中国公共卫生  2011, Vol. 27 Issue (5): 535-536   PDF    
对虾白斑综合症病毒IE1基因表达与鉴定
高溳1, 金春英2, 王蔚1     
1. 国家海洋局第三海洋研究所海洋生物遗传资源重点实验室, 福建厦门361005;
2. 华侨大学化工学院
摘要: 目的 探讨对虾白斑综合症病毒极早期基因IE1原核表达载体的构建与表达。方法 将IE1编码序列克隆入pGEX-4T-2原核表达载体,并转染大肠埃希菌BL21,异丙基-β-D硫代半乳糖苷(IPTG)诱导谷胱甘肽硫转移酶(GST-IE1)融合蛋白表达,亲和层析法纯化,并用聚丙烯酰胺变性凝胶电泳(SDS-PAGE)和蛋白印迹(western b lot)对融合蛋白进行鉴定。结果 克隆到IE1基因序列长675 bp,编码224个氨基酸,理论分子量为25 kDa,等电点为4.87,所构建的重组体经PCR、双酶切及测序鉴定与目标基因相符,SDS-PAGE结果表明,目的基因在大肠埃希氏菌BL21中表达成功。结论 克隆构建了对虾白斑综合症病毒极早期基因IE1,并在原核细胞中获得表达。
关键词: 白斑综合症病毒     IE1基因     极早期蛋白    
Prokaryotic cloning, expression and identification of IE1 gene from white spot syndrome virus
GAO Yun, JIN Chun-ying, WANG Wei     
Key Laboratory of Marine Genetic Resources, Third Institute of Oceanography, China Oceanic Administration, Xiamen 361005, China
Abstract: Objective To express the white spot syndromevirus(WSSV)mimediate early prote in(IE1)in prokaryotic expression system,and to purify and identify the prote in expressed.Methods The encoding fragment of IE1 was inserted into plasmid pGEX-4T-2 and the recom binant plasmid pGEX-4T-2-IE1 was transformed into E.coli BL21 and induced by isopropy lD thiog alacto side(IPTG).The expressed glutathione Stran sferase(GST)IE1 was purified by affinity chromatog raphy column and identified by sodium dodecyl sulfate poly acrylamide gelelectropho resis(SDS-PAGE)and western blot.Results Anovel cDNA sequence encoding IE1 with amolecular mass of 25015.2,pI 4.87,which was 675bp and encoding 224 aminaacids,was obtained.The recom binant plasmid pGEX-4T-2-IE1 was constructed and expressed in fusion protein.Conclusion Recom binant GST-IE1 prote in was obtained and could be used in the functional study of IE1.
Key words: white spot syndrom evirus     IEI gene     mimediate early prote in    


白斑综合症病毒( white spot syndrom icvirus,WSSV ) 是 对虾养殖中危害最严重的病原。该病毒传染力强、致死率高、 流行范围广,给全球对虾养殖业造成了巨大损失。自W SSV 首次爆发以来,至今仍未能有效控制该病毒病的发生与发 展[1]。W SSV 的极早期基因IE1是在病毒感染的极早期,在 无病毒DNA 复制,无新病毒蛋白合成的情况下,被宿主细胞 中的“ 转录机器”启动,并利用宿主细胞RNA 聚合酶II 进行 转录的基因,其表达蛋白在病毒复制过程中对病毒自身和宿 主细胞起着非常重要的调节作用[2]。本研究在已知W SSV 极早期基因IE1全长序列基础上,对该基因进行原核表达、纯 化和鉴定,以期获得有生物学活性的重组蛋白,为进一步功能 研究奠定基础。

1 材料与方法 1.1 生物材料

日本对虾( 厦门第八市场),平均体重20~ 25 g,20尾/箱养于30 L塑料水族箱内,用拷贝数为3 × 106 病 毒滤液在对虾的第4 尾节的侧腹部注射感染。质粒pGEX- 4T-2和大肠埃希菌BL21( DE3) (海洋三所生物重点实验室) 。 引物设计: IE1F: CGGAATTCATGGCCTTTAATTTTGAAGACTC ( 下划线为E coR I 酶切位点),IE1R: AAGTCGACCCTTATA- CAAAGAATCCAGAAATCTC (下划线为Sal I 酶切位点) ( 上 海Inv itrogen公司)。

1.2 主要试剂与仪器

Taq酶、dNTP、限制性内切酶E coR I、 Sal I、T4 DNA 连接酶及M a rker DL2000( 大连T aRaKa公司); 质粒提取、凝胶回收试剂盒(美国Om ega 公司)、十二烷基硫 酸钠( SDS)、丙烯酰胺、N,N-亚甲基双丙烯酰胺、二硫苏糖醇 ( DTT)、异丙基-D 硫代半乳糖苷( IPTG ) (上海生工生物工 程公司); 聚醚二砜膜( PVDF) (美国M illipo re 公司); 谷胱甘 肽Sepha rose 4B 亲和层析柱胶及空柱(美国通用医疗技术公 司); 小鼠抗谷胱甘肽硫转移酶( GST) 单克隆抗体、3,3'- 二 氨基联苯胺( DAB)、羊抗小鼠辣根过氧化物酶(HRP) 标记二 抗(北京天根生化科技有限公司)。基因扩增仪(德国Eppen- do rf公司); 紫外分光光度仪( 上海尤尼柯仪器有限公司); 电 泳仪和电泳槽(美国B IO-RAD公司)。 1.3 方法 1.3.1 IE1基因扩增

取10 mg 对虾心脏组织,制备PCR 模 板,方法按文献[3]。以引物IE1F和IE1R扩增WSSV 病毒 IE1序列。循环条件为: 94 ℃ 预变性3 m in,94 ℃ 变性30 s, 53 ℃ 退火30 s,72 ℃ 延伸40 s,35个循环,72 ℃ 延伸7 m in。琼 脂糖凝胶电泳检测并利用紫外分光光度计检测其纯度和含量。

1.3.2 IE1融合载体构建

E coR I及Sal I对PCR产物和载 体pGEX-4T-2分别进行双酶切,经1%琼脂糖凝胶电泳分离 回收,将DNA 片断用T4 DNA连接酶在16 ℃ 连接过夜,连接 反应液转化感受态E. coliBL21。通过氨苄青霉素平板抗性筛 选,克隆进行质粒提纯,双酶切电泳及DNA 测序鉴定得到正 确的pGEX-4T-2-IE1融合表达载体。

1.3.3 pGEX-4T-2-IE1融合载体诱导表达

取50 μL培养过 夜的阳性克隆菌液,加入含有氨苄的5 mL琼脂糖培养基中, 37 ℃ ,220 r /m in,震荡培养3 h,当菌浓度A550值为0. 5~ 1. 0 之间时,加入IPTG 至终浓度1 mmo l/L 诱导表达5 h,离心收 集菌体,进行12%聚丙烯酰胺凝胶电泳( SDS-PAGE ) 分析。 参照Sepharo se 4B说明书进行蛋白纯化。

1.3.4 蛋白印迹( w estern b lo t) 检测重组蛋白

将聚丙烯酰 胺凝胶上的蛋白转印至PVDF膜上,5%脱脂牛奶液4 ℃ 孵育 12 h,抗鼠GST抗体为一抗(稀释比1:1 000) 室温孵育1 h,辣 根过氧化物酶标记的羊抗鼠IgG(稀释比1:500)室温孵育1 h, 二氨基联苯胺( DAB) 显色至出现目的条带,超纯水终止反应。

2 结 果 2.1 目的片段PCR扩增( 图 1)

以感染WSSV 病毒的对虾 基因组DNA 为模板,扩增IE1基因片段预计长度约为718 bp,扩增产物经1%琼脂糖凝胶电泳鉴定,在约700 bp区域可 见1条特异性条带,证明PCR成功。

注: 1: M ark er DL2000; 2: PCR 扩增产物; 3: 阴性对照。 图 1 PCR 扩增IE1基因
2.2 融合载体构建与序列测定(图 2)

将PCR扩增产物插 入到质粒pGEX-4T-2 构建pGEX-4T-2-IE1 重组质粒. 构建的 重组质粒双酶切后在1% 琼脂糖凝胶电泳结果显示,在 700 bp 有一清晰条带,与目的基因的大小基本相符,表明重 组质粒构建成功。

注: 1: M ark er DL2 000; 2: E coR I/Sa l I双酶切pGEX-4T-2-IE1质粒。 图 2 重组质粒双酶切鉴定
2.3 GST IE1 基因在E. coli BL 21 中表达( 图 3)

用12% SDS-PAGE电泳检测表达产物,发现pGEX-4T-2-IE1 /BL21 诱 导后增加1条大小约51 kDa的新生蛋白条带,与预计表达蛋 白大小相符合。为获得最优蛋白表达条件,采用17 ℃ ,27 ℃ 和37 ℃ 的温度梯度对融合蛋白进行诱导,纯化后电泳分析, 发现17 ℃ 条件下融合蛋白浓度和纯度均较为理想。

注: 1: 蛋白m arker; 2~ 4: pGEX-4T-2-IE1未诱导、诱导后、可溶性上清; 5: 纯化GST-IE 1蛋白; 6 ~ 8: pGEX-4T-2未诱导、诱导后、 可溶性上清; 9: 纯化GST 蛋白。 图 3 pGEX-4T-2-IE1蛋白诱导表达
2.4 W estern blot鉴定

GST特异性单克隆抗体可识别出特 异性条带,GST为26 kDa,GST-IE1融合基因表达产物的片段 为51 kDa,带有GST抗原识别性,其分子量与GST蛋白相比, 大约相差约25 kDa。

3 讨 论

研究人员用放线菌酮抑制了W SSV感染对虾体内新生蛋 白质合成,然后利用WSSV 病毒开放阅读框微阵列筛选出60 个候选极早期基因,进而通过反转录确认了其中3个极早期 基因IE1、IE2和IE3。用绿色荧光蛋白为报告基因进行启动 子活性分析显示,IE1 启动子为强启动子[3]。该启动子中包 含了1个转录激活因子( STAT) 结合位点,凝胶阻滞电泳分析 证实,STAT能与IE1的启动子结合。而且,W SSV 感染草虾 细胞内STAT 活性高于未感染W SSV 的草虾。此外,其他研 究也证实该启动子有较强的转录活性[4, 5, 6]。 从分子水平开展WSSV 极早期蛋白的功能研究,有助于 了解病毒发生与发展过程,为对虾病害防治方法的建立提供 借鉴。以往对W SSV极早期蛋白的研究都集中在筛选鉴定和 启动子活性上。本实验中,采用高效GST 融合表达载体 pGEX-4T-2,该载体表达产品可通过亲和层析法纯化,操作简 单,用凝血酶即可进行酶切除去GST,进而获得所需要的蛋白 产品[7, 8]。在蛋白大量表达前优化蛋白表达条件,发现在17 ℃ 温度下诱导获得的蛋白产量和纯度较高。通过western b lo t 证实获得了分子量约为51 kDa 的融合蛋白。为进一步研究 该蛋白在W SSV侵染过程中的作用提供了依据。

参考文献
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