2. 首都医科大学附属北京同仁医院
微波辐射可引起学习记忆改变[1, 2]。突触可塑性是学习记忆的神经基础。N 甲基 D 天冬氨酸受体(N Methyl D Asparate receptor,NMDAR)与长时程增强(long term potentiation,LTP)、学习记忆关系密切;Ca2+通过NMDA型谷氨酸受体内流导致钙 钙调蛋白依赖蛋白激酶(Ca2+/calmodulin dependent protein kinase Ⅱ,CaMK Ⅱ)激活和突触后聚集,导致LTP;学习记忆形成及突触可塑性与CaMK Ⅱ的活性改变密切相关[3-6]。为此,本文对高功率微波(high power microwave,HPM)辐射后海马神经元CaMK Ⅱ的变化进行研究,探讨HPM辐射后海马神经元损伤及突触可塑性改变的病理生理过程。
1 材料与方法 1.1 主要试剂胰蛋白酶(美国Amresco公司);多聚赖氨酸(美国Sigma公司);谷氨酰胺(美国Hyclone公司);羟乙基哌嗪乙磺酸(hydroxyethyl piperazine ethanesulfonic acid,HEPES)(美国Amersham公司);胎牛血清(DMEM)培养基(Dulbecco's Modified Eagle Medium)和阿糖胞苷(美国Sigma公司);胎牛血清和马血清(美国Invitrogen公司),鼠抗p CaMK Ⅱ(英国Abcom公司);羊抗鼠免疫球蛋白G(Immunoglobulin G,IgG)和罗丹明(北京中杉金桥技术有限公司);生物素标记的羊抗鼠IgG(北京中山生物技术有限公司);其他相关试剂均为国产。
1.2 细胞培养方法取出生12h以内的Wistar雄性大鼠10只,冰冻麻醉后,用75%乙醇浸泡消毒5min。无菌条件下在盛有磷酸盐缓冲液(PBS)的平皿内断头取脑,按文献[7]方法培养细胞备用。
1.3 细胞鉴定采用免疫细胞化学技术(SP法)对神经元的标志物神经元特异性烯醇化酶(neuron specific enolase,NSE)和胶质细胞的标志物神经胶质原纤维酸性蛋白(glial fibrillary acidic protein,GFAP)进行检测,按文献[8]方法。结果判定:阳性结果为棕黄色,位于细胞浆内,苏木素复染胞核呈淡蓝色。
1.4 分组培养的细胞经HPM辐射,分为假辐射组和辐射组,平均功率密度分别为0和30mW/cm2,辐射时间为5min。
1.5 免疫细胞化学检测神经元p CaMK Ⅱ于HPM辐射后1h捞片,甲醇和丙酮按1∶1混合液固定,4℃保存备用。主要步骤同细胞鉴定,其中特异性抗体为鼠抗p CaMK Ⅱ,1∶100(PBS)稀释,二抗为生物素化羊抗鼠(Bio IgG)工作液。对照实验:用PBS代替一抗作阴性对照,其余步骤同上。结果判定:阳性结果为棕黄色,位于细胞浆内,苏木素复染胞核呈淡蓝色。1.6免疫荧光技术检测神经元p CaMK Ⅱ细胞爬片的制备如前述;于HPM辐射后1h捞片,甲醇和丙酮按1∶1混合液固定。室温孵育30min;缓冲液漂洗3次;加鼠抗p CaMK Ⅱ 1∶100(PBS)稀释,37℃ 40min;4℃过夜;PBS洗3×3min;加罗丹明,1∶100(PBS)稀释,室温孵育2h;PBS洗3×3min;加0.5ml PBS;应用激光扫描共聚焦显微镜进行检测。对照实验:用PBS代替一抗作阴性对照,其余步骤同上。结果判定:阳性结果为红色荧光,位于细胞浆内,胞核仅有少量微弱荧光。
2 结果 2.1 大鼠海马原代培养细胞鉴定结果原代培养的海马神经元于12h后贴壁生长,第4d时,细胞伸出细丝状神经突起。生长至7~10d时,细胞状态最好,呈圆形、三角形,胞体饱满,立体感强,突起丰富,交织成网状。生长至20d时,细胞逐渐萎缩,坏死,脱落,至30d时,基本无存活细胞。取生长至7~10d的海马神经元进行免疫细胞化学鉴定显示,NSE阳性细胞占绝大多数,阳性部位位于胞浆中,并沿神经突起分布。NSE阳性细胞胞体呈近圆形,突起丰富、细长,相互交织成网状。GFAP阳性细胞偶见,阳性部位位于胞浆中,沿细胞突起分布。GFAP阳性细胞胞体粗大,呈不规则型,扁平,缺乏立体感,细胞突起粗大而短,不相互交织。表明培养的细胞绝大多数为神经元。
2.2 HPM辐射后大鼠海马神经元形态变化假辐射组海马神经元细胞形态较好,呈圆形、三角形,胞体饱满,立体感强,突起丰富,交织成网状。30mW/cm2 HMP辐射后1h,大鼠海马神经元细胞形态有所改变,部分细胞胞体略萎缩,胞浆减少,突起变细,数目减少,长度变短。
2.3 HPM辐射后大鼠海马神经元p CaMKⅡ的变化(图 1,2)免疫细胞化学结果显示,假辐射组海马神经元胞浆中p CaMK Ⅱ呈淡棕黄色弱阳性表达。30mW/cm2 HMP辐射后1h,大鼠海马神经元胞浆中棕黄色颗粒明显增多,颜色加深,p CaMK Ⅱ表达明显增加。
|
注:p-CaMKⅡ于神经元胞浆呈阳性。 图 1 30mW/cm2IMP辐射后1h大鼠海马神经元(sp.X400) |
|
注:胞浆中pcaMKⅡ呈阳性。 图 2 30roW/cm2辐射后1h大鼠海马神经元(LSCM.×1000) |
免疫荧光结果显示,假辐射组海马神经元胞浆中p CaMK Ⅱ呈微弱红色荧光,30mW/cm2 HMP辐射后1h,大鼠海马神经元胞浆中红色荧光明显增强,胞核荧光较胞浆弱,同假辐射组相比p CaMK Ⅱ表达明显增加。表明30mW/cm2 HMP辐射可引起海马神经元CaMK Ⅱ磷酸化增加,其参与HPM辐射致海马突触可塑性的改变。
3 讨论CaMK Ⅱ在与记忆形成及LTP相关区域、谷氨酸结合活性区,含量特别高。被动回避训练可增加N 甲基 D 天冬氨酸受体1型(NR1)的表达和CaMK Ⅱ及磷酸化的CaMK Ⅱ水平[9];CaMK Ⅱ的活性表现主要是通过其自身磷酸化来实现的[10]。CaMK Ⅱ在NMDA受体介导的信号通路中发挥着重要的作用,其在学习记忆及突触可塑性等生理过程中具有重要的调节作用。本实验通过观察p CaMK Ⅱ在HPM辐射后海马原代培养神经元细胞中的变化,发现30mW/cm2 HMP辐射后1h,大鼠海马神经元胞浆中p CaMK Ⅱ表达明显增加。表明CaMK Ⅱ通过其自身磷酸化参与了HPM辐射后NMDA受体信号通路的级联反应事件。有关CaMK Ⅱ参与突触可塑性变化及NMDA受体信号通路级联反应事件的机制,目前尚未完全阐明。根据本研究发现结合国内外文献,认为可能与以下因素有关:NMDA受体有CaMK Ⅱ入坞位点,在海马,Ca2+浓度升高通过NMDA型谷氨酸受体内流导致CaMK Ⅱ自身磷酸化激活和突触后聚集,导致LTP,一旦此过程发生,激酶便保持活性,甚至在Ca2+浓度返回基线水平时,激酶也具有活性,参与诸如记忆形成等大脑功能的改变[5, 10]。故认为CaMK Ⅱ的磷酸化参与HPM导致的海马组织损伤及突触可塑性等变化。
根据本实验组以往研究HPM可引起氨基酸类神经递质和NMDA受体的改变,结合文献,推测在HPM致突触可塑性变化及学习记忆功能障碍机制中,可能主要是通过谷氨酸及甘氨酸激活NMDA受体,Ca2+内流增加,细胞内Ca2+浓度增加诱导CaMK Ⅱ的磷酸化,进而影响NMDAR介导的级联反应事件的发生过程,导致突触可塑性变化及学习记忆功能障碍。
| [1] | Banik S, Bandyopadhyay S, Ganguly S. Bioeffects of microwave a brief review[J]. Bioresour Technol, 2003, 87 : 155–159. DOI:10.1016/S0960-8524(02)00169-4 |
| [2] | Pakhomov AG, Doyle J, Stuck BE, et al. Effects of high power microwave pulses on synaptictransmission and long term potentiation in hippocampus[J]. Bioelectromagnetics, 2003, 24 : 174–181. DOI:10.1002/bem.10079 |
| [3] | Castellano C, Cestari V, Ciamei A. NMDA receptors and learning and memory processes[J]. Curt Drug Targets, 2001, 2 : 273–283. DOI:10.2174/1389450013348515 |
| [4] | Gnegy ME. Ca2+/calmodulin signaling in NMDA induced synaptic plasticity[J]. Crit RevNeurobiol, 2000, 14 : 91–129. |
| [5] | Leonard AS, Bayer KU, Merrill MA, et al. Regulation of calcium/calmodulin dependent protein kinase Ⅱ docking to N m ethyl D aspartate receptors by calcium/calmodulin andalpha actinin[J]. J Biol Chem, 2002, 277 : 48441–48448. DOI:10.1074/jbc.M205164200 |
| [6] | Ahmed T, Frey JU. Plasticity specific phosphorylation of CaMK Ⅱ,MAP kinases and CREB during late LTP in rat hippocampal slices in vitro[J]. Neuropharmacology, 2005, 49 : 477–492. DOI:10.1016/j.neuropharm.2005.04.018 |
| [7] | 章静波, 张世馥, 黄东阳. 组织和细胞培养技术[M]. 北京: 人民卫生出版社, 2002: 102-105. |
| [8] | 蔡文琴, 王伯沄. 实用免疫细胞化学与核酸分了杂交技术[M]. 成都: 四川科学技术出版社, 1994: 8-20. |
| [9] | Moyano S, Frechilla D, Del Rio J. NMDA receptor subunit and CaMK Ⅱ changes in rat hippocampus induced by acute MDMA treatment:a mechanism for learning impairment[J]. Psychopharmacology(Berl), 2004, 73 : 337–345. |
| [10] | Suenaga T, Morinobu S, Kawano K, et al. Influence of immobilization stress on the levels of CaMK Ⅱ and phospho CaMKⅡ in the rat hippocampus[J]. Int J Neuropsychopharmacol, 2004, 7 : 299–309. DOI:10.1017/S1461145704004304 |
2008, Vol. 24
