中国公共卫生  2007, Vol. 23 Issue (4): 450-452   PDF    
HIV-1重组毒株gag区快速基因分型方法
罗皓1,2, 梁浩1, 邵一鸣3, 张志勇1, 邢辉3, 刘伟4, 卢灿健5, 沈菁1     
1. 广西医科大学艾滋病研究中心, 南宁 530021;
2. 广东医学院预防医学教研室;
3. 中国疾病顶防控制中心性病艾滋病预防与控制中心病毒免疫室;
4. 广西壮族自治区疾病预防控制中心;
5. 广西横县卫生防疫站
摘要: 目的 建立一种简便、快速基因分型方法, 对广西人类免疫缺陷病毒(HIV-1)重组毒株gag基因区进行亚型鉴定。 方法 从HIV阳性样本中提取核酸, 使用HIV-1 M组通用引物对gag区进行第1轮扩增, 第2轮使用分别检测C亚型和CRF01-AE重组型的二套特异性引物放入同一反应管中进行扩增, 根据不同亚型扩增的目的带位置不同判断亚型。另外设计了一套引物, 专门用于检测B'/C重组毒株。扩增出的所有样本均进行基因测序和系统树分析以验证结果。 结果 54份样本中, 经基因测序和系统树分析证实CRF08-BC样本4份(7.41%), CRF01-AE样本46份(85.18%), 4份(7.41)无法确定亚型。经亚型特异性引物PCR法检测出4份(100%) B'/C重组毒株, 45份(97.83%) CRF01-AE重组毒株, 灵敏度为98%, 特异性为100%。2种方法检测结果经差异性检验显示, P > 0.05, 差异无统计学意义, 结果一致性高达98.15%。与基因分析结果吻合。重复实验显示, B'/C的平均重复性为100%(20/20), CRF01-AE为98.3%(59/60)。 结论 该方法具有简便、快速, 高度灵敏度和特异性的特点, 可直接对广西HIV-1重组毒株CRFO 1-AE gag基因区进行分型。
关键词人类免疫缺陷病毒1型     基因型     聚合酶链反应    
Rapid identification for gag region of circulating recombinant form of humanimmunodeficiency virus type 1
LUO Hao, LIANG Hao, SHAO Yi-ming, et al     
AIDS Research Center of Guangxi Medical Univeristy, Nanning 530021, China
Abstract: Objective To develope a simple and rapid subtype-screening assay for the gagregion of the circulating recombinant form (CRF) of human immunodeficiency virus type 1(HIV-1) in Guangxi. Methods Proviral DNA from HIV-positive samples were extracted and subjected to the first round PCR with universal primers for the gag region that can detect HIV-1M group isolates.In the second round PCR, two pairs of subtype-specific primers that were designed to detect subtype C and CRF01-AE respectively were added into one tube.The PCR products of different subtypes could be distinguished in agarose-gel electrophoresis.Another pair of subtype-specific primers exclusively detecting the the prevalent recombinantstrains CRF07-BC and CRF08-BC was designed and used.Additionally, all of these samples were sequenced and analyzed phylogenetically. Results DNA sequencing and phylogenetic analysis of the gag region of the 54 samples showed that 4 samples (7.41%) were infected with CRF08-BC, 46(85.18%) with CRF01-AE and 4(7.41%) remained unclassifiable.Detection of the subtype-specific primer sets revealed that 4 were B'/C (100%), and 45 were CRF01-AE (97.83%), with an adequate sensitivity (98%) and a high specificity (100%).Non-specific bands occasionally appeared but did not interfere with interpretation of the results.The phylogenetic analysis was consistent with subtype-specific primer sets and the consistent rate was 98.15%.The average reproducibility was 100% for B'/C samples and 98.3% for CRF01AE samples. Conclusion A simple, rapid and low cost assay is developed for subtype-screening of CRFO1-AE in Guangxi.For the B'/C strains in Guangxi, it needs to be verified further by increasing samples.
Key words: human immunodeficiency virus type 1(HIV-1)     genetic subtype     polymerase chain reaction (PCR)    

人类免疫缺陷病毒-1 (HIV -1)高度变异, 不同亚型毒株其生物学特性及; 分子流行病学特征均有所不同1, 若能快速、准确地对HIV进行基因分型不仅有助于了解HIV -1转播规律, 而且可为阐明HIV基因型与生物表型关系、药物耐药性等研究提供资料。近年来, 我国学者2建立了一种多重巢式PCR法对我国HIV -1主要流行株进行鉴定亚型。然而, 由于HIV -1的基因变异度极高, 在传播过程中可产生许多具有相对独立的基因序列型别, 使得不同地区各亚型间具有其自身的特异性。广西壮族自治区为国内HIV感染的高发区, 大部分感染发生在经济尚不发达地区的人群中。因此, 建立广西HIV -1主要流行株快速基因分型方法十分必要。目前, 广西的优势流行株为CRF01 -AE和CRF08 -BC重组毒株3, 4。为此, 本研究针对这2种重组毒株gag基因区建立了一种亚型特异性引物PCR法的快速基因分型法。

1 材料与方法 1.1 样本来源

从广西HIV -I主要流行区采集54份样本, 经ELISA初筛和免疫蛋白印迹(WB)确认为HIV阳性样本。

1.2 核酸提取

采用QIAamp Bloodes Mini Kit试剂盒(德国QiaGen公司)从每位感染者的抗凝全血中提取细胞DNA, 并冻存于-80 ℃冰柜备用。

1.3 HIV -1亚型特异性引物的设计

亚型特异性引物的设计是整个方法建立的关键。设计的基本原则:设计的引物位点必须在各个亚型间高度特异, 而在同一种亚型内部高度保守。在Primer5.0软件的帮助下设计出gag区的亚型特异性引物(表 1)。

表 1 gag区PCR扩增使用的引物

1.4 HIV -1 gag基因区的扩增

用nested -PCR对HIV -1gag基因区进行扩增, 第1轮使用引物GagF2/ Gage2, 模板15μl, 反应条件: 94 ℃ 5 min, 52 ℃ 1 min, 72 ℃ 2 min 30 s, 1个循环; 94 ℃ 30 s, 52 ℃ 30 s, 72 ℃ 1 min 30 s, 30个循环; 72 ℃ 10 min。第2轮模板5μl, 使用分别检测C亚型和CRF01 -AE重组型的2套亚型特异性引物(Cag -c1/ Cag -c2, Cag -ae1/ Cag -ae2), 争套引物放入同一反应管中, 为减少非特异性反应, 使用热启动和降落PCR (TD -PCR)技术5, 94 ℃ 5 min, 52 ℃ 1 min, 72 ℃ 2 min 30 s, 1个循环; 94 ℃30 s, 52 ℃30 s, 72 ℃1 min, 3个循环; 94 ℃30 s, 51 ℃ 30 s, 72 ℃ 1 min, 3个循环; 94 ℃ 30 s, 50 ℃ 30 s, 72 ℃ 1 min, 3个循环; 94 ℃30 s, 49 ℃30 s, 72 ℃1 min, 3个循环; 94 ℃30 s, 48 ℃ 30 s, 72 ℃ 1 min, 25个循环, 72 ℃ 10 min。如果特异性引物PCR扩增出的目的条带判断为C亚型, 则用专门用于检测B’/ C重组毒株(包括CRF07 -BC和CRF08 -BC)的亚型特异性引物Cgag -c1/ Cgag -bc为内侧引物再进行PCR扩增, 以判断是否为重组形式。反应条件: 94 ℃ 2 min, 48 ℃ 1 min, 72 ℃ 2 min, 1个循环; 94 ℃ 30 s, 48 ℃ 30 s, 72 ℃ 1 min, 35个循环; 72 ℃ 10 min。同时使用引物306/ Cn -gag扩增所有样本并进行基因测序, 用于系统树分析及亚型鉴定以验证特异性引物分型结果是否正确。反应条件:94 ℃ 2 min, 50 ℃ 50 s, 72 ℃ 1 min, 1个循环; 94 ℃ 30 s, 50 ℃ 30 s, 72 ℃ 1 min, 35个循环; 72 ℃ 10 min。第1轮和第2轮PCR反应体系均为50μl, dNT/P浓度为200μmol/ L, Taq酶为2.5 U, 引物浓度为0.4μmol/ L, MgCl2浓度为1.5 mmol/ L。

1.5 PCR产物检测

取5μl第2轮PCR扩增产物在2%琼脂糖凝胶中电泳, 溴化乙锭(EB)染色检测, 紫外摄影拍照, 根据Markers分子量大小来判定结果。C亚型片段190 bp; CRF01 -AE片段881 bp; B’/ C片段1 079 bp。

1.6 序列测定

对于全部经引物306/ Cn -gag扩增的样本, 经切胶, 纯化后, 以306为测序引物, 提纯的PCR产物为模板, 采用DNA测序试剂盒(美国ABI公司), 在PTC-220型多通道PCR仪(美国MJ公司)上进行测序反应。反应产物经提纯后, 采用310型全自动毛细管DNA测序仪(美国ABI公司)进行序列测定和分析。

1.7 序列分析

(美国Los Alamos国家实验室HIV核酸序列库中提供)基因分型工具BLAST程序进行基因型鉴定; 用Clustal X进行排序和MEGA version 2.1软件进行分析。亚型分析使用的各个亚型参考序列来自美国Los Alamos HIV基因数据库。

1.8 检测该方法的重复性

在CRF01 -AE样本中随机选取12份, CRF08 -BC 4份, 共16份样本使用上述方法重复5次。

2 结果 2.1 样本基因测序和系统树分析

54份阳性样本中通过引物306/ Cn -gag扩增最终获得50份样本的基因序列, 经BLAST程序鉴定出4份样本gxmu0402, gxmu0416、gx2 mu0418和gxmu0419为CRF08 -BC重组毒株, 余下46份为CRF01 -AE重组毒株。将50份基因序列与国际各亚型标准株的基因序列进行系统树分析显示。4份CRF08 -BC样本与CRF08 -BC198CN006和CRF08 -BC197CNGX7f靠得很近, 而46份CRF01 -AE中, 有44份与CRF01 -AE197CNGX2f聚成一簇, 另外2份样本gxmu0432和gx2 mu0439与CRF01 -AE193J PNH 1和CRF01 -AE93TH057十分接近。

2.2 亚型特异性引物PCR扩增

部分样本经亚型特异性引物PCR扩增后的电泳结果见图 1图 2。根据不同亚型扩增出的目的带位点不同, 判断出亚型结果。54份样本中, 采用特异性引物共扩增出49份样本, 其中C亚型4份, CRF01 -AE重组毒株45份(97.83%, 45/ 46)。进一步使用B’/ C重组特异性引物扩增C亚型特异性引物鉴定出来的4份样本, 发现这4分样本均为B’/ C重组毒株(100%, 4/ 4)。以基因测序法为金标准, 可知亚型特异性引物PCR法的灵敏度为98%, 特异性为100%。

M:DNA 分子量;1 :H2O ;2 :阴性对照;3 :gxmu0433 ; 4 :gxmu0440 ;5 :gxmu0451 ;6 :gxmu0462 图 1 部分CRF01 -AE样本琼脂糖电泳结果

M:DNA 分子量;1 :H2O ;2 :阴性对照; 3 :gxmu0418 ;4 :gxmu0419 图 2 B’/ C样本琼脂糖电泳结果

2.3 亚型特异性引物PCR法的重复性

重复实验采用4份CRF08 -BC样本和12份CRF01 -AE随机样本进行5次重复。结果显示, CRF08 -BC重组毒株平均重复性为100% (20/ 20), 而CRF01 -AE在5次重复中有1次出现1份样本检测不出, 其平均重复性为98.3%(59/ 60)。

2.4 基因测序法与亚型特异性引物PCR法比较

54份己确认的阳性样本, 基因测序法检测并正确分型的样本是50份, 检出率为92.60%, 特异性引物PCR法为49份, 检出率为90.74%。2种方法检测结果经差异性检验显示, χ2=0, P > 0.05, 差异无统计学意义, 结果一致性高达98.15%。

3 讨论

本研究结果表明, 亚型特异性引物PCR方法对于亚型的鉴定结果与基因测序、系统树分析得到的结果是吻合的, 该方法的特异性达100%。用亚型特异性引物扩增样本时, 有时一会出现非特异性扩增条带, 干扰实验结果。非特异性条带位置一般不在特异性位置。为防止误判, 可以通过跑厚胶并且延长电泳时间, 使目的条带与非特异性条带充分分开。通常在紫外灯下, 非特异性条带要比目的条带弱。出现非特异性扩增条带通常有如下的原因: (1)引物与模板错配扩增产生, 引物与模板亚型相符, 不仅能在特异性位点上与模板结合, 亦能在远离特异性位点的地方与模板结合, 这种情况错配通常靠近引物5′端的位置, 电泳时会出现两条带; (2)引物之间形成的引物二聚体, 一般出现在80 bp左右的位置, 通过长时间电泳可使此条带消失; (3)某一亚型的特异性引物与另一亚型的模板错配扩增产生, 因2套引物放入同一反应管中, 所以可能出现此情况, 为了避免此情况发生, 因此, 在设计引物时使引物在3′端与别亚型的模板至少有2个碱基产生错配。

用本研究所建立起的方法对54份样本的gag基因区进行检测, 发现有些样本在1 200 bp左右的位置会出现一条非特异性扩增, 因第1轮PCR扩增的条带位置在1 242 bp, 因此怀疑此非特异性扩增条带为第1轮PCR扩增出的目的带, 将第1轮PCR产物与用亚型特异性引物扩增出的第2轮产物同时进行电泳, 证实了这一推测。为了减少此情况的发生, 可减少第1轮反应的模板量, 同时在加入反应体系、模板和酶后尽量减少室温放置时间或在冰盒上操作。

本实验结果表明, 亚型特异性引物PCR法, 灵敏度为98%, 特异性为100%, 结果显示, 其灵敏度和特异性均较好。重复性实验显示, B’/ C亚型的平均重复性为100%, CRF01 -AE重组毒株为98.3%, 说明一该方法在实际中是可行的。但由于CRF08 -BC样本例数不多, 因此, 本研究所建立起的方法对于HIV -1 B’/ C重组毒株分型的准确性有待扩大样本量进一步证实。

参考文献
[1] 杰伊A, 利维. 艾滋病病毒与艾滋病的发病机制[J]. 2版.北京:科学出版社, 2000 : 126–132.
[2] Wei M, Guang Q, Liang H, et al. Simple subtyping assay for human immunodeficiency virus type 1 subtypes B, C, CRF01-AE, CRF07-BC, and CRF08-BC[J]. J Clin Microbiol, 2004, 42 : 4261–4267. DOI:10.1128/JCM.42.9.4261-4267.2004
[3] Yang R, Kusagawa S, Zhang C, et al. Identification and characteri2 zation of a new class of human immunodeficiency virus type 1 re2 combinants comprised of two circulating recombinant forms, CRF07-BC and CRF08-BC, in China[J]. J Virol, 2003, 77 : 685–695. DOI:10.1128/JVI.77.1.685-695.2003
[4] Piyasirisilp S, McCutchan FE, Carr J K, et al. A recent outbreak of human immunodeficiency virus type 1 infection is Southern China was initiated by two highly homogeneous, geographically separated strains, circulating recombinant form AE and a novel BC recombi2 nant[J]. J Virol, 2000, 74 : 11286–11295. DOI:10.1128/JVI.74.23.11286-11295.2000
[5] 迪芬巴赫CW, 德维克斯勒GS著, 黄培堂, 俞炜源, 陈添弥, 等译. PCR技术实验指南[J].北京:科学出版社, 1998 :33-40.