中国公共卫生  2009, Vol. 25 Issue (9): 1116-1117   PDF    
羟基酪醇对苏丹红Ⅰ号致DNA损伤抑制作用
张小梅1, 刘琳1, 景立新1, 仲来福2     
1. 大连大学医学检验系, 大连 116622;
2. 大连医科大学卫生学教研室
摘要: 目的 探讨羟基酪醇对苏丹红Ⅰ号(SudanⅠ)所致的人肝癌细胞(HepG2) DNA氧化损伤的抑制作用以及作用机制. 方法 采用单细胞凝胶电泳(SCGE)检测细胞DNA氧化损伤; 以21, 71-二氢二氯荧光素二乙酸酯(DCFH-DA)为荧光探针检测细胞内活性氧(ROS)水平; 用硫代巴比妥酸反应物(TBARS)法检测细胞内脂质过氧化水平; 以免疫组化法检测细胞内8-羟基脱氧鸟苷(8-OHdG)的表达水平. 结果 100 μmol/L苏丹红Ⅰ号引起HepG2细胞的DNA链断裂程度[尾长(46.49±2.06) μm, 尾距(19.99±1.44) μm]、ROS水平[荧光强度(9.03±1.05)]、细胞内TBARS产物(吸光度0.41±0.15)及8-OHdG表达水平(相对染色密度90.4±1.40)比对照组(二甲基亚砜)均明显增加(P < 0.01);不同浓度的羟基酪醇(0, 25, 50, 100 μmol/L)分别预处理HepG2细胞30 min后, 再加入100 μmol/L苏丹红Ⅰ号后, 羟其酪醇预处理组各项指标较单独接触苏丹红Ⅰ号组明显降低(P < 0.01或P < 0.05), 并且呈剂量依赖关系. 结论 羟基酪醇能够通过调控细胞氧化应激状态从而减轻苏丹红Ⅰ号所致的DNA氧化损伤.
关键词羟其酪醇     苏丹红Ⅰ号     HepG2细胞     氧化损伤    
Inhibitive effect of hgdroxytyrosol on Sudan Ⅰ induced DNA oxidative damage in human liver-derived HepG2 cells
ZHANG Xiao-mei, LIU Lin, JING Li-xin, et al     
Department of Laboratory Medicine, College of Medicine, Dalian University, Dalian 116622, China
Abstract: Objective To explore the inhibitory effect of hydroxytyrosol (HT) on oxidative injury induced by Sudan Ⅰin HepG2 cells. Methods The single cell gel electrophoresis assay (SCGE) was performed to study the DNA damage.The intracellular reactive oxygen species (ROS) formation was measured using 2, 7-dichlorofluorescein diacetate (DCFH-DA) as a fluorescent probe.The levels of oxidative DNA damage and lipid peroxidation were estimated by immunocytochemistry analysis of 8-hydrocyde-oxyguanosine (8-OHdG) and by measuring the level of thtiobarbituric acid-reactive substances (TBARS). Results Compared with the control group, HepG2 cells treated with 100 μM Sudan Ⅰ showed significantly different DNA strand breaks (tail length of comet:46.49±2.06 μm, the tail moment:19.99±1.44 μm), and the increases of ROS (9.03±1.05 μm measured by fluorescent intensity), intracallular TBARS level (0.41±0.15 μm) measured by absorbency, and the increase of 8-OHdG expression (20.5±0.09 μm measured by rleative staining intensity).Pretreatment with HT could inhibit the DNA damage and decrease the level of ROS, TBARS and 8-OHdG in a concentration-dependent manner. Conclusion HT could modulate the redox state and prevent the oxidative damage induced by Sudan Ⅰ in HepG2 cells.
Key words: hydrocytyrosol     SudanⅠ     HepG2 cell     oxidative damage    

国际癌症研究机构(International Agency for Research on Cancer, ⅠARC)将苏丹红Ⅰ号(SudanⅠ)归类为第三类致癌物, 这类物质虽缺乏足够的使人类致癌证据, 但它的遗传毒性使其具有潜在的致癌危险。肝脏是苏丹红Ⅰ号的代谢器官, 同时也是酚类化合物的代谢场所。因此, 本研究选用人类来源的人肝癌症细胞(HepG2)细胞系作为体外试验物, 探讨羟基酪醇对SudanⅠ所致DNA氧化损伤抑制作用及可能的作用机制。

1 对象与方法 1.1 试剂

苏丹红Ⅰ号, 外观呈红色粉末, 纯度 > 97%(德国Sigma-Aldrich公司)。苏丹红Ⅰ号以二甲基亚砜(DMSO)溶解, 贮存液浓度为10 μmol/L, -20 ℃保存。临用时用培养液稀释至所需浓度, 使DMSO终浓度为1%;羟基酪醇, 油状, 纯度为96%(日本Eisai Food & Chemical Co公司), 用三蒸水配成贮备液, -20 ℃避光保存。临用时用培养液稀释成所需浓度; 基础培养基(MEM)/非必须氨基酸(NEAA)、达尔伯克(氏)改良伊格尔(氏)培养基(DMEM)、1640培养基、胎牛血清(美国GIBCOBRL公司); 小牛血清(杭州四季公司); 低熔点琼脂糖(LMA)(美国PROMEGA公司); 正常熔点琼脂糖(NMA)(美国BIO-RAD公司); DMSO、核糖核酸酶(RNAse A)、21, 71-二氢二氯荧光素二乙酸脂(DCFH-DA)、郝希斯特33342(Ho-echst33342)、碘化丙啶(PT)(美国Sigma公司); 抗8-羟基脱氧鸟苷(8-OHdG)单克隆抗体(日本NOF公司); UltraSen-sitiveTM S-P超敏试剂盒、3, 3一二氨基联苯胺(DAB)显色试剂盒(福州迈新生物技术开发有限公司)。

1.2 细胞系

人肝癌细胞(HepG2)(中国协和医科大学)。细胞贴壁生长于MEM/NEAA培养液中, 培养液中加入10%胎牛血清、青霉素(100 U/mL)、链霉素(100 μg/mL)。培养环境37 ℃, 5%CO2。传代后取对数生长期细胞用于试验。

1.3 方法 1.3.1 单细胞凝胶电泳(SCGE)试验

参照Singh修改的SCGE方法(又称彗星试验)1, 稍加改动。取对数期生长细胞用胰酶消化收获, 设置25, 50和100 μmol/L羟基酪醇3个预处理组, 100 μmol/LSudanⅠ单独对照组以及DMSO溶剂对照组。离心收集细胞, 预处理组加入不浓度的羟基酪醇; SudanⅠ单独对照组和DMSO对照组加入同体积的磷酸盐缓冲液(PBS), 37 ℃孵育30 min; 离心收集细胞, 800 r/min离心5 min; 弃上清, 预处理组和SudanⅠ单独对照加入苏丹红Ⅰ号100 μmol/L共同孵育, DMSO对照组加入1%DMSO; 37 ℃温育1 h, 离心去上清; 用PBS洗涤细胞2次, 重悬于1 mLPBS; 将细胞调至106cells/mL; 为避免凋亡或坏死细胞呈慧星样细胞而造成假阳性, 将细胞悬液50 μL与Hochst33342(8 μg/ mL)和碘化丙啶(PI)(50 μg/mL)混合, 避光染色15 min, 于荧光显微镜下观察。

1.3.2 细胞内活性氧(ROS)测定

参考文献〔2〕方法。

1.3.3 细胞内8-羟基脱氧鸟苷(8-OHdG)免疫组化分析

按照文献〔3〕免疫组化方法。

1.3.4 细胞内硫代巴比妥酸反应物(TBARS)的测定

参考文献〔4〕方法。

1.4 统计分析

采用SPSS11.5软件进行统计分析。2组间均数比较采用t检验。

2 结果 2.1 羟基酪醇对苏丹红Ⅰ号致DNA链断裂的影响(表 1)
表 1 羟基酪醇对SudanⅠ诱导DNA链断裂的保护作用(x±s)

SudanⅠ组、羟基酪醇预处理组及DMSO对照组均未见凋亡细胞, 细胞存活率 > 90%。SudanⅠ组HepG2细胞呈现慧星样, 尾长、及尾矩明显大于DMSO对照组(P < 0.01)。羟基酪醇预处理HepG2细胞30 min, 结果显示, SCGE试验各项指标明显下降(P < 0.01或P < 0.05), 提示DNA链断裂减轻并呈剂量依赖关系。

2.2 羟基酪醇对SudanⅠ至ROS生成增多的影响

SudanⅠ作用于HepG2细胞1 h后, 细胞内ROS水平明显升高, 荧光强度达到(9.03±1.05), 与对照组比较差异有统计学意义(P < 0.01)。25, 50, 100 μmol/L羟基酪醇分别预处理30 min后, 细胞内的ROS水平明显降低, 荧光强度分别为(6.08±2.78), (5.28±0.64), (2.68±0.24), 差异有统计学意义(P < 0.01)。

2.3 羟基酪醇对SudanⅠ作用8-OHdGR的影响

SudanⅠ组致HepG2细胞系8-羟基鸟苷(8-OHdG)表达明显增强, 与DMSO对照组间比较差异有统计学意义(P < 0.01)。25, 50, 100 μmol/L羟基酪醇分别预处理30 min后, 细胞内的8-OHdG的相对染色密度分别从(90.4±1.40)降至(65.0±1.60), (56.2±0.64), (20.5±0.09), 差异均有统计学意义(P < 0.01)。

2.4 羟基酪醇对SudanⅠ致脂质过氧化形成的影响

Sudan Ⅰ致HepG2细胞的脂质过氧化水平明显升高, 脂质过氧化产物在535 nm处吸光度值达到(0.41±0.15), 与对照组(0.18±0.13)比较, 差异有统计学意义(P < 0.01)。25, 50, 100 μmol/L羟基酪醇分别预处理30 min后, 脂质过氧化水平均明显下降, 100 μmol/L羟基酪醇能完全抑制SudanⅠ所致的脂质过氧化产物生成。

3 讨论

本研究结果表明, 羟基酪醇能够抑制SudanⅠ所到的HepG2细胞DNA链断裂和8-OHdG的表达, 并且呈剂量依赖关系。而且羟基酪醇能够明显降低由SudanⅠ产生的ROS过量生成, 同时100 μmol/L羟基酪醇剂量组能完全抑制苏丹红Ⅰ号引起的脂质过氧化产物的增多。过量生成的ROS能引起细胞氧化损伤, 如DNA氧化性损伤, 蛋白质氧化和膜脂质过氧化。据报道5, 细胞内8-OHdG表达增高与DNA单链断裂增多有关。体内研究发现, 8-OHdG表达增强与染色体断裂和姊妹染色单体交换增多也有关6。因此, 羟基酪醇能降低苏丹红Ⅰ号对HepG2细胞的氧化损伤可能是通过降低苏丹红Ⅰ号引起的ROS生成增加而实现。

参考文献
[1] Singh NP, Stephens RE. Microgel electrophoresis: sensitivity, mechanisms, and DNA electrostretching[J]. Mutat Res, 1997, 383 : 167–175. DOI:10.1016/S0921-8777(96)00056-0
[2] 李冰, 王毅, 孙贵范. 甲基亚砷酸对内皮型一氧化氮合酶磷酸化影响[J]. 中国公共卫生, 2007, 23(1) : 103–104.
[3] Halliwell B, Whiteman M. Measuring reactive species and oxidative damage in vivo and cell culture: How should you do it and what does it mean?[J]. Brit J Pharmacol, 2004, 142 : 231–255. DOI:10.1038/sj.bjp.0705776
[4] Leal LK, Nobre Júnior HV, Cunha GM, et al. Amburoside A, a glucoside from Amburanacearensis, protects mesencephalic cells against 6-hydrocydopam ine-induced neurotoxicity[J]. Neurosei Lett, 2005, 388 : 86–90. DOI:10.1016/j.neulet.2005.06.034
[5] Zhang R, Kang KA, Piao MJ, et al. Cellular protection of morin against the oxidative stress inducde ny hydrogeen perocide[J]. Chem Biol Interact, 2009, 177(1) : 21–27. DOI:10.1016/j.cbi.2008.08.009
[6] Reliene R, Schiestl RH. Glutathione depletion by buthionine sulfoci-mine induces DNA deletions in mice[J]. Carcinogeoesis, 2006, 27 : 240–244. DOI:10.1093/carcin/bgi222