煤焦沥青(coal tar pitch,CTP)是炼焦工业产生的副产物,主要通过呼吸道对机体产生毒性反应[1]。流行病学调查和动物实验已经证实CTP具有致癌性[2],其所致肺癌已被列为职业性肿瘤[3]。白介素1β(interleukine-1β,IL-1β)、白介素8(interleukine 8,IL-8)、肿瘤坏死因子-α(tumor necrosis factor,TNF-α)主要来源于单核巨噬细胞,当细胞受到毒素或炎症介质刺激时,可启动多条信号转导通路,导致机体发生炎性反应[4]。煤焦沥青烟提取物(coal tar pitch smoke extracts,CTPE)刺激THP-1细胞分泌炎性因子是否为职业接触CTP导致肺部炎症进而发展为肺癌的早期因素研究较少。本研究采用CTPE作为刺激物,通过观察CTPE对THP-1细胞炎性因子表达的影响,探讨CTPE致炎机制,结果报告如下。 1 材料与方法 1.1 主要试剂与仪器
CTPE(安阳钢铁公司焦化厂),用二甲基亚砜(dimethylsulfoxide,DMSO)溶解[5],1640培养基(美国Hyclone公司),胎牛血清(美国Hyclone公司),TNF-α酶联免疫吸附试验(enzyme-linked immunosorbent assay,ELISA)试剂盒(美国RD Biosciences公司),反转录试剂盒(美国Fermentas公司),Trizol试剂、PCR MastarMix(大连宝生物公司),酶标仪(奥地利TECAN公司),MX3000P Real-time PCR仪(美国Stratagene公司)。 1.2 细胞培养
单核细胞株(THP-1)(美国模式菌种收集中心)。细胞培养条件:用含胎牛血清体积分数为10%的1640培养液进行培养,隔天换液;培养环境:37 ℃ 恒温,CO2 5%,湿度95%。 1.3 分组与染毒处理
调整THP-1细胞浓度至1×105个/mL接种于60 mm培养皿中培养。实验设阴性对照组,DMSO溶剂对照组,CTPE染毒24、48、72 h组,染毒浓度为2 μg/mL。 1.4 指标与方法 1.4.1 细胞因子mRNA检测
采用Real-time PCR法,根据Genbank中的TNF-α、IL-1β、IL-8、β-actin的基因序列,用PP 5.0软件设计特异性引物(上海英骏生物技术有限公司合成)。引物序列:TNF-α上游:5′-CCCCAATCCCTTTATTACCC-3′,下游:5′-CGAAGTGGTGGTCTTGTTGC-3′;IL-1β′上游:5′-TTACAGTGGCAATGAGGATGAC-3′,下游:5′-TGTAGTGGTGGTCGGAGATT-3′;IL-8′上游:5′-TCAGAGACAGCAGAGCACACA-3′,下游:5′-ATCAGGAAGGCTGCCAAGAGA-3′;β-actin上游:5′-AAT-CTTGCGTGACATTAAGGAGAA-3′,下游:5′-CA-GGAAGGAAGGCTGGAAGAGT-3′。染毒结束后收集细胞,参照Trizol试剂盒说明书提取THP-1细胞总RNA,取3 μg总RNA合成cDNA第一链,合成后进行PCR扩增。2×Taq PCR MastarMix 10 μL,cDNA 1 μL,上下游引物各0.5 μL,用灭菌水补至20 μL。反应条件:IL-8预变性 95 ℃ 5 min,94 ℃ 30 s,60 ℃ 1 min,72 ℃ 1 min;TNF-α、IL-1β预变性 95 ℃ 5 min,94 ℃ 30 s,56 ℃ 1 min,72 ℃ 1 min,均重复40个循环,在72 ℃收集荧光信号(SYBR GreenⅠ)。以β-actin作内参照,采用2-ΔΔCt法计算各炎性因子mRNA表达量。 1.4.2 细胞培养液中TNF-α含量检测
采用ELISA试剂盒按照操作说明书检测各组细胞上清中TNF-α的含量。每样本设3个平行孔,在波长 450 nm检测,每次检测均做标准对照,并绘制标准曲线。 1.5 统计分析
采用SPSS 12.0软件进行统计分析,数据以x±s表示,组间比较采用单因素方差分析,组内两两比较采用最小显著差法,检验水准α=0.05。 2 结 果 2.1 CTPE对THP-1细胞IL-1β、TNF-α、IL-8 mRNA表达影响(表 1)
各组间IL-1β、TNF-α、IL-8 mRNA表达水平差异均有统计学意义(P<0.05)。染毒24 h时,IL-1β mRNA表达水平最高,均高于阴性对照组及溶剂对照组,差异有统计学意义(P<0.05),TNF-α和IL-8 mRNA表达量在染毒72 h时最高,均高于阳性对照组、溶剂对照组及染毒24、48 h组,差异有统计学意义(P<0.05)。
![]() | 表 1 CTPE对THP-1细胞炎症因子mRNA表达影响(x±s,n=3) |
结果显示,CTPE处理THP-1细胞 24、48、72 h时,细胞培养上清中TNF-α分泌量分别为(470.56±7.69)、(471.60±21.24)、(538.44±53.88) pg/mL,阴性对照组与溶剂对照组TNF-α分泌量分别为(434.18±10.20)和(440.09±12.63)pg/mL,组间比较差异有统计学意义(F=6.996,P<0.05),其中72 h染毒组细胞培养上清中TNF-α的含量均高于阴性对照组、溶剂对照组及染毒24、48 h组,差异有统计学意义(P<0.05)。 3 讨 论
IL-1β、TNF-α和IL-8 是反映肺部炎症严重程度的重要指标,过度释放将使肺炎向重症发展[6]。研究显示,CTPE成分中多环芳烃类占所有成分的87.91%[7],用CTPE刺激人支气管上皮细胞,导致人支气管上皮细胞在20代时染色体形态发生改变,30代细胞出现恶变,且恶变程度大于和恶变时间早于苯并芘处理组[8],表明CTPE对细胞的毒性高于苯并芘。
在各种致炎细胞因子中,IL-1β和TNF-α是调节炎症的启动因素,抑制TNF-α和IL-1β 与周围靶细胞结合,可以减轻炎症反应。TNF-α是机体感染最关键的促炎症因子之一,可诱导其他致炎因子的合成和释放,参与恶性肿瘤的发生发展,组织中长期高水平的TNF-α可促进肿瘤的生长、侵袭和转移[9]。IL-1β是急性期免疫反应的主要调节因子,在炎症的初期出现,伴随着时间的推移而降低[10, 11],IL-1β 也可能诱发TNF-α表达,在新生儿脑缺血缺氧性脑病研究中,脑脊液和血清中TNF-α的含量随着IL-1β的升高而升高[12]。IL-8是重要的中性粒细胞趋化因子,表达升高提示机体有炎症反应[13]。TNF-α和IL-1β能诱导IL-8启动子上调,增强过敏性炎症反应患者的肺内产生和释放IL-8[14],诱发气道炎性反应。本研究结果显示,CTPE染毒24 h 时,THP-1细胞IL-1β mRNA表达水平最高,72 h时,细胞IL-8、TNF-α mRNA和蛋白表达水平最高。提示CTPE可刺激THP-1细胞TNF-α、IL-1β、IL-8等炎症因子水平上升,从而导致炎症反应。
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