中国公共卫生  2009, Vol. 25 Issue (12): 1485-1486   PDF    
沙门菌invA基因荧光定量PCR检测
胡玉山, 胡肖娟, 刘俊华, 庞杏林, 邓志爱, 陈守义     
广东省 广州市疾病预防控制中心, 510080
关键词沙门菌     探针     荧光定量PCR    

沙门菌是引起食源性感染的常见致病菌1,常规检测方法有分离培养、生化鉴定、血清学试验等。由于沙门菌有2 000多种血清型,因而监测工作多繁琐、费时、费力。实时荧光定量PCR检测技术是近年来的新方法,已经愈来愈多地用于病原体诊断2。研究表明,沙门菌侵袭基因invA高度保守,几乎存在于沙门菌所有血清型中,其编码吸附和侵袭上皮细胞表面蛋白,决定沙门菌对肠粘膜细胞的侵袭力,与其致病性显著相关3。根据这一特点,为探讨快速、敏感、稳定的沙门菌检测方法,本研究应用沙门菌侵袭基因invA设计引物和探针序列,建立沙门菌荧光定量检测方法并研制沙门菌检测试剂盒。

1 材料与方法 1.1 材料 1.1.1 菌株

(1)沙门菌标准菌株:包括伤寒沙门菌、鼠伤寒沙门菌、猪霍乱沙门菌、肠炎沙门菌等;(2)分离株:从食品样品、患者粪便分离的沙门菌分离株及非沙门菌株,共50株;(3)非沙门菌标准株:包括大肠埃希菌、枸橼酸杆菌、金黄色葡萄球菌,福氏志贺菌、奇异变形杆菌、溶血性链球菌、白色念珠菌等(均为广州市疾病预防控制中心保存菌株)。

1.1.2 仪器试剂

ABI Fast7500荧光定量PCR仪(美国ABI公司);Real Time PCR TaqMan酶(大连宝生生物工程有限公司)。

1.2 方法 1.2.1 菌株培养及DNA模板提取

将菌株接种于普通肉汤液体培养基培养18~24 h进行复苏,然后转种至选择性SS培养基培养18~24 h。在平板上挑取2~3个单个菌落,与100 μL灭菌纯水研磨混匀,95 ℃加热10 min,12 000 r/min离心5 min,取上清液作为DNA模板。

1.2.2 引物及探针设计与合成

根据沙门菌侵袭基因invA序列(基因登录号GenBank No.EU348369),运用分子生物学软件ABI Primer express 3.0设计引物和探针,探针的荧光标记选择荧光物质(F AM)作为报告发光基团,淬灭物(TAMRA)为淬灭基团。上游引物序列为:5′-CGGAACGCGCTT-GATGA-3′(1441~1457),下游引物序列为:5′-GGTCGAGCATATGTTTTGTTTCCt-3′(1517~1540),探针序列为:5′-FAM-CGCTGGCGCGCAACGTCA-TAMRA-3′(1481~1498),引物由上海生物工程技术服务有限公司合成。

1.2.3 荧光定量

PCR扩增体系优化及反应条件在荧光定量PCR反应体系中,对Mg2+浓度、探针浓度、引物浓度及其酶浓度进行优化,获得优化反应体系为:25 μL反应体系中,10×buffer 2.5 μL,20 mmol/L dNTP 2 μL,25 mmol/L MgCl2 3 μL,10 μmol/L上、下游引物各1 μL,热启动酶(Hotstart-Taq) 2.5 U (1 μL),10 μmol/L探针1 μL,模板DNA 2 μL,补加灭菌双蒸水至25 μL。反应程序为: 94 ℃预变性1 min,然后94 ℃变性10 s,60 ℃ 20 s,共40个循环。

1.2.4 建立定量标准曲线

将已知浓度的阳性样品进行10倍稀释得10-1,10-2,10-3,10-4,10-5,10-6,10-7浓度梯度,按上述反应体系和反应条件进行反应,得到标准曲线。判定标准曲线循环阈值(Ct值)及其与模板浓度的线性关系;循环阈值(Ct值)=16~30,表明可检出沙门菌株,超过这个范围均不能检出。

1.2.5 检测方法评价

(1)特异性:用沙门菌荧光定量PCR方法对非沙门菌进行检测,观察其特异性。(2)敏感性:用已知菌体数量的沙门菌按10倍稀释法进行稀释,然后再用荧光定量PCR检测,计算本方法的最低检测限,同时用普通PCR检测作对照。(3)稳定性:将荧光定量PCR检测试剂混合均匀分装并-20 ℃冷冻保存,然后每1个月取出进行检测,观察试剂稳定性。(4)重复性:用荧光定量PCR法对沙门菌进行重复多次检测,观察其重复性效果。

1.2.6 分离标本检测

用建立的沙门菌荧光定量PCR检测方法对本中心门诊体检的临床分离阳性标本和食物中毒标本共240份进行检测,与阳性对照样本和阴性对照样本进行比较,观察其检测效果,评价该试剂盒和方法的可靠性。

2 结果 2.1 标准动力扩增曲线和定量标准曲线

动力扩增曲线图结果显示,循环阈值(Ct)16.334 5,19.395 9,23.189 2,26.686 6,29.254 4,30.773 1,31.334 1和32.000 0,分别对应阳性样品10-1,10-2,10-3,10-4,10-5,10-6,10-7浓度梯度和阴性对照。当浓度稀释到10-7以上时,Ct值 > 31.334 1,与阴性对照接近,表明这一浓度下已不能检出沙门菌。定量标准曲线图结果显示,不同梯度定量模板数的对数值与Ct值之间呈良好线性关系,有极好的相关关系,相关系数为0.99;模板数不同,其Ct值也不同,模板数愈少,Ct值愈大。

2.2 特异性

结果显示,所有沙门菌标准株的荧光定量PCR循环阈值(Ct)在16~30之间,表明目的菌株均可准确检出,而非沙门菌株循环阈值(Ct)在32~40之间,均不能检出,表明该检测方法特异性好。

2.3 敏感性

将已知菌体数量(3 ×106)的阳性沙门菌按10倍稀释法进行稀释,然后用荧光定量PCR检测,判定最低检测限;同时用普通PCR检测作对照。结果表明,荧光定量PCR的敏感度比普通PCR高100倍以上。

2.4 重复性与稳定性

用本法对沙门菌和非沙门菌重复多次检测。结果显示,该检测方法重复性好。-20 ℃冷冻保存,每个月取出试剂进行荧光定量PCR检测,连续检测9个月,仍可获得结果,表明该试剂稳定,-20 ℃冷冻保存至少能保持9个月。

2.5 分离标本检测

对本中心分离的食物中毒标本和门诊健康从业人员体检分离标本240份进行检测。结果显示,所有沙门菌株荧光定量PCR循环阈值(Ct)在20~28之间,表明采用本方法可准确检测样品中的沙门菌,与沙门菌常规检测方法结果相一致。

3 讨论

研究表明,沙门菌体内高度保守序列invA基因决定了沙门菌对肠粘膜细胞的侵袭力,检测invA基因可以确认沙门菌的存在3。荧光定量PCR技术融汇了PCR和DNA探针杂交技术的优点,直接探测PCR过程中荧光信号的变化,无需PCR后处理和冗长的电泳检测2。本研究根据沙门菌保守invA基因筛选设计特异引物和探针序列,通过对实验条件的摸索优化,建立了沙门菌invA基因荧光PCR检测方法,经临床检测,与沙门菌常规方法及普通PCR检测结果一致,但灵敏度比普通PCR高100倍,并且有引物和探针双重保证,具有操作简单、灵敏度高,特异性、稳定性与重复性好的优点,可用于食物中毒、商检、出入境检验检疫等,具有广泛的应用前景。

参考文献
[1] 杨振泉, 方维明, 杨智, 等. 肠炎沙门菌随机扩增多态性DNA分子分型[J]. 中国公共卫生, 2007, 23(4) : 457–459.
[2] Kimura B, Kawasaki S, Fujii T, et al. Evaluation of TaqMan PCR assay for detecting Salmonella in raw meat and shrimp[J]. Food Prot, 1999, 62(2) : 329–335.
[3] Daum LT, Barnes WJ, McAvin JC, et al. Real-time PCR detection of Salmonella in suspect foods from a gastroenteritis outbreak in Kerr County, Texas[J]. Journal of Clinical Microbiology, 2002, 40(8) : 3050–3052. DOI:10.1128/JCM.40.8.3050-3052.2002