中国公共卫生  2011, Vol. 27 Issue (5): 595-597   PDF    
大鼠表皮干细胞体外分离培养结果观察
王效杰1, 田伟1, 王云锋2    
1. 沈阳医学院基础医学院解剖学教研室, 辽宁沈阳110034;
2. 沈阳医学院何氏视觉科学学院解剖学教研室
摘要: 目的 研究表皮干细胞体外分离培养,为组织工程皮肤的体外构建提供实验依据。方法 利用冷热交替消化法对W istar大鼠幼鼠表皮细胞进行培养,然后观察细胞在体外的生长和分化,并且分离表皮干细胞,通过β1整合素、K15以及p63细胞免疫荧光组化染色及扫描电镜对其进行观察及鉴定。结果 细胞培养过程中,先后出现梭状细胞、角状细胞和呈集落生长的小圆细胞,集落中心出现竹节状的毛发;β1整合素、K15以及p63均呈阳性表达,表皮干细胞克隆形成率为(15.3±2.3)%,对照组细胞为(6.6±1.1)%,差异有统计学意义(P<0.01);超微结构观察符合表皮干细胞生物学特性,细胞培养体系稳定,利于表皮干细胞生长和分化;在培养体系中出现皮肤附属器。结论 体外分离培养的表皮干细胞生物学特点明显,容易发生分化,并产生皮肤附属器。
关键词: 表皮干细胞     实验研究     分离培养    
Isolation and culture of epidermal stem cells from immature Wistar rat in vitro
WANG Xiao-jie, TIAN Wei, WANG Yun-feng    
Department of Human Anatomy, Shenyang Medical College, Shenyang 110034, China
Abstract: Objective To study epidermal stem cell isolation and culture in vitro in order to provide experimental basis for tissue engineering of skin.Methods With heat-cool alternative method and trypsin digestion of tissuemass,the epidermal stem cells were cultured and observed continuously in vitro.The isolated cells were investigated on molecule β1 integrin,K 15 and p63 by mimunohisto chemistry staining and scanning micro scope.Results The positive expressions of molecule β1 in tegrin,K 15,and p63 and the spindle-and angular like cells in cluster growth were observed with scanning micro scope.The culture system was stable for the growth and classification of the stem cells and there existed affiliated organ of the skin in the culture system.Conclusion with the culture system developed,the epidermal stem cells isolated presents obvious biologic features and differentia tive trend with the formation of affiliated skin organ.
Key words: epidermal stem cell     expermiental study     isolation and culture    

近年来,随着慢性皮肤溃疡及皮肤病患者增多,以及烧伤 及意外创伤所造成的皮肤缺损,临床上对皮肤移植的需求越 来越大,因此,表皮干细胞( ep iderm a l stem cel,l ESC ) 分离培 养的研究逐渐成为国内外学者关注的焦点[1]。为了更深入 研究表皮干细胞培养特性,为建立体外表皮干细胞培养体系, 采用组织工程技术构建皮肤组织提供初步基础,本研究利用 W istar大鼠幼鼠表皮组织块,采用酶消化法和组织块联合培 养的方法,观察了表皮干细胞的体外分离培养及其增殖分化 过程。现将结果报告如下。

1 资料与方法 1.1 材料

( 1)实验动物: 生后1 d的W istar大鼠幼鼠,雌雄 不限( 中国医科大学动物部提供)。( 2)试剂与仪器: 杜尔伯 科改良伊格尔培养基( Dulbecco m od ified eag le m edium, DMEM )、小牛血清( feta l bov ine serum,FBS)、β1 整合素多抗( 华美公司); 胰蛋白酶( 1:250,美国Sigm a 公司); 兔抗鼠β1 整合素单克隆抗体(工作浓度1:300)、羊抗鼠角蛋白15以及 抗癌基因p63单克隆抗体( 工作浓度1:300) (美国Neuom ark e r公司); 异硫氰荧光素FITC /CY3免疫荧光二抗( 武汉博士 得生物制品公司)。

1.2 方法 1.2.1 体外表皮细胞培养观察

无菌条件下,取生后1 d的 W istar大鼠幼鼠,放入75%酒精中浸泡3~ 5 m in,取出用无菌 磷酸盐缓冲液冲洗,放入培养皿中,用眼科手术剪沿幼鼠背部 取下2 cm -3 cm 大小的皮片,放入培养皿中,翻转皮片,用无 菌手术刀轻轻刮除皮下组织直至发白,然后用手术剪将皮片 剪成0. 5 cm-0.5 cm 大小,放入盛有0.5%胰酶的锥形瓶中, 37℃水浴消化,20 m in /次,连续3次后,进入4℃冰箱中过 夜,次日取出后,用眼科镊子将各个皮片移入100 mL培养瓶 中,平铺于瓶底,翻转,使瓶底向上,加入DMEM 培养液,放入 培养箱中,4 h后,轻轻翻转培养瓶,37℃,5% CO2 培养,每2 d 换液,每日用相差显微镜观察皮片周围变化。

1.2 .2 表皮干细胞分离培养及鉴定

( 1)分离培养: 待培养 的表皮细胞铺满培养瓶底后,加入0.25%胰酶,37℃振荡消 化10~ 15 m in,10% FBS 终止消化,1 000 r /m in 离心,弃上 清,加入DMEM 培养基,移至1% 多聚赖氨酸包被培养瓶, 37℃静置10~ 15 m in,部分细胞已贴壁后,更换培养基,置 37℃、5% CO2 细胞培养箱内培养,隔日换液。( 2)鉴定: 选择 0.2 mg /mL多聚赖氨酸粘附15 m in的细胞,分别用以FITC / CY3标记的β1 整合素、K15以及p63 免疫细胞化学荧光染 色,采用激光共聚焦显微镜观察结果。

1.2.3 细胞克隆形成率测定

取第二代表皮干细胞,以生后 1 d的W istar大鼠幼鼠骨髓间充质干细胞( bone mesenchym a l stem ce lls,BMSC s) 作为对照,制备单细胞悬液,按200 个细 胞/孔接种于6孔板中,培养2周后,进行细胞克隆记数并计 算克隆形成率。克隆形成率(% ) = ( 细胞克隆数/接种细胞 数)×100%。

1.2.4 超微结构观察

取连续培养30 d的表皮干细胞液, 离心后,置预冷的0. 25%戊二醛溶液内浸泡12 h,取出后放 入0. 1mol/L磷酸缓冲液( pH7.2) 中过夜,系列梯度酒精脱 水,醋酸异戊酯置换,二氧化碳临界点干燥,真空喷金,JSM - T300扫描电镜观察并摄片。

1.3 统计分析

应用SPSS 11. 5软件进行统计分析; 采用x2 检验,P< 0. 05为差异有统计学意义。

2 结 果 2.1 细胞培养及其形态

皮片接种24 h时,组织块边缘出 现长梭型细胞,呈栅栏状排列,成放射状生长; 2~ 3 d后,从组 织块边缘又生长出一种多角型、体积较小的细胞,处于第一种 细胞之上,并随培养时间延长,逐渐覆盖下层细胞; 同时第二 层细胞上方又生长出第三种圆形、呈集中生长的细胞,细胞大 小不一,透光性差,细胞集落生长较慢。皮片接种15 d后,在 最表层的细胞集落的边缘、中间等处出现树枝状不透光毛发 状物体(图 1) 。自然光倒置显微镜下,明显可见毛发具有竹 节样结构(图 2) ; 同时随培养时间延长,第1层梭状细胞、第2层角状细胞已经不能分辨,只有第3 层细胞可见以小圆细胞 为多,并呈集落生长,形态、大小不一(图 2)。

图 1 皮肤组织块培养表皮干细胞第15d(10×4)

图 2 皮肤组织块培养表皮干细胞第30 d( 10 × 20)
2.2 表皮干细胞鉴定及细胞克隆(图 3,表 1)

结果显示,在 所分离的细胞表面,β1 整合素、K15以及p63 免疫荧光细胞 化学标记均呈阳性表达,这是表皮干细胞作为成体干细胞的 生物学特性,cy3 标记β1 整合素、K15 的表皮干细胞在 543 nm 波长下激发红光,K15阳性部位在细胞浆( 图 3),p63 阳性部位在细胞核(图 3) ; 在488nm 波长激光下,FITC 标记 的β1 整合素的发绿色荧光,阳性部位在细胞膜上(图 3)。同 时具有3种标志的现象,可以证明表皮干细胞的存在。表 1 可见,表皮干细胞的克隆形成率明显高于BMSCS,差异有统 计学意义( x2 = 10.36,P< 0.05)。

图 3 培养第25 天表皮干细胞内β1 整合素、K15以及p63表达

表 1 表皮干细胞与BMSCS的克隆形成率比较
2.3 超微结构观察(图 4)

扫描电镜结果显示,所培养的细 胞体积小,圆形,呈集落生长,集落的中心出现竹节状的毛发, 毛发的形态不一,部分毛鳞片很发达,部分尚未被鳞片覆盖, 部分如触须一样矗立,部分从细胞周围穿过,部分已经被细胞 所包埋。在有毛发生长的地方,随着培养时间的延长,干细胞 的形态逐渐发生变化,一般由小圆形变成不规则形,部分与毛 发混交在一起。

图 4 培养表皮干细胞第30 d扫描电镜观察( × 1500)
3 讨 论

本研究结果显示,采用冷热交替消化法对W ista r大幼鼠 表皮细胞进行培养,所建立的培养体系成功培养出具有表皮 干细胞特点的细胞。国外研究表明,表皮干细胞、间充质细胞 及真皮乳头层细胞的相互作用对毛囊等皮肤附件的形成至关 重要[2, 3]。本研究所培养的表皮干细胞,生长比较缓慢,细胞 呈集落样生长,成团存在,而且在集落区域出现毛发样结构, 表明所培养的表皮干细胞能够分化出皮肤的结构[4, 5],与国 外研究结果相符。

原代表皮干细胞的获取有组织块培养法及消化法2 种[6],前者简单易行,成功率高,但由于组织块的原代细胞培 养时间较长,且并非每一组织块都有细胞萌出,细胞传代次数 和最终获取的细胞数较少,消化法对于细胞无疑有伤害,因 此,本实验采用多次、少量冷热交替酶消化法的培养体系,更 利于细胞的保护。

文献报道,多数学者采用3T3 细胞作为表皮细胞培养的 滋养层,以克服经酶消化获取的表皮细胞贴壁生长困难及抑 制成纤维细胞生长,从而得到广泛应用。但3T3细胞来源少, 价格昂贵[7, 8]。本实验直接应用组织块浸没在培养基中,不 进行混杂细胞分离,而是混合培养体系培养,不仅培养出了生 物学特性明显的表皮干细胞,并且同时促进表皮干细胞的生 长和分化,毛发的出现就是最有力的证据。结果表明,直接应用组织块法,不仅使表皮干细胞的生长成为可能,又能自然地 出现皮肤附属器,且取材配制方便,价格低廉。而且在培养的 同时,混杂细胞分泌的各种细胞因子同样促进了表皮干细胞 的分化,为以后发现更优秀的培养体系打下了基础,为今后研 究皮肤的其他附属器体外的产生和进一步成熟起到了指导作 用[9, 10]

目前学术界认可并应用广泛的表皮干细胞培养成功的依 据是其在形态学上表现为非成熟细胞特征、较强的自我更新 能力( 体外培养呈克隆状生长)及对β1 整合素、K15以及p63 较特异表达[11]。本实验从表皮细胞中所分离、培养的表皮干 细胞样细胞均符合以上特征。总之,本研究利用组织块法获 得的表皮干细胞数量多,而且较容易发生分化,可初步实现毛 发体外的分离培养,使体外构建组织工程皮肤变为可行。

参考文献
[1] Charruyer A,Ghadial.y R.Whats new in dermatology:epidermal stem cells[J].GItal Dermatol Venereol, 2011,146(1):57-67.
[2] Hilgendorf I,Freund M,Wolff D.Toxicepidermal necrolysis after al.ogeneic haematopoietics tem cell tran splantation[J].Bone Marrow Tran splan,t2007,15(5):758-760.
[3] Motlik J,Klima J,Dvorankova B,et al. Porcine epidemral stem cells as abiomedical model for wound healing and normal/malignantepi thelial cell propagation[J].Theriogenology,2007,67(1):105-111
[4] Torroglosa A,Estrada C.Nitric oxide decreases subven tricular zone stem cell proliferation by inhibition of epidermal growth factor receptor and phosphoinositide-3-kinase/A ktpathway[J].Stem Cells,2007,25(1):88-97.
[5] Hu YF,Zhang ZJ,Sieber-Blum M.Anepidermal neural crest stemcell(EPI-NCSC)molecular signature[J].Stem Cells,2006,24(12):2692-2702.
[6] Jensen K B,Watt FM.Single cell expression profiling of human epidermal stem and trans it amplifying cells:Lrig1 is aregulator of stem cell quiescence[J].Proc Nal. Acad Sci USA,2006,103(32):11958-11963.
[7] Troy TC,Turksen K.Derivation of epidermal colony forming progenitors from embryonic stem cell cultures[J].Methods Mol Biol,2006,330(6):93-104.
[8] Sieber Blum M,Schwab M E.Characterization of epidermal neural crest stem cell(EPIN-CSC)grafts in the lesioned spinalcord[J]. Mol Cell Neurosci, 2006,32(1-2):67-81.
[9] Sievertzon M,Lundeberg J.Epidermal growth factor(EGF)with drawal masks gene expression differences in the study of pituitary adenylate cyclase activating polypeptide(PACAP)activation of prmiary neural stem cell proliferation[J].BMC Neurosci, 2005,28(6):55-60.
[10] Benitah SA,Frye M,Glogauer M,et al. Stem cell depletion through epidemral deletion of Rac1[J].Science,2005,309(5736):933-935.
[11] Ghadialy. R.In search of the elusive epidermal stem cell[J].Ernst Schering Res Found Workshop,2005,54(7):45-62.