中国海洋大学学报自然科学版  2018, Vol. 48 Issue (S2): 17-22  DOI: 10.16441/j.cnki.hdxb.20180091

引用本文  

刘凯凯, 李琪. 岩牡蛎和长牡蛎的线粒体DNA PCR-RFLP快速鉴定[J]. 中国海洋大学学报(自然科学版), 2018, 48(S2): 17-22.
LIU Kai-Kai, LI Qi. Fast Discrimination of Crassostrea nippona and C. gigas Based on PCR-RFLP of mtDNA[J]. Periodical of Ocean University of China, 2018, 48(S2): 17-22.

基金项目

山东省科技发展计划项目(2016ZDJS06A06);青岛市产业培育计划项目(17-3-3-64-nsh)资助
Supported by Science and Technology Program of Shandong Province(2016ZDJS06A06); Industrial Development Project of Qingdao(17-3-3-64-nsh)

通讯作者

李琪, E-mail:qili66@ouc.edu.cn

作者简介

刘凯凯(1992-),男,硕士生。E-mail: 1040039367@qq.com

文章历史

收稿日期:2018-03-05
修订日期:2018-05-23
岩牡蛎和长牡蛎的线粒体DNA PCR-RFLP快速鉴定
刘凯凯 , 李琪     
海水养殖教育部重点实验室(中国海洋大学),山东 青岛 266003
摘要:岩牡蛎(Crassostrea nippona)与长牡蛎(Crassostrea gigas)是世界上2种重要的海产双壳经济贝类。两种牡蛎形态相似,较易混淆,目前没有快速准确的鉴别方法。本研究采用PCR-RFLP技术首次从分子水平上鉴定了岩牡蛎与长牡蛎。利用通用引物与本研究开发引物扩增2种牡蛎的线粒体16S rDNA与COI基因片段,并对扩增出的目的基因片段进行了测序。对测序结果进行限制性内切酶特异性位点分析,选取了同一种限制性核酸内切酶Alu Ⅰ对PCR产物进行酶切,并用2.0%琼脂糖凝胶检测PCR产物的酶切结果。结果表明,岩牡蛎与长牡蛎PCR产物经Alu Ⅰ酶切后产生了大小不同的酶切片段,根据酶切图谱可有效鉴别岩牡蛎与长牡蛎。这种简单、可靠、经济的PCR-RFLP鉴定方法,能够为岩牡蛎养殖新品种的开发提供技术支撑。
关键词岩牡蛎    长牡蛎    线粒体DNA    PCR-RFLP    物种鉴定    

牡蛎是世界性广布种类,是我国乃至世界最重要的海产经济贝类之一。2016年中国牡蛎养殖产量达483万t,居世界首位[1]。长牡蛎(Crassostrea gigas)又称太平洋牡蛎,是我国北方沿海最主要的养殖种类。在北方海域长牡蛎的繁殖期在每年的5~8月,此时体内大部分营养用于繁殖后代,体内糖原大量消耗,软体部重量急剧减少,口感差,不宜供应市场。因此,牡蛎养殖业亟需引进优良牡蛎新品种来供应夏季市场。

岩牡蛎(Crassostrea nippona),又称夏牡蛎,属珍珠贝目(Pterioida)牡蛎科(Ostreidae),主要分布在日本、韩国等东亚地区,具有抗病能力强、适应范围广、生长速度快、产量高等特点。岩牡蛎产卵期在8~9月,且有多批次放精产卵的特点,夏季体内糖原含量仍保持在较高水平,味道较好,弥补了长牡蛎夏季产卵不能上市的空缺,深受市场欢迎[2]

为了丰富我国牡蛎的养殖种类,我们从日本引进岩牡蛎进行人工育苗和良种选育。在引种繁育中发现,岩牡蛎与长牡蛎成体区别明显,但稚贝不易区分。由于牡蛎的外壳可塑性较强和分布区域的重叠性,仅仅依据外部形态学特征鉴定牡蛎种类存在很强的主观因素,这给牡蛎新品种的选育与养殖带来极大困难。因此,迫切需要一种快速有效的鉴别岩牡蛎与长牡蛎的技术方法。

聚合酶链式反应-限制性片段长度多态性分析(PCR-RFLP)技术是一种常用的快速简便分析物种组成的方法[3],与PCR产物测序的序列对比鉴定方法相比,其操作简单、快捷,节约成本。本研究基于岩牡蛎与长牡蛎16S rDNA与COI基因片段开发了一种快速高效的PCR-RFLP鉴定技术,首次从分子生物学水平上鉴别区分这2种重要的经济贝类。

1 材料和方法 1.1 实验材料

实验所用的岩牡蛎与长牡蛎取自山东荣成养殖基地。每种牡蛎各取壳高2~3 cm的稚贝18个个体,解剖取闭壳肌,于-80 ℃超低温冰箱保存,用于提取DNA。

1.2 PCR扩增与测序

采用常规“酚—氯仿”抽提法提取样品基因组DNA,用1.0%琼脂糖凝胶电泳检测所提取的DNA质量,并用超微量分光光度计(NanoDrop 2000)测定DNA浓度,最终稀释至50 ng/μL。参照Palumbi等[4]设计的引物(16Sar:5′-CGCCTGTTTATCAAAAACAT-3′,16Sbr:5′-CCGGTCTGAACTCAGATCACGT-3′),以基因组DNA为模板,扩增岩牡蛎和长牡蛎的16S rDNA片段。根据岩牡蛎(GenBank登录号:HM015198)与长牡蛎(GenBank登录号:AB033687)线粒体COI的相对保守区域,利用Premier 5.0软件设计出一对引物序列(COIY-F:5′-CTATTAGAAATATGCGGTCTG-3′,COIY-R:5′-AACAAAGTAAGTATCGTGAAG-3′),用于扩增2种牡蛎的COI基因片段。PCR反应体系为10 μL:50 ng DNA,0.25 U Taq DNA聚合酶,1 μL 10× PCR buffer,0.8 μL dNTPs,1 μmol/L上下引物,5.15 μL灭菌超纯水。PCR反应程序为:94 ℃预变性3 min;94 ℃变性30 s,56 ℃(16S rDNA)或54 ℃(COI)退火45 s,72 ℃延伸1 min,共32个循环;72 ℃延伸5 min,4 ℃保存。取2 μL PCR产物,经1.5%的琼脂糖凝胶电泳成像检测。随机挑选部分个体的PCR产物送至青岛华大基因生物有限公司进行测序。

1.3 PCR-RFLP分析

测序得到的序列,运用软件Clustal W进行序列比对。使用软件BioEdit进行酶切位点的分析,最后选取同一种内切酶Alu Ⅰ对COI与16S rDNA基因片段进行酶切。酶切反应体系为10 μL,包括5 μL的PCR产物,0.5 μL的限制性内切酶Alu Ⅰ(5 U;Takara),1 μL的10 × buffer酶切缓冲液,3.5 μL的灭菌超纯水。酶切反应体系在37 ℃反应过夜,酶切产物用2.0%琼脂糖凝胶电泳成像检测。

2 结果与分析 2.1 PCR扩增结果

PCR扩增结果如图 1图 2所示,岩牡蛎和长牡蛎16S rDNA与COI均扩增出一条单一片段,未发现其片段长度多态性。16S rDNA测序得到的片段大小为530 bp(见图 1),COI测序得到的片段大小为614 bp(见图 2)。

(1~4:长牡蛎;5~8:岩牡蛎;M:100 bp DNA marker。1~4:C. gigas;5~8:C. nippona;M:100 bp DNA marker.) 图 1 长牡蛎和岩牡蛎16S rDNA片段PCR产物电泳图 Fig. 1 Electrophoretic profile of PCR products of 16S rDNA of C. gigas and C. nippona

(1~4:长牡蛎;5~8:岩牡蛎;M:100 bp DNA marker。1~4:C. gigas;5~8:C. nippona;M. 100 bp DNA marker.) 图 2 长牡蛎和岩牡蛎COI片段PCR产物电泳图 Fig. 2 Electrophoretic profile of PCR products of COI of C. gigas and C. nippona
2.2 序列比对结果与酶切位点

序列比对及酶切位点分析后发现,在长牡蛎16S rDNA扩增产物中距多核苷酸序列5′端的第457和458位碱基之间的磷酸二酯键为限制性内切酶Alu Ⅰ酶切位点(AGCT),而岩牡蛎16S rDNA扩增产物有2个Alu Ⅰ酶切位点,分别在370和371碱基之间和406和407碱基之间(见图 3)。在长牡蛎COI扩增产物中距多核苷酸序列5′端的第102和103位碱基间的磷酸二酯键与第576和577位碱基间的磷酸二酯键为内切酶Alu Ⅰ酶切位点,岩牡蛎COI扩增产物只有1个Alu Ⅰ酶切位点,在第378和379碱基之间(见图 4)。

(下划线标出的为Alu Ⅰ酶切位点。Sites of Alu Ⅰ(AGCT) are underlined with single lines.) 图 3 长牡蛎和岩牡蛎16S rDNA序列比对结果及酶切位点 Fig. 3 Sequence alignment and restriction-site polymorphisms in 16S rDNA sequences of C. gigas and C. nippona

(下划线标出的为Alu Ⅰ酶切位点。Sites of Alu Ⅰ(AGCT) are underlined with single lines.) 图 4 长牡蛎和岩牡蛎COI序列比对结果及酶切位点 Fig. 4 Sequence alignment and restriction-site polymorphisms in COI sequences of C. gigas and C. nippona
2.3 酶切结果

限制性内切酶Alu Ⅰ对岩牡蛎和长牡蛎的PCR扩增产物的酶切结果如图 56所示,与预期酶切分析结果一致。岩牡蛎16S rDNA片段酶切后得到36、124和370 bp 3个片段,而长牡蛎16S rDNA扩增片段经Alu Ⅰ酶切后得到73和457 2个片段(见图 5)。COI基因片段经Alu Ⅰ酶切后,岩牡蛎产生236和378 2个片段,长牡蛎产生38、102和474 bp 3个片段(见图 6)。虽然有些酶切片段因为太小在琼脂糖凝胶成像中显示模糊,但这并不影响将这2种牡蛎直观地区分开来。

(1~2:岩牡蛎;3~4:长牡蛎;M:100 bp DNA marker。1~2:C. nippona;3~4:C. gigas;M:100 bp DNA marker.) 图 5 长牡蛎和岩牡蛎16S rDNA酶切结果 Fig. 5 RFLP patterns of 16S rDNA of C. gigas and C. nippona after digestion with Alu

(1~2:岩牡蛎;3~4:长牡蛎;M:100 bp DNA marker。1~2: C. nippona;3~4: C. gigas;M:100 bp DNA marker.) 图 6 长牡蛎和岩牡蛎COI酶切结果 Fig. 6 RFLP patterns of COI of C. gigas and C. nippona after digestion with Alu
3 讨论

岩牡蛎是正在开展全人工繁育的牡蛎养殖新品种,具有较高的经济价值。在引种繁育阶段,牡蛎物种的鉴定十分重要。牡蛎品种出现混杂,会直接影响人工育苗效果。由于牡蛎外部形态特征(如贝壳形状)常随栖息环境的不同而发生很大的改变,依据传统形态分类的方法对其进行物种鉴定存在很大困难。随着科学技术的发展,分子生物学技术的广泛应用解决了此类难题。在以前的研究中,多种分子生物学技术已经应用到牡蛎的物种鉴别中,包括测序[5],变性梯度凝胶电泳(GDDE)[6],特异性多重PCR[7],高分辨率熔解曲线(HRM)[8]等技术。上述方法通常成本较高,或操作繁琐,或设备昂贵,对操作人员技术要求较高。

PCR-RFLP技术是在PCR和DNA序列分析基础上发展产生的RFLP技术,因方法简单、快捷、成本较低,已广泛应用于水产经济物种的分析鉴定。例如,Sumathi等[9]利用PCR-RFLP技术成功鉴定了5种石斑鱼;庄怡等[10]利用PCR-RFLP技术成功鉴定鲫鱼6个不同品系;文菁等[11]利用开发的PCR-RFLP方法成功鉴定了16种经济海参;Pie等[12]利用PCR-RFLP技术快速鉴定了巴西海岸3种重要的养殖牡蛎。

线粒体DNA作为真核细胞的核外遗传因子,结构简单,易于分离,进化速度比核DNA快,已广泛应用于水产动物的种类鉴别中[13-14]。线粒体DNA中,16S rDNA与COI基因片段保守性相对较高,引物可以种间通用,是种类鉴别中常用的基因片段。本研究选用Palumbi等[4]开发的一对通用引物在2种牡蛎中成功扩增出一条530 bp的16S rDNA基因片段,同时设计筛选了一对特异性引物,在岩牡蛎与长牡蛎中成功扩增出一条长614 bp的线粒体COI片段,PCR产物被限制性内切酶Alu Ⅰ酶切后,经琼脂糖凝胶电泳成像显示出大小不同的酶切片段,成功将岩牡蛎与长牡蛎鉴别出来。随机挑选了岩牡蛎与长牡蛎各8个个体进行了测序,测序结果与酶切实验结果一致,未发现酶切位点突变个体,验证了本研究PCR-RFLP鉴定方法的可行性与可靠性。

本研究基于线粒体DNA PCR-RFLP技术开发出的岩牡蛎与长牡蛎鉴定方法操作简单,仅仅需要PCR扩增目的基因片段,经特异性内切酶酶切、电泳后,即可有效鉴别岩牡蛎与长牡蛎。鉴定结果准确可靠,有利于节约成本,提高牡蛎样品的鉴定效率,同时为岩牡蛎养殖新品种的开发提供了技术手段。

4 结语

本研究基于岩牡蛎与长牡蛎16S rDNA与COI基因片段开发了一种快速高效的PCR-RFLP鉴定方法。利用通用引物与本研究开发引物扩增2种牡蛎的线粒体16S rDNA与COI基因片段,应用同一种限制性核酸内切酶Alu Ⅰ对PCR产物进行酶切,并对酶切产物进行琼脂糖凝胶电泳。根据酶切图谱可有效鉴别岩牡蛎与长牡蛎。这种简单、可靠、经济的PCR-RFLP鉴定方法,能够为岩牡蛎养殖新品种的开发提供技术支撑。

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Fast Discrimination of Crassostrea nippona and C. gigas Based on PCR-RFLP of mtDNA
LIU Kai-Kai, LI Qi     
The Key Laboratory of Mariculture (Ocean University of China), Ministry of Education, Qingdao 266003, China
Abstract: The Iwagaki oyster (Crassostrea nippona) and the Pacific oyster (C. gigas) are important species of shellfish in the world. C. nippona and C. gigas are similar in shell characteristics and difficult to discriminate morphologically. There was no quick and reliable method to discriminate these two oysters. In this study, we developed a PCR-RFLP assay for the rapid and effective identification of C. nippona and C. gigas at the molecular level for the first time. Amplifications of the 16S rDNA and COI genes were performed using the universal primers and the primers newly developed in this study, respectively. The amplified target fragments were sequenced and sequences were further analyzed for the selection of restriction enzymes using a software. The PCR product was digested by the selected restriction enzyme Alu Ⅰ and the digestion result were examined through electrophoresis in 2% agarose gel. Digestion of 16S rDNA and COI with Alu Ⅰ generated distinct restriction patterns for C. nippona and C. gigas, allowing a clear identification. In conclusion, this simple, reliable and cost-effective method can provide technical support for the development of C. nippona.
Key words: Crassostrea nippona    Crassostrea gigas    mtDNA    PCR-RFLP    species identification