2017, Vol. 46文章信息
- 徐道知, 欧阳玲
- XU Daozhi, OUYANG Ling
- 地西他滨抑制A431细胞生物学功能的机制
- Mechanism of the Inhibition of Decitabine in A431 Cells
- 中国医科大学学报, 2017, 46(12): 1105-1110
- Journal of China Medical University, 2017, 46(12): 1105-1110
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文章历史
- 收稿日期：2016-07-13
- 网络出版时间：2017-11-30 18:10
引用本文 |
2. 沈阳医学院附属第二医院普外科, 沈阳 110035
2. Department of General Surgery, The Second Hospital of Shenyang Medical College, Shenyang 110035, China
外阴鳞状细胞癌的预后相对不良，目前的治疗方式一般以手术为主，并且配合放化疗的使用[1-2]，但是由于放化疗药物的不良反应明显以及根治性手术经常导致严重术后并发症、局部畸形及功能障碍，显著降低了患者的生存质量。因此，有必要寻找一种更好的化疗药物或者化疗辅助药物。地西他滨是一种2’-脱氧胞苷类似物，具有极强的抗肿瘤活性，而且不同剂量作用机制不尽相同，高浓度地西他滨具有较强的细胞毒性作用，低浓度时具有去甲基化作用[3]。地西他滨通常作用于细胞的G2/M期，将细胞周期阻滞于G2/M期，进而抑制细胞增殖[4]。地西他滨的去甲基化作用可以在体内、体外通过抑制DNA甲基转移酶使抑癌基因恢复正常的去甲基状态，重新激活那些由于DNA过度甲基化而失活的基因，使细胞恢复正常终末分化、衰老或凋亡[5-7]。目前地西他滨主要用于白血病的治疗，对肠癌和乳腺癌等实体瘤也有一定的抗肿瘤效果[8]。很多研究证实，地西他滨可以抑制肺癌、膀胱癌和胃癌等多种肿瘤细胞的生长与侵袭，但是关于地西他滨对外阴鳞状细胞癌的作用研究较少[9]。
本研究以人外阴鳞状细胞癌细胞系A431为研究对象，探讨地西他滨对A431细胞生长与转移功能的抑制作用，进一步初步探索其抑制机制，为临床上寻找更好的外阴鳞状细胞癌治疗方案提供理论基础。
1 材料与方法 1.1 材料人外阴鳞状细胞癌细胞系A431（实验室冻存），DMEM培养基（美国Hyclone），胎牛血清（天津灏洋），地西他滨（江苏豪森），四甲基偶氮唑蓝、DMSO（美国Sigma），台盼蓝（上海碧云天）。
1.2 方法 1.2.1 细胞培养和分组将A431细胞接种于含体积分数10%灭活胎牛血清的DMEM培养基中，置37 ℃、体积分数5%CO2培养箱中培养。
1.2.2 MTT实验将处于对数生长期的细胞消化传代，以1×104/mL浓度接种于96孔培养板中，终体积200 μL。将细胞分为对照组（0 μmol/L地西他滨）、5 μmol/L地西他滨组、10 μmol/L地西他滨组和20 μmol/L地西他滨组。处理后的细胞于0、12、24、36、48 h和60 h（每个浓度每个时间点分别设3个副孔）分别加入5 mg/mL MTT溶液10 μL，置37 ℃、体积分数5%CO2培养箱中培养4 h后，弃上清，每孔中加入200 μL DMSO，震荡10 min后在490 nm处记录吸光（optical density，OD）值。药物对细胞抑制率计算方法：细胞生长抑制率（%）=（对照组OD值-药物组OD值）/对照组OD值×100。
1.2.3 Hoechst 33258染色将对数生长期的细胞制成1×106/L浓度的细胞悬液接种于6孔板中，贴壁培养24 h后，将细胞分为对照组（0 μmol/L地西他滨）、5 μmol/L地西他滨组和10 μmol/L地西他滨组。药物作用24 h后，每孔加入100 μL Hoechst 33258孵育染色15 min，PBS洗净后，用荧光显微镜观察细胞凋亡情况。
1.2.4 transwell实验取对数生长期细胞以1×105/mL浓度接种于上室中，终体积200 μL，下室加入600 μL双无培养基，细胞培养12 h后更换培养基，将细胞分为对照组（0 μmol/L地西他滨）、5 μmol/L地西他滨组和10 μmol/L地西他滨组，各组均设3个副孔。24 h后取出小室，棉签擦去上层细胞，PBS清洗后95%乙醇固定20 min，4%台盼蓝染色20 min，200倍显微镜下观察。药物对细胞的抑制率计算公式：抑制率（%）=1-（剂量组平均细胞数/对照组平均细胞数）× 100。
1.2.5 Western blotting实验所用细胞分为对照组（0 μmol/L地西他滨）、5 μmol/L地西他滨组和10 μmol/L地西他滨组，药物作用24 h后，使用RIPA裂解液搜集并裂解细胞，提取蛋白，通过G250定量后。取30 μg蛋白进行电泳（80~120 V）、转膜（100 V，1 h）后，用5%脱脂奶粉室温封闭1 h。一抗4 ℃过夜后TBST清洗3次。二抗室温1 h后TBST清洗3次。Cyclin B1、CDC2、PCNA、Bax、Bcl-2、MMP2和GAPDH抗体及二抗均购置美国Santa公司。
1.2.6 实时PCR实验用细胞分为对照组（0 μmol/L地西他滨）、5 μmol/L地西他滨组和10 μmol/L地西他滨组，药物作用24 h后，Trizol法提取RNA，反转录成cDNA，进行实时PCR反应。所用引物：Cyclin B1，正向5’-CATTATTGATCGGTTCATGC-3’，反向5’-CTAGTGCAGAATTCAGCTGTGGTA-3’；CDC2，正向5’-GAAGATTATACCAAAATAGAGA-3’，反向5’-CTACATCTTCTTAATCTCTGATTGTCC-3’；Bcl-2，正向5’-GGTGAACTGGGGGAGGATTG-3’，反向5’-GGCAGGCATGTTGACTTCAC-3’；Bax，正向5’-AGCTGAGCGAGTGTCTCAAG-3’，反向5’-GTCCAATGTCCAGCCCATGA-3’；MMP2，正向5’-CGCATCTGGGGCTTTAAACAT-3’；反向5’-TCAGCACAAACAGGTTGCAG-3’；PCNA，正向5’-TTTGAGGCACGCCTGATC-3’；反向5’-GATCAGGCGTGCCTCAAA-3’；GAPDH，正向5’-GGCAAATTCAACGGCACAGT-3’；反向5’-TAGGGCCTCTCTTGCTCAGT-3’。
1.3 统计学分析采用SPSS 17.0软件进行统计学分析，组间比较采用非配对t检验分析，P < 0.05为差异有统计学意义。
2 结果 2.1 地西他滨对A431细胞增殖的影响不同浓度的地西他滨作用于A431细胞0、12、24、36、48和60 h后，显著抑制A431细胞的增殖，与对照组比较有统计学差异（P < 0.05），且地西他滨对细胞增殖的抑制作用随着浓度的增加而增加。见表 1。
| Time point | Control | 5 μmol/L decitabine | 10 μmol/L decitabine | 20 μmol/L decitabine |
| 12 h | 0 | 33.37±1.281） | 34.55±2.031），2） | 36.84±3.211），2），3） |
| 24 h | 0 | 43.81±1.531），4） | 48.64±4.651），2），4） | 50.69±4.991），2），3），4） |
| 36 h | 0 | 48.72±2.341），4），5） | 53.91±9.401），2），4），5） | 58.28±5.121），2），3），4），5） |
| 48 h | 0 | 49.83±2.091），4），5），6） | 58.05±3.011），2），4），5），6） | 63.69±6.021），2），3），4），5），6） |
| 60 h | 0 | 50.27±1.581），4），5），6），7） | 62.38±5.981），2），4），5），6），7） | 69.98±7.131），2），3），4），5），6），7） |
| 1）P < 0.05 vs control group；2）P < 0.05 vs 5 μmol/L decitabine group at the same time point；3）P < 0.05 vs 10 μmol/L decitabine group at the same time point；4）P < 0.05 vs 12 h within group；5）P < 0.05 vs 24 h within group；6）P < 0.05 vs 36 h within group；7）P < 0.05 vs 48 h within group. | ||||
2.2 不同浓度地西他滨对A431细胞增殖相关蛋白的影响
不同浓度地西他滨对Cyclin B1、PCNA和CDC2蛋白及mRNA水平均有一定程度的抑制作用，随着药物浓度的升高抑制作用增强。5 μmol/L和10 μmol/L地西他滨作用后，Cyclin B1、CDC2、PCNA蛋白和mRNA水平均显著下调，与对照组比较有统计学差异（P < 0.05），10 μmol/L地西他滨组与5 μmol/L地西他滨组比较，Cyclin B1、CDC2和PCNA蛋白和mRNA水平的差异也有统计学意义（P < 0.05）。见图 1。
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| A, Western blotting was used to detect the expression of Cyclin B1, PCNA, and CDC2 proteins in A431 cells. B, real-time PCR was used to detect the expression levels of Cyclin B1, PCNA, and CDC2 mRNA in A431 cells. *P < 0.05 vs control group; #P < 0.05 vs 5 μmol/L decitabine group. 1, control group; 2, 5 μmol/L decitabine group; 3, 10 μmol/L decitabine group. 图 1 不同浓度地西他滨作用下A431细胞增殖相关蛋白的变化 Fig.1 Proteins related to the proliferation of A431 cells treated with different decitabine concentrations |
2.3 不同浓度地西他滨对A431细胞凋亡的影响
Hoechst 33258染色（图 2）结果显示，地西他滨可以促进A431细胞的凋亡，随着药物浓度的增加，凋亡细胞明显增加。不同浓度地西他滨对Bax和Bcl-2蛋白和mRNA水平均有一定程度的影响，随着药物浓度的升高作用增强。5 μmol/L和10 μmol/L地西他滨作用后Bax蛋白和mRNA水平均显著上调，Bcl-2蛋白和mRNA水平均显著下调，与对照组比较有统计学差异（P < 0.05），10 μmol/L地西他滨组与5 μmol/L地西他滨组比较，Bax和Bcl-2蛋白和mRNA水平的差异也有统计学意义（P < 0.05）。见图 3。
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| A, control group; B, 5 μmol/L decitabine group; C, 10 μmol/L decitabine group. 图 2 不同剂量地西他滨作用下A431细胞的凋亡情况 Fig.2 Apoptosis of A431 cells treated with different decitabine concentrations |
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| A, Western blotting was used to detect the expression of Bax and Bcl-2 proteins in A431 cells; B, real-time PCR was used to detect the levels of Bax and Bcl-2 mRNA in A431 cells. * P < 0.05 vs control group; #P < 0.05 vs 5 μmol/L decitabine group. 1, control group; 2, 5 μmol/L decitabine group; 3, 10 μmol/L decitabine group. 图 3 不同浓度地西他滨作用下A431细胞凋亡相关蛋白的变化 Fig.3 Proteins related to the apoptosis of A431 cells treated with different decitabine concentrations |
2.4 不同浓度地西他滨对A431细胞转移的影响
台盼蓝染色（图 4）结果显示，地西他滨可以抑制A431细胞的转移。对照组、5 μmol/L地西他滨组、10 μmol/L地西他滨组的转移细胞数分别为153.76±4.63、121.24±14.92、79.37±24.35，随着药物浓度的增加，转移细胞数目减少，5 μmol/L地西他滨组、10 μmol/L地西他滨组与对照组比较，10 μmol/L地西他滨组与5 μmol/L地西他滨组比较，差异均有统计学意义（P < 0.05）。
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| A, control group; B, 5 μmol/L decitabine group; C, 10 μmol/L decitabine group. 图 4 不同浓度的地西他滨作用下A431细胞的转移情况 Fig.4 Migration of A431 cells treated with different decitabine concentrations |
不同浓度地西他滨对MMP2有一定程度的抑制作用，随着药物浓度的升高抑制作用增强，5 μmol/L地西他滨组、10 μmol/L地西他滨组与对照组比较，10 μmol/L地西他滨组与5 μmol/L地西他滨组比较，MMP2蛋白和mRNA水平的差异均有统计学意义（P < 0.05）。见图 5。
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| A, Western blotting was used to detect the expression of MMP2 protein in A431 cells; B, real-time PCR was used to detect the level of MMP2 mRNA in A431 cells. *P < 0.05 vs control group; #P < 0.05 vs 5 μmol/L decitabine group. 1, control group; 2, 5 μmol/L decitabine group; 3, 10 μmol/L decitabine group. 图 5 不同浓度地西他滨作用下A431细胞迁移相关蛋白的变化 Fig.5 Proteins related to the migration of A431 cells treated with different decitabine concentrations |
3 讨论
地西他滨作为一种治疗原发性和继发性骨髓增生异常的化疗药物，目前被很多研究人员用于实体肿瘤实验中[10]，地西他滨目前对实体肿瘤的治疗仍处于临床试验阶段。地西他滨可以通过活化肿瘤细胞中异常甲基化的细胞周期相关基因来激活肿瘤内抑癌基因的表达[11]，地西他滨还可以恢复肿瘤细胞对化疗药物的敏感性[12]。研究[13]表明，地西他滨单独应用时对肿瘤的增殖抑制作用可能并不明显，但是可以显著增加肿瘤细胞对顺铂、卡铂、表柔比星等多种抗肿瘤药物的敏感性。地西他滨在体外可以明显逆转胃癌顺铂耐药细胞株，抑制其抑癌基因的甲基化状态来恢复抑癌基因的表达。也有报道指出，地西他滨可以通过调节p21等蛋白的表达，明显将细胞周期抑制在G2/M期。地西他滨也可以显著增加细胞的凋亡来抑制肿瘤细胞的生长。
本研究通过将不同浓度的地西他滨作用于A431细胞中，发现地西他滨可以明显抑制A431细胞的增殖。进一步实验发现地西他滨可以显著下调A431细胞中Cyclin B1与CDC2蛋白的表达。高等真核生物通过长期进化过程逐渐形成了多层次的细胞周期调控通路，这些调控通路都集中在细胞周期依赖蛋白激酶的调节上。其中Cyclin B1的合成、降解以及亚细胞定位均对有丝分裂的调控起着重要作用，Cyclin B1参与细胞周期监测点的调控，也维持基因组的稳定性[14]。很多报道指出，Cyclin B1的异常表达与肿瘤的发生发展、侵袭转移以及预后密切相关。在调节G2/M期进程时，Cyclin B1通过与CDC2蛋白结合共同发挥作用，PCNA本身与细胞的甲基化水平密切相关，也与细胞增殖关系密切[15-16]。有研究指出，地西他滨可以调节肿瘤细胞的G2/M期。本研究也发现地西他滨可以抑制A431细胞的增殖，进一步检测地西他滨对Cyclin B1、CDC2蛋白的作用，结果发现地西他滨可以通过抑制Cyclin B1、PCNA与CDC2蛋白的表达来抑制A431细胞的增殖。
本研究发现地西他滨可以促进A431细胞的凋亡，通过检测凋亡相关的经典蛋白Bax与Bcl-2，结果发现地西他滨可以通过调节其活性来促进A431细胞的凋亡，进一步加强了地西他滨抑制A431细胞生长的水平。
临床观察表明，肿瘤患者大多死于肿瘤的侵袭转移，因此肿瘤细胞的侵袭转移是众多研究人员的关注热点。目前的研究表明，基质金属蛋白酶家族可以有效地降解细胞外基质成分，破坏基底膜，为肿瘤的侵袭转移提供了便利。MMP2是基质金属蛋白酶家族中的重要成员[17-18]。本研究通过transwell实验检测发现，地西他滨对A431细胞的转移功能有一定的抑制作用，进而检测了地西他滨对MMP2蛋白的作用，结果发现地西他滨可以显著抑制MMP2的表达。
综上所述，地西他滨可以通过抑制A431细胞的增殖，促进其凋亡来抑制A431细胞的生长，地西他滨也可以抑制A431细胞的转移功能。由此可见，地西他滨可以成为治疗外阴鳞状细胞癌的潜在药物。
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