099±0.039）均有升高，提示过表达。实时PCR结果显示，过表达miR-203在H1650和LTEP-a-2细胞中使ABCE1 mRNA水平分别达到0.449±0.049和0.353±0.018，较对照组（1.009±0.156和1.005±0.060）降低50%以上，差异均有统计学意义（P < 0.05），提示miR-203能够抑制ABCE1表达。

2.3 miR-203在体外抑制NSCLC的迁移

划痕实验检测miR-203过表达对H1650和LTEP-a-2细胞迁移能力的影响。结果显示，miR-203 mimics转染的H1650和LTEP-a-2细胞迁移区域分别为0.354±0.035和0.456±0.016，与对照组（0.585±0.021、0.590± 0.013）相比，转染miR-203的细胞迁移能力降低，差异有统计学意义（P < 0.05），见图 1。

2.4 miR-203过表达诱导体外NSCLC细胞凋亡

流式细胞学检测结果显示，miR-203 mimics转染的H1650和LTEP-a-2细胞中，凋亡细胞比例分别达到31.307%±1.420%和35.250%±0.512%，明显高于对照组（13.068%±1.364%和19.313%±0.688%），差异有统计学意义（P < 0.05），提示miR-203过表达能够促进NSCLC细胞凋亡，见图 2。

3 讨论

NSCLC的生存和预后相对较差，部分原因是复发和转移，以及对化疗、放疗和靶向治疗的耐药^[7]。因此，阐明NSCLC的分子发病机制，对制定有效的干预策略至关重要。单个miRNA序列能够调控众多靶基因^[8]，miRNA通过调控不同的靶点来驱动肿瘤发生和进展，如miR-200、miR-34a在乳腺癌和脑膜瘤的发展过程中发挥重要作用^[9-10]。本研究结果显示，miR-203在NSCLC细胞和组织表达下调，作为一个肿瘤抑制microRNA，通过抑制ABCE1途径的多个关键组件，抑制肺癌细胞生长和细胞侵袭性和转移。

miR-203是本课题组前期研究中独立筛选出的与肺癌密切相关的基因，并被证实具有确切的影响肺癌增殖、侵袭及转移等行为的功能。本文系统研究miR-203对ABCE1的调节，进一步探讨肺癌细胞增殖、凋亡的影响及机制，不仅有助于解决肺癌基础理论的相关问题，还有助于发现新的肿瘤治疗靶点。已有研究^[11]表明，miR-203通过抑制GATA6的表达来降低人类结肠癌细胞的干细胞特性；在透明细胞肾细胞癌中，miR-203通过调节ZEB2参与了上皮-间充质转化通路的激活^[12]；miR-203在食管癌细胞中是一种肿瘤抑制因子，其表达水平有可能被用作食管癌患者预后的预测指标^[13]。以上均提示miR-203的功能依赖于肿瘤细胞。本研究结果表明，miR-203在NSCLC细胞系和肿瘤组织中的表达明显降低。这一数据提示miR-203在调控多种信号通路方面发挥着核心作用，对于肺癌药物的开发具有潜在意义。

ABCE1是ATP结合盒超家族的成员之一，但是缺乏该家族其他转运蛋白所共有的跨膜区域，因此不参与任何跨膜转运功能。近年来，随着对ABCE1基因深入的研究，有证据表明该基因可能与肿瘤的形成、转移和预后相关^[14]。最新的报道^[15]显示，ABCE1对于肺癌化疗的敏感性有重要的作用。前期工作中本课题组应用RNA干扰技术特异性敲除ABCE1的表达后，发现其抑制了肺腺癌细胞、小细胞肺癌细胞的增殖及侵袭能力，并诱导细胞凋亡。目前，除了负性调节2-5A/ RNase L通路以及参与蛋白翻译过程^[16]，ABCE1基因的机制研究不多，其在肿瘤内乃至肺癌内的作用机制和细胞通路尚未明确。

综上，本研究首次筛选出NSCLC组织内能够有效调节ABCE1基因的miR-203，并证实miR-203在肺癌内表达的减少降低了对ABCE1基因的负性调节，从而促进了肺癌侵袭和转移，抑制了凋亡。miR-203及其调节的ABCE1基因很有可能作为新的突破口，为肺癌的诊治提供新的思路。