中国公共卫生  2015, Vol. 31 Issue (9): 1159-1161   PDF    
胡桃醌抑制卵巢癌SKOV3细胞黏附和侵袭作用
方芳1, 郝峰1, 李强1, 姜晓明1, 张铎1, 王立国2     
1. 吉林医药学院检验学院, 吉林 吉林 132013;
2. 吉林医药学院附属医院泌尿外科 吉林 吉林 132013
摘要目的 探讨胡桃醌对人卵巢癌SKOV3细胞转移抑制作用。方法 实验设对照组、胡桃醌12.5、25.0、50.0、100.0 μmol/L组,通过噻唑蓝(MTT)实验检测细胞增殖能力,黏附实验和Transwell实验观察胡桃醌对SKOV3细胞黏附和侵袭能力,Western blot 检测基质金属蛋白酶2(MMP-2)和MMP-9蛋白表达变化。结果 与对照组比较,胡桃醌12.5、25.0、50.0、100.0 μmol/L组SKOV3细胞抑制率分别为(16.8±3.4)%、(39.6±9.7)%、(63.3±13.6)%和(84.5±17.3)%,明显升高,呈剂量依赖性;与对照组比较,25.0、50.0、100.0 μmol/L胡桃醌组SKOV3细胞黏附率和侵袭力分别为(49.2 ±6.5)%、(37.3±2.9)%、(24.7 ±3.7)%和(0.627±0.064)、(0.419±0.018)、(0.165±0.014),明显下降(P<0.05);与对照组比较,胡桃醌50.0、100.0 μmol/L组SKOV3细胞内MMP-2、MM-9表达水平明显下降(P<0.05),呈剂量依赖关系。结论 胡桃醌能明显抑制SKOV3细胞黏附能力及侵袭力,其机制可能与抑制细胞内MMP-2、MMP-9表达有关。
关键词胡桃醌     卵巢癌SKOV3细胞     黏附     侵袭    
Inhibitive effect of juglone on adhesion and invasion of human ovarian cancer SKOV3 cells
FANG Fang, HAO Feng, LI Qiang, et al    
College of Laboratory, Jilin Medical University, Jilin, Jilin Province 132013, China
Abstract: Objective To investigate inhibitive effect of juglone on metastasis of human ovarian cancer SKOV3 cells.Methods Human ovarian cancer SKOV3 cells were cultured with juglone in vitro.3-(4,5-Dimethylthiazol-2-yl)-2,5-diphenyl tetrazolium bromide(MTT)was used to investigate cell proliferation.The ability of adhesion and invasion were detected with fibronectin assay and Transwell assay.The expressions of matrix metalloproteinase-2(MMP-2)and matrix metalloproteinase-9(MM-9) proteins were determined with Western blot.Results Juglone could significantly inhibit the growth of SKOV3 cells in dose-dependent manner,with the cell proliferation inhibitory rates of 16.8±3.4%,39.6±9.7%,63.3±13.6%,and 84.5±17.3% at the dosages of 12.5,25.0,50.0,and 100.0 μmol/L,respectively.Compared with the control group,the adhesion rate and invasion of SKOV3 cells were 49.2 ±6.5% and 0.627±0.064,37.3±2.9% and 0.419±0.018,and 24.7±3.7% and 0.165±0.014) for 25,50,100μmol/L juglone groups(P<0.05 or P<0.01).The expressions of MMP-2 and MM-9 proteins in juglone groups were decreased with a dose-dependent trend(P<0.05 or P<0.01).Conclusion Juglone could significantly inhibit the adhesion and invasion of SKOV3 cells and the effect may be related to the inhibited expressions of MMP-2 and MMP-9 in SKOV3 cells.
Key words: juglone     ovarian cancer     adhension     invasion    

核桃楸树皮、果皮具有抗肿瘤、抗炎和杀虫作用,在中国许多治疗癌症的验方中均含有核桃楸成分。胡桃醌(juglone)又名5-羟基-1,4-萘醌,是一种天然环状醌类,可从胡桃楸的叶及外壳中提取。研究表明,胡桃醌具有促进肝癌,肺癌、前列腺癌、白血病细胞凋亡等作用[1, 2, 3, 4]。卵巢癌是妇科最常见恶性肿瘤之一,死亡率居妇科肿瘤首位。尽管近年来手术及综合疗法的不断改进,对卵巢癌原发病灶的处理有了明显改善,但卵巢癌患者5年生存率仍无明显提高,可能与70%以上的卵巢癌患者诊断时,病变已发生转移有关[5]。本研究通过观察胡桃醌对人卵巢癌SKOV3细胞的侵袭能力影响,旨在为胡桃醌治疗卵巢癌临床应用提供依据。结果报告如下。

1 材料与方法 1.1 主要试剂

人卵巢癌细胞SKOV3株(吉林医药学院实验中心实验室保存),属贴壁生长型细胞;胡桃醌、纤维黏连蛋白(fibronection,Fn)(美国Sigma公司);IMDM (Iscove's modified Dubecco's medium) 培养基及胰酶(美国Gibco公司);胎牛血清(杭州四季青公司);基质金属蛋白酶2(matrix metalloproteinase 2,MMP-2)和MMP-9抗体(美国EPITOMICS公司);matrigel胶(美国BD Biosciences公司);Transwell小室(德国Greiner bio-one公司)。

1.2 细胞分组与处理

SKOV3细胞株于37 ℃,5% CO2培养箱中,用IMDM+10%胎牛血清培养,隔日换液,取对数生长期细胞进行实验。实验设对照组、12.5、25.0、50.0、100.0 μmol/L组,每组设3个复孔。

1.3 SKOV3细胞增殖能力检测

采用噻唑蓝(MTT )比色法,取对数生长期细胞,调整细胞浓度为1×105个/mL,体积为200 μL,接种于96孔板内,于37 ℃、5%CO2条件下培养。加入不同浓度胡桃醌培养液,体外培养24 h后,加入MTT,测定吸光度(A)值,实验重复3次,增殖抑制率(%)=(1-胡桃醌组A值/对照组A值) × 100%。

1.4 细胞黏附率检测

将纤维黏连蛋白用磷酸盐缓冲液(phosphate buffered saline,PBS)稀释为100 mg/L,每孔100 μL包被于96孔板中,37 ℃包被2 h,用PBS洗涤2次,1%牛血清白蛋白封闭2 h;不同剂量胡桃醌处理细胞24 h,收集细胞,以无血清培养基制成单细胞悬液,调节细胞浓度为3×108个/L,加入包被培养板中,每孔200 μL,置37 ℃、5%CO2培养箱中孵育2 h;轻轻洗去未黏附细胞,用10%中性甲醛100 μL固定30 min;每孔加0.5% 结晶紫100 μL,室温染色2 h,蒸馏水洗涤1次,阴干后每孔加入2%十二烷基硫酸钠溶液100 μL,酶标仪570 nm波长测定各孔吸光度(A)值。细胞黏附率=(胡桃醌组A值/对照组A值)×100%。

1.5 细胞体外侵袭能力检测

采用Transwell法,取对数生长期SKOV3细胞,用含0.1%小牛血清的IMDM培养液制成3×108个/L细胞悬液,各组分别吸取200 μL接种于上层小室,将其置于灭菌的24孔板,下室加入含10%小牛血清的IMDM培养液600 μL;培养24 h后,弃去上室原有培养液,分别加入不同浓度胡桃醌,继续培养24 h,将上室面的细胞和matrigel胶用湿棉签擦掉,膜用4%多聚甲醛固定30 min,结晶紫染色20 min,PBS冲洗3次,显微镜下观察并拍照;将小室浸没于500 μL 33%醋酸中脱色20 min,测量洗脱液A570值,代表穿过细胞数量。

1.6 细胞中MMP-2、MMP-9表达检测

采用Western blot 法,取30 μg蛋白进行十二烷基硫酸钠-聚丙烯酰胺凝胶电泳,将凝胶上蛋白移至醋酸纤维素膜,于50 g/L 脱脂奶粉中4 ℃封闭过夜,加兔抗MMP-2和MMP-9抗体(1:1000),小鼠抗β-actin 抗体(1:3000),4 ℃过夜;Tris-HCL-Tween洗膜,分别加辣根过氧化物酶 标记的山羊抗兔抗体(1:3000)室温避光孵育2 h;TBST洗膜后,加底物发光显影。使用Quantity One软件扫描并做灰度分析。

1.7 统计分析

数据采用(x±s)表示,采用SPSS 11.0软件进行统计分析,组间比较采用单因素方差分析,两两比较采用t检验,以 P<0.05 为差异有统计学意义。

2 结 果 2.1 胡桃醌对SKOV3细胞生长抑制作用

结果显示,以对照组SKOV3细胞增殖率为100%,12.5、25、50、100 μmol/L胡桃醌对SKOV3细胞增殖抑制率分别为(16.8±3.4)%、(39.6±9.7)%、(63.3±13.6)% 和(84.5±17.3)%;与对照组比较,各剂量胡桃醌对SKOV3细胞增殖具有明显抑制作用,且呈剂量效应关系。

2.2 胡桃醌对SKOV3细胞黏附、侵袭力影响(表 1)
表 1 胡桃醌对SKOV3细胞黏附、侵袭力影响(x±sn=3)

与对照组比较,胡桃醌浓度≥25 μmol/L时,SKOV3细胞黏附率逐渐降低,差异有统计学意义(P<0.05),呈剂量效应关系;与对照组比较,25、50、100 μmol/L 胡桃醌组穿过matrigel胶的SKOV3细胞数量明显下降,提示胡桃醌浓度≥25 μmol/L时,SKOV3细胞侵袭力逐渐降低。

2.3 胡桃醌对SKOV3细胞MMP-2和MMP-9表达影响(图 1)
注:1:对照组;2~5:胡桃醌12.5、25.0、50.0、100.0 μmol/L组。 图 1 胡桃醌对SKOV3细胞内MMP-2和MMP-9蛋白表达影响

结果显示,对照组、胡桃醌12.5、25.0、50.0、100.0 μmol/L组SKOV3细胞MMP-2和MMP-9表达分别为(0.76±0.04)、(0.65±0.03)、(0.58±0.02)、(0.40±0.02)、(0.24±0.01)与(0.76±0.04)、(0.70±0.03)、(0.59±0.02)、(0.45±0.03)、(0.27±0.02);与对照组比较,胡桃醌25.0、50.0、100.0 μmol/L组SKOV3细胞内MMP-2表达下降、胡桃醌50.0、100.0 μmol/L组SKOV3细胞内MMP-9表达下降,差异有统计学意义(P<0.05)。

3 讨 论

侵袭、转移是恶性肿瘤的重要生物学特性之一,也是肿瘤复发、治疗失败最终患者死亡的主要原因。研究表明,肿瘤的侵袭和转移是多因素和多步骤过程。首先细胞与细胞外基质(extracellular matrix,ECM) 黏附,其次通过诱导宿主细胞分泌蛋白酶水解细胞外基质,最后细胞运动和迁移[6]。纤维粘连蛋白(fibronectine,FN)是基底膜的一种成分,肿瘤细胞从母体脱离后,侵袭基底膜及细胞外基质,通过膜表面受体可粘附于FN上而产生运动与迁移,使肿瘤扩散与转移。除粘附以外,肿瘤细胞在侵袭过程中分泌多种水解酶降解ECM。基质金属蛋白酶(matrix metalloproteinases,MMPs)能降解细胞外基质中各种蛋白成分和胞外蛋白,是侵袭过程中主要的蛋白水解酶。一般认为与肿瘤侵袭、转移关系最密切的是MMP-2和MMP-9[7]。MMP-2和MMP-9活性表达增高,降解基底膜中的Ⅳ型胶原是癌细胞侵袭与转移的关键步骤。

胡桃醌是从核桃楸中提纯的一种天然成分,在体外具有抗肿瘤细胞活性。SKOV3 是能够同时表达MMP-2 和MMP-9 的高转移人卵巢粘液囊腺上皮癌细胞,其MMP-2、MMP-9 表达水平与细胞的恶性程度、侵袭与转移特性、血管内皮生长因子等癌血管生成因子呈正相关[8]。本研究结果表明,不同浓度胡桃醌可使人卵巢癌SKOV3细胞黏附率下降;Transwell实验证实胡桃醌能够抑制SKOV3细胞穿过matrigel胶的能力,表明胡桃醌能够抑制细胞侵袭;随着胡桃醌剂量增加,SKOV3细胞内MMP-2和MMP-9蛋白表达水平逐渐下降。提示胡桃醌可能通过抑制MMP-2和MMP-9蛋白表达,降低SKOV3细胞黏附与侵袭力。

参考文献
[1] 赵行宇,杨森,周丽霞,等.胡桃醌对肝癌HepG2细胞的增殖抑制及诱导凋亡作用[J].吉林大学学报,2013,2(3):255-258.
[2] 孔陵生,邹翔,季宇彬.青龙衣中胡桃醌对A549细胞周期及凋亡影响[J].哈尔滨商业大学学报:自然科学版,2008,6(12):641-644.
[3] 方芳,王立国,张巍,等.胡桃醌对人前列腺癌PC-3细胞抑制作用[J].中国公共卫生,2013,29(10):1458-1460.
[4] Xu HL,Yu XF,Qu SC,et al.Juglone,from Juglans mandshruica Maxim,inhibits growth and induces apoptosis in human leukemia cell HL-60 through a reactive oxygen species-dependent mechanism[J].Food Chem Toxicol,2012,50(3-4):590-596.
[5] 李慧玲,苏亚娟,邬剑,等.MMP-2、VEGF在卵巢癌组织中的表达及其临床意义[J].中国实验诊断学,2009,13(6):726-729.
[6] Liotta LA.Tumor invasion and metastasis role of the extracellular matrix:Rhoads memorial award lecture[J].Cancer Res,1986,46(1):1-7.
[7] 张明明,徐玉清.MMP-2和MMP-9在恶性肿瘤中的研究进展[J].国际肿瘤学杂志,2012,39(11):820-823.
[8] Lengyel E,Schmalfeldt B,Konik E,et al.Expression of latent matrix metalloproteinase 9(MMP-9) predicts survival in advanced ovarian cancer[ J].Gynecol Oncol,2001,82(2):291-298.