雌激素相关受体α、β、γ( estrogen related receptor α、β、γ,ERRα、β、γ) 是一类具有持续活化转录 活性的孤儿核激素受体[1]。ERRα 被认为主要通过 与过氧化物酶体增殖物受体γ 共激活因子1α、1β ( PGC-1α、PGC-1β) 相互作用,共同调控氧化磷酸化 通路上的基因的转录,从而调控能量代谢的平衡。 除了参与调控能量代谢外,ERRα 还被认为是乳腺 癌、卵巢癌、结肠癌以及前列腺癌等多种癌症的预后 指标[2, 3, 4, 5, 6],因此,ERRα 也成为人们筛选治疗代谢疾 病和癌症药物的热门靶标。多项研究报道显示抑制 ERRα 的活性可以明显地抑制多种癌细胞的增 殖[7, 8]。但迄今为止,并未找到ERRα 的激活剂。 本实验拟通过构建长期稳定表达的hERRα 慢病毒 载体并感染目的细胞,以进一步证实ERRα 的作用。
1 材料与方法 1.1 质粒和细胞系慢病毒三质粒包装系统质粒 pWPXLD、psPAX2 和pMD2.G,包装细胞293T 以 及大肠杆菌stbl 感受态均由中国科学院广州生物医 药与健康研究院惠赠。其中pWPXLD 为转移载体,编码绿色荧光蛋白( geen frorescence potein,GFP) ,两端的酶切位点分别为BamH I 和EcoR I; psPAX2 为包装载体; pMD2.G 为包膜蛋白质粒,三者均含 有巨细胞病毒启动子( ctomegalovirus pc30,romoter,CMV) 。293T 细胞是慢病毒的包装细胞,含有10% 胎牛血清( 10% FBS) 的DMEM 培养液培养。人肺 腺癌A549 细胞系购自美国ATCC 细胞库。
1.2 试剂Dulbecco's modified eagle medium ( DMEM) 培养基( 美国Gibico 公司) ,胎牛血清( 美 国Hyclone 公司) ,pCMX-hERR 质粒为本组保存,SuperScriptTM Ⅲ RT 逆转录试剂盒( 美国Invitrogen 公司) ,各种限制性内切酶,连接酶及Cell-Titer Glo 试剂盒等( 美国Promega 公司) ,hERRα 抗体 ( 美国Cell Signaling 公司) ,β-actin 抗体( 美国Sigma 公司) 、磷酸氢二钠( Na2HPO4 ) 、羟乙基哌嗪乙 硫磺酸( Hepes) 、氯喹和Cacl2 ( 美国Sigma 公司) ,化学发光免疫印迹( electrochemiluminescence western,ECL Western) 蛋白印迹检测试剂盒( 美国GE Healthcare 公司) ,其余常用试剂均为国产分析纯。
1.3 引物设计合成及目的片段扩增NCBI 基因 数据库检索hERRα 基因( NM. 198253) ,用primerpremier 5.0 软件设计引物,F: 5'-CGGGATCCATGTCCAGCCAGGTG-3'; R: 5'-CGGAATTCTCAGTCCATCATGGCC-3'。分别引入了限制性内切酶 BamH I 和EcoR I 的酶切位点,由上海生物工程技 术服务有限公司合成。以本组保存的pCMXhERRα 质粒为模板扩增目的片段。
1.4 重组转移载体pWPXLD-hERRα 的构建BamH I 和EcoR I 限制性内切酶分别对转移质粒 pWPXLD 和纯化回收的PCR 产物进行酶切。胶回 收试剂盒回收纯化酶切后的目的片段( 按说明书进 行操作) ,T4 连接酶连接转移质粒和目的基因。
1.5 重组转移载体pWPXLD-hERRα 的筛选、鉴定 及扩增取10 μL 连接产物转化感受态stbl,氨苄 青霉素筛选阳性菌落,Qiagen endotoxiee. free Maxi 试剂盒快速大量提取质粒( 参照说明书操作) ,采用 紫外分光光度仪检测质粒的纯度及浓度并进行测 序,测序引物为F: 5'-TCAAGCCTCAGACAGTGGTTC-3'; R: 5'-CATAGCGTAAAAGGAGCAACAT-3'。测序工作由上海生物工程技术服务有限公司完 成。
1.6 慢病毒包装在转染前24 h,取长满的293T 细胞进行消化计数,以7.5 × 106 cells /145 mm 培养 皿的细胞密度进行预板,使转染时的细胞的汇合度 在70% 为宜。在转染前2 h 细胞换液,加入 22.5 mL 37 ℃预热的培养基,重新放回37 ℃的5% 培养箱内培养。在15 mL 离心管中加入22.5 μg pWPXLD 或者pWPXLD-hERRα,14.6 μg pSPAX2,11.25 μg pMD2.G,再加灭菌水至1 012.5 μL,然后 再加入112.5 μL 2.5 mol /L 的CaCl2 ,枪头吹打混 匀,然后再加入1.125 mL 2 × HEPES[羟乙基哌嗪 乙硫磺酸2-[4-( 2-hydroxyethyl )-1-piperazinyl ethanesulfonic acid,HEPES)],反复吹打混匀,室温 放置15 min。逐滴将混合液( 2.25 mL) 加入293T 细胞中,再加入氯喹使其在培养基中的终浓度为 25 μmol /L,轻轻混匀培养基,放入37 ℃的5%培养 箱内培养14 ~ 16 h 后换液。吸去培养基,加入 15 mL /145 mm 培养皿( 6 mL /100 mm 培养皿) 新 鲜预热的病毒收集培养基,放回37 ℃的5%培养箱 内再培养至转染后48 h,每12 h 收集上清1 次,共3 次,2 000 r /min 离心5 min 去除细胞碎片。最后进 行浓缩: 用Beckman SW32 转子,70 000 × g 4 ℃离 心2 h,吸去上清,管底白色沉淀即为病毒粒子。每 管加入200 μL 磷酸盐缓冲溶液( phosphate buffered
saline,PBS) ,轻悬沉淀,放于4 ℃使沉淀自然溶解。 1.7 检测Lenti-hERRα 滴度用PBS 稀释病毒,进行10 倍梯度稀释,从10-1 至10-6,终体积 100 μL。在24 孔板内进行293T 细胞的预板,每孔 5 × 104 ~ 1 × 105 个细胞,总体积500 μL,在细胞未 贴壁时每孔加入40μL 病毒液,轻柔且完全混匀细 胞,放回37 ℃ 的5% 培养箱内培养。细胞在感染 48 h后,用PBS 轻轻地洗两遍去除剩余的病毒粒 子,然后用500 μL LPBS 重悬细胞,用枪头反复吹 打混匀( 无需胰酶消化) ,用流式细胞仪检测带增强 型绿色荧光( enhanced green flrorescence protein,EGFP) 的细胞数。病毒滴度的计算公式为:

取对数生 长期的A549 细胞,以每孔4 × 105 个细胞的密度接 种于6 孔板。在细胞未贴壁时每孔根据病毒颗粒数 与细胞数比例为1∶ 3 加入Lenti-hERRα 或者空载体 对照病毒,轻柔且完全混匀细胞,放回37 ℃的5% 二氧化碳培养箱内培养。
1.9 检测感染Lenti-hERRα 病毒的A549 细胞中 hERRα 的表达情况A549 细胞感染病毒48 h 后,以每孔120 μL RIPA( radio immunoprecipitation assay) 裂解蛋白( 按照说明书操作) 。用BCA( Bicinchoninic acid) 法试剂盒测定所得蛋白样品的浓度,然后稀释样品至所有样品浓度相同。变性聚丙烯酰 胺凝胶电泳( denaturing sodium dodecyl sulfate polyacrylamide gel electrophoresis,SDS-PAGE) 胶电泳待 溴酚蓝迁移到玻璃板底线,从电泳装置上卸下玻璃 板,准备转膜。转膜条件为100 V,60 min。接着分 别孵育一抗和二抗各1 h,最后显色。
1.10 检测感染Lenti-hERRα 病毒的A549 细胞增 殖活力改变取对数生长期的A549 细胞,以每孔 4 000个细胞的密度接种于96 孔板。在细胞未贴壁 时每孔加入M.O.I = 3 的Lenti-hERRα 或者空载体 对照病毒,轻柔且完全混匀细胞,放回37 ℃的5% 培养箱内培养,48 h 后检测cell-titer glo ( 按照说明 书操作) 。
2 结果 2.1 基因产物鉴定结果( 图 1)![]() | 注: A: DL2000; B: PCR 扩增片段; C: DL2000; D: BamH I 和EcoR I 限制性内切酶双酶切pWPXLD-hERRα 重组质粒3 h 后电泳条带。图 1 PCR 扩增hERRα 和酶切pWPXLD-hERRα |
PCR 扩增获得的DNA 片段经1%琼脂糖凝胶电泳可见约1.5 kp 大小 明亮清晰的条带; 转移质粒pWPXLD 大小约10 kd,两者酶切后片段长度见图 1。Qiagen endotoxiec. free Maxi 试剂盒提取重组质粒DNA,测得OD 值260 / 280 = 1.78; BamH I 和EcoR I 双酶切后得到2 条明 亮清晰的条带,其中小者长约1.5 kp,与预期 hERRα 片段大小一致; 以测序引物对pWPXLDhERRα 重组质粒进行测序,测序结果与NCBI-Gene 数据库检索到的hERRα 基因( NM_004451.3) 序列 完全一致,表明重组质粒构建成功。
2.2 慢病毒滴度测定在293T 细胞感染10 倍梯 度稀释的lenti-GFP 病毒48 h 后,用流式细胞术检 测其中带GFP 的细胞百分数。结果显示随着病毒 浓度的增加,被感染细胞的百分比明显增加。病毒 稀释为10-1 A549 细胞感染率为92.66%,10-2为65.69%,10-3 为13.95%,10-4 为1.12%,10-5为0.01%,10-6为0,对照组未感染病毒细胞感染率均 为0。按公式计算出病毒滴度为1.8 × 108 TU/mL。
2.3 ERRα 在感染lenti-hERRα 病毒A549 细胞中 表达( 图 2 )![]() | 注: 感染lenti-vector ( 左) 和lenti-hERRα ( 右) 48 h 后细胞内 hERRα 的蛋白。图 2 ERRα 在感染lenti-hERRα 病毒A549 中表达 |
使用慢病毒lenti-vector 和lentihERRα 感染A549 细胞。48 h 后,提取细胞的总蛋白,根据材料和方法所示,western blot 检测ERRα 的 表达。结果显示含有ERRα 的慢病毒,可以明显地 提高细胞ERRα 的表达。
2.4 ERRα 对A549 细胞增殖影响使用慢病毒 lenti vector 和lenti-hERRα 感染A549 细胞48 h,根 据promega 公司cell-titer glo 说明书,检测ERRα 对 细胞增殖的影响,结果ERRα 可以明显增加A549 细胞增殖。
3 讨论ERRα 是核激素受体家族的一员,因其结构与 雌激素受体( estrogen receptors,ERs) 具有很高的同 源性而得名,由Giguere 在1998 年针对ERαDNA 结 合域( DNA binding domain,DBD) 的保守序列,采用 低严谨度杂交方法筛选得到。ERRα 被认为是多种 癌症如乳腺癌、前列腺癌、卵巢癌、结肠癌的诊断靶 标[2, 3, 4, 5, 6]。
慢病毒载体是一类来源于人类免疫缺陷病毒Ⅰ 型( human immunodeficiency virus type Ⅰ,HIV-Ⅰ病 毒的改良载体。为增加操作的安全性,人们常将携 带目的基因的载体、糖蛋白抗原/聚合酶( gag /pol) 及包膜蛋白( env) 构建在不同的质粒中。这些质粒 单独存在时既不能形成病毒颗粒,也不具备转导能 力,包装后能产生携带目的基因的重组慢病毒( 是 一类缺陷病毒) ,离开包装细胞后病毒颗粒仅能转 导细胞,但不能自我复制,其致病性大为降低[9, 10, 11]。 一般说来,慢病毒载体既能感染分裂活跃期细胞,又 能高效率感染分裂缓慢或非分裂期的细胞; 能够携 带较大及多个外源性基因,转染后对转录沉默作用 有较强的抵抗力,能长期稳定表达目的基因。
本研究成功构建并包装了表达hERα 基因的重 组慢病毒载体,并发现过表达hERRα 促进了A549 细胞增殖,这与ERRA 抑制剂能抑制细胞增殖的发 现是一致的[7]。此为进一步研究hERRA 基因的功 能及其在肿瘤发展中的作用奠定了基础。
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2012, Vol. 28


