中国公共卫生  2008, Vol. 24 Issue (11): 1352-1353   PDF    
神经管畸形DNA损伤单细胞凝胶电泳检测
赵海峰1, 李学敏2, 李秀花1, 田志强1, 肖荣3     
1. 山西医科大学营养与食品卫生教研室, 太原030001;
2. 山西省疾病预防控制中心毒理科;
3. 首都医科大学营养与食品卫生教研室
摘要目的 利用单细胞凝胶电泳技术检测大鼠神经管畸形发生过程中DNA损伤及影响因素。 方法 Wistar孕鼠20只,按体重随机分为神经管畸形模型组和生理盐水对照组。模型组于孕13 d一次性腹腔注射环磷酰胺12.5mg/(kg·bw),正常对照组于孕13d给予0.3 ml的生理盐水。孕14 d时各组随机处死2只孕鼠,每只孕鼠各取3只胎鼠的脑组织,利用单细胞凝胶电泳技术检测神经管畸形发生过程中胚胎神经细胞DNA损伤情况并分析影响因素。孕20 d时处死各组动物,检测动物的生长发育情况以及各组的畸形发生率。 结果 正常对照组的胎鼠神经细胞呈现典型的圆形,而模型组出现特征性彗星形态,即很小的彗星头,大而圆的彗星尾,且彗星尾长[(16.35±5.59)μm]明显高于对照组[(7.28±1.76)μm]。于孕20 d时处死各组动物,发现模型组动物胎鼠的生长发育指标包括身长、体重和尾长均明显小于对照组(P<0.05),畸形发生率(67%)明显高于对照组(P<0.05)。细胞悬液和胶的浓度、裂解及荧光染色的时间是影响实验的因素。 结论 单细胞凝胶电泳技术可以检测神经管畸形发生时胚胎神经细胞中DNA损伤情况,注意实验的影响因素可增加该法的特异性和灵敏度。
关键词单细胞凝胶电泳技术     神经管畸形     DNA损伤    
Detection on DNA damage by single cell gel electrophoresis assay technology
ZHAO Hai-feng, LI Xue-min, LI Xiu-hua, et al     
Department of Nutrition and Food Hygiene, Shanxi Medical University Taiyuan 030001, China
Abstract: Objective To study the detection on DNA damage by single cell gel clectrophoresis assay technology during rats.neural tube defect process. Methods Twenty pregnant rats were randomly divided into control group and NTDs model group according to their weight.On the 13 d of gestation,the pregnant rats of the model group were given cyclophsphamide 12.5 mg/(kg·bw)via intraperitoneal administration,the control group was given 0.3 ml N.S in the same way.On the 14 d of gestation,two rats of each group were executed.The DNA damage of three embryo's brain tissue in each pregnant rat was checked through single-cell gel electrophoresis technology.Furthermore,influence factors of SCGE were analyzed. Results Comet cells were found in the model group but were not found in control group.The comet cells showed small head and big tail.Tail length of comet cells in model group[(16.35?5.59)Lm]was longer significantly than that of neuron cells in control group[(7.28+1.76)Lm].Ratio of abnormity in model group(67%)was significantly increased(P<0.05)and the developmental index was significantly decreased in model group(P<0.05).T here were some factors affecting the experiment including concentration of cell suspension and gel,time of split as well as fluo rescent staining. Conclusion DNA damage in NTDs can be checked by single cell gel electro phoresis assay technology.Besides,some details should be emphasize in order to improve the sensitivity and specificity.
Key words: single cell gel electrophoresis assay     neural tube defects     DNA damage    

研究发现,细胞凋亡是神经管畸形(neural tube defects,NTDs)发生的重要机制之一[1-4]。细胞凋亡发生过程中有明显的DNA损伤发生。而单细胞凝胶电泳(single cell gel electrophoresis,SCGE)能在单细胞水平上检测DNA链断裂。目前,SCGE被广泛用于生物监测等研究中,而有关其在胚胎神经细胞的DNA损伤中的应用报道较少。本文旨在探讨SCGE在检测神经管畸形胎鼠DNA损伤的应用并完善其在胚胎神经细胞中应用的注意事项,为NTDs的发生和相关干预的机制研究提供实验基础。

1 材料与方法 1.1 试剂

环磷酰胺(江苏恒瑞医药股份有限公司);二甲基亚砜(北京化工厂);胰酶、Triton X-100、普通熔点琼脂糖、低熔点琼脂糖及溴化乙啶等试剂(上海生物工程有限公司)。

1.2 实验仪器

DY-1电泳仪(北京市六一仪器厂);OLYMPUS荧光显微镜(日本OLYMPUS公司)。

1.3 动物分组、饲养和处理方法

健康雌性Wistar大鼠20只,体重250 g左右,未经产,鼠龄2.5~3个月(山西医科大学动物实验中心)。动物室温度20~23℃,湿度50%~55%,自然采光,自由摄食进水。雌雄大鼠适应性喂养3d后按1:1比例合笼,次日晨查阴栓,发现阴栓确定为受孕第0 d,并将孕鼠随机分为对照组和模型组。模型组大鼠于孕13 d时一次性腹腔注射环磷酰胺12.5 mg/(kg.bw),正常对照组于孕13 d,给予0.3 ml的生理盐水。孕14 d时各组随机处死2只孕鼠,采用单细胞凝胶电泳技术检测胎鼠脑组织细胞DNA损伤。其余的孕鼠于孕20 d时处死,剖腹取胎鼠,计算胎鼠NTDs畸形发生率和生长发育指标。

1.4 胚胎脑组织神经细胞DNA损伤检测方法

采用单细胞凝胶电泳技术检测胚胎神经细胞的DNA损伤。

1.4.1 神经细胞悬液的制备

(1)消化:胎鼠脑组织置于预冷的解剖液中,解剖镜下剥去脑膜,剪碎后,于2 ml 37℃水浴中预热的0.25%的胰酶中准确消化15 min后立即用含有胎牛血清和马血清的DMEM(Dulbecco's modified Eagle's medium)约4~5 ml终止消化。(2)离心、过滤:DMEM液体1 000 r/5min离心洗涤细胞共3次。最后一次洗涤后吸去上清,加入2 ml含血清的DMEM,将细胞吹散后用大于200目的不锈钢网过滤,记数后利用DMEM调整细胞的浓度为1×106。(3)观察细胞的存活状态:取约100 μl的细胞悬液,加少许台盼兰染色,光镜下观察细胞。活细胞透亮而死细胞则被染为蓝色,当观察细胞存活率达99%以上时,可以进行以下步骤。

1.4.2 制备胶片

将0.8%的正常熔点琼脂糖100μl滴在磨砂载玻片上,用盖玻片压平胶面,置4℃下固化10 min,然后轻轻移开盖玻片,此为第1层胶;取细胞悬液80 μl在37℃下与低熔点琼脂糖130 μl混匀后迅速铺在第一层胶上,用盖玻片压平胶面,置40℃下固化10 min,再轻轻移开盖玻片,此为第2层胶;然后在第2层胶上再铺上一层0.8%的低熔点琼脂糖70 μl,加上盖玻片,4℃下固化10 min,此为第3层胶。

1.4.3 裂解和解旋

移开盖玻片,将制好的胶板水平浸没于新配置的裂解液[NaCl(25 mol/L],乙二胺四乙酸二钠盐(Na2EDTA,100 mmol/L),pH=10,Tris-Cl(10 mmol/L))中。用之前加入1%的Triton X-100和10%的二甲基亚砜(DMSO),4℃下裂解1 h。取出胶板,置于装有电泳缓冲液的水平电泳槽中,静置20 min解旋。

1.4.4 电泳

倒入新配置的电泳缓冲液[Na2EDTA(1 mmol/L),pH=13NaOH(300 mmol/L)],电压25V,调整电流为300 mA,4℃下电泳20 min。

1.4.5 中和与染色

将胶板取出,水平放入大平皿中,倒入中和液[pH=7.5,Tris-HCl(0.4mol/L)],中和2次,每次15 min。20 μg/ml的溴化乙啶在暗处染色20 min,然后将胶板水平放置在蒸馏水中漂洗15 min,盖上盖玻片。4℃下湿盒中避光保存,尽快阅片。

1.4.6 镜检与计算

在荧光显微镜下观察,绿光激发,吸收滤光片590 nm,高速SHD 400摄影和照相,彩色胶卷同步照相。选用彗星细胞发生率(%)和迁移距离估计DNA损伤程度。

2 结 果 2.1 各组胎鼠生长发育指标和畸形发生率(表 1)

表 1可见,模型组胎鼠畸形发生率明显高于正常对照组,且模型组胎鼠的体重、身长和尾长均明显低于对照组。说明在NTDs发生过程中胎鼠的生长发育受到影响。

表 1 各组胎鼠的体重、身长、尾长及畸形率(x±s)

2.2 SCGE检测NTDs胚胎神经细胞的结果(图 1)

正常对照组细胞呈现典型的圆形,而模型组细胞出现明显的拖尾现象即形成/ 彗星0样细胞, 且细胞迁移距离与彗星发生率均显著明显高于对照组。

图 1 SCGE法检测正常胎鼠和NTDs 胎鼠神经细胞的结果

2.3 各组胎鼠神经细胞彗星发生率及细胞迁移距离

结果可见,模型组细胞迁移距离与彗星发生率均[(16.35±5.59)μm,0.59%],明显高于对照组[(7.28±1.76)μm,0.16%],2组比较,差异有统计意义,P<0.05。

3 讨 论

神经管畸形是由于神经管的发生和分化紊乱而导致的发生率高、后果严重的一组出生缺陷。环磷酰胺、是临床上常用的药物,其可引起细胞的凋亡[5]而导致NTDs的发生。细胞凋亡时可见DNA的损伤,本研究利用单细胞凝胶电泳(SCGE)技术,以彗星细胞发生率、DNA迁移距离作为评价指标[6-8],灵敏、直观、简便的检测了CP导致的NTDs发生过程中的DNA损伤变化。结果显示,CP导致NTDs发生时细胞迁移距离与彗星发生率均显著高于对照组,并且NTDs胎鼠的体重、身长及尾长等生长发育指标明显低于对照组。

利用SCGE技术检测胎鼠脑组织神经细胞DNA的损伤时应注意以下事项,以保证结果的灵敏性和特异性:(1)单细胞悬液的浓度调整为1×106;(2)胶板制备时,胶的浓度可以选择在0.5%~1%之间,并要保证胶片表面的平滑;(3)裂解时加入1%的TritonX-100并加细胞保护剂肌氨酸钠或DMSO;(4)电泳时应保持电流、电压的恒定;(5)染色后在2 h内观察荧光效果最好。若不能及时观察可将载玻片盖上盖玻片后放于湿盒中4℃保存,72 h内阅片,防止荧光淬灭。

参考文献
[1] 李玲, 王文青. 酒精致金黄地鼠神经管和眼畸形的实验研究[J]. 解剖学报, 2004, 35(2) : 210–215.
[2] 李勇, 陈星, 赵新荣. 同型半胱氨酸致细胞凋亡与畸胎发生的关系[J]. 卫生研究, 1999, 28(5) : 275–278.
[3] Thayer JM, Mirkes PE. Programmed cell death and n-acetoxy-2-acetylaminofluorene-induced apoptosis in the rat embryo[J]. Tera Jology, 1995, 51 : 418–429. DOI:10.1002/(ISSN)1096-9926
[4] 肖荣, 赵海峰, 李学敏, 等. 细胞凋亡在环磷酰胺致大鼠神经管畸形中作用[J]. 中国公共卫生, 2003, 7(19) : 824–826.
[5] 孙亦阳,杨兆芬,谢继锋.采用SCGE和SCE分析法研究姬松茸菌体多糖[Ab—Mp]对DNA损伤的抑制作用[J].生物学杂志,2006,23(5):34-37. http://med.wanfangdata.com.cn/Paper/Detail/PeriodicalPaper_swxzz200605010
[6] 刘强, 姜恩海, 李进. 单细胞凝胶电泳技术对离体和整体照射致细胞DNA断裂的一致性研究[J]. 中国辐射卫生, 2006, 15(2) : 153–155.
[7] Ejchart A, Sadlej-Sosnowska N. Statistical evaluation and comparison of comet assay results[J]. Mutat Res, 2003, 534(1-20) : 85–92.
[8] Olive PL, Wlode kD, Banáth JE. DNA double-strand breaks measured in individual cell subjected to gel electorophoresis[J]. Cancer Res, 1991, 51(17) : 4671–4677.
[9] Wang X F, Xing M L, Shen Y, et al. Oral administration of Cr(VI) induced oxidative stress,DNA damage and apoptotic cell death in mice[J]. Toxicology, 2006, 228(1) : 16–23. DOI:10.1016/j.tox.2006.08.005
[10] 李恩民, 杨帆, 陈爱云, 等. 对单细胞凝胶电泳法检测细胞核DNA损伤的影响因素[J]. 汕头大学医学院学报, 2002, 15(1) : 14–16.