中国公共卫生  2009, Vol. 25 Issue (6): 673-675   PDF    
甲苯二异氰酸酯致中国仓鼠肺细胞DNA交联作用
王淼, 陈文华, 吴艳萍, 张旸     
哈尔滨医科大学公共卫生学院, 哈尔滨 150081
摘要: 目的 研究甲苯二异氰酸酯(TDI)诱导中国仓鼠肺细胞(CHL) DNA的交联作用, 探讨TDI的遗传毒性。 方法 在培养的CHL细胞中分别加入浓度为0.64, 1.28, 2.56μmol/mL的TDI进行染毒, 用荧光分光光度法检测细胞内的DNA-DNA交联水平, 用氯化钾-十二烷基硫酸钠(KCl-SDS)沉淀法检测细胞内的DNA-蛋白质交联水平。 结果 低浓度的TDI不能致DNA-DNA交联(DDC)和DNA-蛋白质交联(DPC)(P > 0.05);随着染毒浓度的增加, 其DDC率和DPC率也随之升高, 高剂量组的DDC为54.97%(P < 0.01), DPC为29.06%(P < 0.0)。 结论 一定剂量的TDI能诱导细胞内DNA交联作用。
关键词甲苯二异氰酸酸     DNA-DNA交联     DNA-蛋白质交联    
Study on toluene diisocyanate-induced DNA-DNA and DNA-protein crosslinks
WANG Miao, CHEN Wen-hua, WU Yan-ping, et al     
College of Public Health, Harbin Medical University, Harbin 150081, China
Abstract: Objective To study the DND-DNA and DNA-prote in crosslink sinduced by to luene diisony anate (TDI) in Chinese hamster cells (CHL) for gene toxic investigation. Methods Chinese hamster lung (CHL) cells were treated with various concentrations of TDI (0.64, 1.28, 2.56 mol/L).The amount of DNA-DNA crosslink (DDC) was mea sured by fluoro spectrophotometry.The DNA-protein crosslink (DPC) was detected with KSDS assay. Results No significant difference of DDCs and DPCs with TDI at 0.64 mol/mL was observed (P>0.05).The percentages of DDCs and DPCs in duced by TDI at 1.28 mol/mL and 2.56 mol/mL were significantly higher than that of the control group (P < 0.01). Conclusion Certa in dose of TDI caninduce DNA-prote in crosslink and DNA-DN A crosslink.
Key words: to luene diisocyanate     DNA-DNA crosslink     DNA-prote in crosslink    

甲苯二异氰酸酯(toluene diisocyanate, TDI)是合成聚氨酯的主要原料,工业上广泛用于氨基甲酸泡沫胶、合成橡胶、油漆、涂料、塑料等的生产。长期接触和使用,可对人体的呼吸系统、免疫系统、生殖系统等造成损害。已有研究证实,TDI对动物有致癌作用,为人类的可疑致癌物1。国际癌症研究机构(IARC)体外实验显示,TDI可引起人淋巴细胞DNA损伤和染色体畸变,啮齿动物细胞基因突变和姐妹染色单体交换2。DNA损伤是导致基因突变发生的一个必不可少的前提。DNA交联作为一种重要的DNA损伤,在细胞内大量存在可以干扰细胞正常的复制转录过程,从而导致肿瘤或某些严重疾病的发生3。本研究以中国仓鼠肺细胞(CHL)为靶细胞,探讨甲苯二异氰酸酯(TDI)对细胞内DNA的交联作用,揭示其遗传毒性,为评价TDI类化合物潜在的生物学效应提供科学依据。

1 对象与方法 1.1 仪器与试剂

MC-20AIC型CO2恒温培养箱(日本SANYO公司); SW-CJ-2F型生物洁净工作台(苏州安泰空气技术有限公司); 荧光分光光度计RF-540(日本岛津Shimazu公司)。PRMI-640培养基(美国Gibco公司); 小牛血清(上海纬群生物技术有限公司); 乙二胺四乙酸(EDTA)、三羟甲基氨基甲烷(TRIS)、十二烷基硫酸钠(SDS)、蛋白酶K、Hoechst 33258、小牛胸腺DNA (美国Sigma公司); 其他试剂如氯化钾(KCl)、二甲基亚砜(DMSO)等均为国产分析纯。甲苯二异氰酸酯(TDI,分析纯,美国Sigma公司); 中国仓鼠肺细胞(CHL,中国协和医科大学基础所细胞室)。

1.2 细胞处理

将处于对数生长期的CHL细胞(105~106)接种于培养瓶中,培养24 h后,加入不同浓度的TDI,终浓度分别为0.64,1.28,2.56 μmol/mL,同时设溶剂对照组(DMSO)和紫外线照射阳性对照组; 继续培养2 h,消化离心收集细胞。

1.3 DNA-DNA交联(DDC)的检测4 1.3.1 细胞裂解

在制备好的细胞悬液中加入0.5 mL SDS (2%)溶液,轻微振荡,65 ℃水浴中加热10 min,待用。

1.3.2 游离DNA、DDC与DNA-蛋白质交联(DPC)的分离

在上述待测样品中加入100 μl的1.0 mol/L的KCl (pH 7.5),将混合液6次穿过1 mL的聚丙烯枪头,冰上冷冻5 min后,SDSK+沉淀(包括蛋白质和DPC形成,4 ℃ 10 000 r/min离心5 min,收集沉淀,将上清(DNA、DDC)转入另一5 mL离心管中。

1.3.3 DPC中结合DNA的分离

将上述沉淀重悬浮于0.5 mL的清洗缓冲液(KCl 0.1 μmol/L,EDTA 0.1 mmol/L, Tris-HCl 20 mmol/L,pH 7.5)中,加入0.5 mL的蛋白酶(0.4 mg/mL),50 ℃水浴消化3 h,冰上骤冷5 min,4 ℃ 12 000 r/min离心10 min,收集上清液,将上清液转入上述5 mL离心管中。再向沉淀中加入1 mL的清洗缓冲液重悬,65 ℃水浴中加热10 min,冰上骤冷5 min,4 ℃ 10 000 r/min离心5 min,收集沉淀,重复清洗步骤3次,每次都将上清转入上述5 mL离心管中。

1.3.4 游离DNA变性

将上述5 mL离心管中的上清液混匀后,各取1 mL分装2管作为待测样品,一管在100℃水浴中加热5 min进行热变性,随后快速冷却至23 ℃,使其中游离的DNA变性后不致复性。

1.3.5 染色与检测

向上述待测样品中加入1 mL新鲜配制的400 ng/mL的荧光染料Hoechst33258, 使终浓度为200 ng/mL,置于暗处30 min,用荧光分光光计在353 nm激发光和455 nm发射光下测得其荧光值,按下式计算DNA-DNA交联率。

DNA-DNA交联率:Ct=(fn-f0)/(1-f0)。式中Ct为DNA-DNA交联率,fn为染毒组中热变性后的荧光强度/热变性前的荧光强度,f0为对照组中热变性后的荧光强度/热变性前的荧光强度。

1.4 DPC的检测5 1.4.1 细胞裂解

在染毒后的细胞沉淀中分别加入0.5 mL SDS (2%)溶液,轻微振荡,65℃水浴中加热10 min,裂解细胞。

1.4.2 游离DNA的分离

从水浴取出裂解好的细胞,加入1.0 mol/L KCl (pH 7.5)溶于20 mmol/L Tris-HCl中100 μl,将混合液6次穿过1 mL的聚丙烯枪头,从而使DNA长度统一。混合液冰上冷冻5 min,形成SDS-K+沉淀,4 ℃ 10 000 r/min离心5 min,收集沉淀,将上清液转入另一5 mL离心管中。沉淀加1 mL清洗缓冲液重悬,65 ℃水浴加热10 min,冰上骤冷5 min,重复离心和清洗步骤3次,每次都将上清液转入5 mL离心管中。

1.4.3 DPC中结合DNA的分离

最终的沉淀重悬于0.5 mL的清洗缓冲液中,然后加入0.5 mL的蛋白酶K (0.4 mg/mL),50 ℃水浴中消化3 h,再在冰上骤冷5 min,然后于4 ℃12 000 r/min离心10 min,收集上清液即为DPC中的DNA。

1.4.4 DPC的定量

制作DNA浓度的标准曲线,用清洗缓冲液配制终浓度为0,100,300,500,750,1 000,1 500,2 000,3 000,5 000 ng/mL的小牛胸腺DNA标准液,然后加入1 mL新鲜配制的400 ng/mL荧光染料Hoechst33258,使荧光染料的终浓度为200 ng/mL,置于暗处染色30 min,用荧光分光光度计在350 nm激发光和450 nm发射光下测得各浓度的荧光值,制备标准曲线。将上述待测样品用同样方法染色,测定其荧光值,根据DNA标准曲线来定量DPC中DNA (A)和原液中DNA (B)的含量,按下式计算DPC系数:η=A/A+B×100%。

1.5 统计分析

应用SPSS 13.0软件进行分析。

2 结果 2.1 甲苯二异氰酸酯致CHL细胞DNA-DNA交联(DDC)效应(图 1)
注:与对照组比较,a p < 0.05,b p < 0.01。 图 1 TDI诱导cHL细胞DDC效应

随着TDI浓度增高,染毒组细胞DNA-DNA交联率增加。0.64 μmol/LmL TDI染毒组,CHL细胞DNA-DNA交联率与对照组比较差异无统计学意义(P>0.05);当浓度上升至1.28 μmol/mL时,DNA-DNA交联率明显上升,与对照组比较差异有统计学意义(P < 0.05);浓度升高至2.56 μmol/mL时,DNA-DNA交联率为54.79%,与对照组比较差异有统计学意义(P < 0.01),表明TDI在低浓度时不能引起DNA-DNA交联,在较高浓度时,能够明显地诱导DDC的形成,并且浓度与DNA-DNA交联率之间存在剂量-效应关系。

2.2 甲苯二异氰酸酯致CHL细胞DNA-蛋白质交联(DPC)效应(图 2)
注:与对照组比较,a p < 0.01。 图 2 TDI诱导CHL细胞DPC效应

图 2显示,经0.64 μmol/mL TDI染毒处理的CHL细胞,DPC系数与对照组比较差异无统计学意义(P>0.05);但是,当浓度上升至1.28和2.56 μmol/mL时,DPC系数明显上升,且与对照组比较差异有统计学意义(P < 0.01)。表明TDI在低浓度时,不会引起DNA-A蛋白质交联; 在较高浓度时,能够明显地诱导DPC的生成。

3 讨论

DNA交联包括DNA-DNA交联(DDC)和DNA-蛋白质交联(DPC)2种,是外来化学物作用于DNA所致的重要遗传损伤形式。与其他类型DNA损伤相比,DNA交联较难修复或易于发生易错修复,在细胞周期中维持时间较长,导致染色体断裂、缺失,基因突变和细胞的死亡6

本研究结果表明,低浓度的TDI (0.64 μmol/L)不能致DNA-DNA交联(DDC)率和DNA-蛋白质交联(DPC)率发生明显变化(P>0.05);随着染毒浓度的增加(1.28,2.56 μmol/mL),其DDC交联率和DPC交联率也随之升高,可导致明显的DDC效应(P < 0.01)和DPC效应(P < 0.01)。提示一定剂量的TDI能诱导细胞内DNA交联。Peel M等研究发现,经TDI处理的DNA形状与对照不同,且复性后14%DNA发生重构7,与本实验结果相似。

随着人们生活水平的提高,各种涂料已成为美化环境不可缺少的装饰材料,大量聚氨酯油漆、防水涂料、聚氨酯密封的使用,使TDI成为室内主要空气污染物之一。因此,应加强环境空气监测和作业人群健康监护,降低和限制各种装饰材料中游离TDI含量,避免长期接触对机体健康造成危害。

参考文献
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[7] Peel M, Marczynski B, Baur X. Comparison of the binding potential of various diisocyanates on DNA in vitro[J]. J Toxicol Environ Health, 1997, 52(6) : 517–526. DOI:10.1080/00984109708984078