2. 沈阳出入境检验检疫局
苏云金芽孢杆菌(Bacillus thuringiensis, Bt)与蜡状芽孢杆菌(Bacillus cereus, Bc)同属于蜡状芽孢杆菌菌群,为自然界中广泛分布的革兰阳性菌〔1〕。其中Bt在其休眠期可形成对昆虫有毒性的伴胞晶体。因此,被作为生物杀虫剂广泛应用于农业及卫生害虫的生物防治;Bc则是人畜条件致病菌,可导致人食物中毒和感染,引起呕吐和腹泻〔2〕。研究表明,在自然环境中,两者染色体体外遗传物质可以出现高度重组〔3〕,在DNA水平也具有较高的同源性,只有个别碱基有差异〔4〕。由于Bt与Bc的相似性,许多细菌分类学家认为Bt与Bc应为同一个种〔5〕。Bt和Bc间的同源性关系,使Bt安全性问题越来越受到人们重视。因此,为研究两者的亲缘关系,对Bt的鉴定、Bt应用的安全性评价,以及进一步提高Bt杀虫效力、降低其致病风险,本文利用肠杆菌基因间重复一致序列(ERIC)-PCR技术〔6〕对Bt和Bc全基因组DNA进行扩增,对获得的Bt和Bc基因组DNA指纹图谱进行分析,探讨Bt和Bc起源进化关系,同时筛裑⒖寺×薆t基因组DNA扩增片段,对应用ERIC-PCR技术鉴别、鉴定Bt和Bc进行可行性探讨。结果报告如下。
1 材料与方法 1.1 材料 1.1.1 菌株Bt 6株(菌株号为CGMCC 1.1749、CGMCC 1.1754、CGMCC 1.294、CGMCC 1.905、CGMCC 1.989、CGMCC 1.1014),Bc标准株1株(菌株号为CGMCC 1.126),大肠埃希菌、枯草芽孢杆菌、金黄色葡萄球菌等对照菌株各1株(菌株号分别为CGMCC 1.90、CGMCC 1.933和CGMCC 1.89)〔购于中国普通微生物菌种保藏中心(CGMCC)〕,Bc分离株2株为沈阳出入境检验检疫局分离, 并经国标生化鉴定。
1.1.2 PCR引物及试剂(1) ERIC引物:由大连TaKaRa生物工程有限公司合成,引物序列分别为:PrimerⅠ:5′-ATGTAAGCTCCTGGGGATTCAC-3′,PrimerⅡ:5′-AAGTAAGTGACTGGGGTGAGCG-3′;(2)试剂:Ex-Taq酶、IPTG、X-gal(大连TaKaRa生物工程有限公司);pGEM-T vector连接转化试剂盒(pGEM-T vectorSystem Ⅱ)及JM109高效率感受态细胞(美国Promega公司);放射性同位素[α-32P]-dCTP和随机引物DNA标记试剂盒(Random Primer DNA Labeling System,英国Biolabs公司);尼龙膜及3MM滤纸(英国Whatman公司);其他试剂为本实验室自配,均为分析纯。
1.2 方法 1.2.1 菌株培养及其基因组DNA的提取斜面活化的菌株在LB培养基中30℃摇床培养过液(200r/min), 离心收集2ml培养的菌体(4000r/min, 10min, 20℃), 采用实验室常规酚/氯仿法提取各菌株基因组DNA。所提取DNA经Beckman DU~640检测,吸光度A260/A280值在1.8~1.9之间,纯度符合PCR扩增条件。
1.2.2 ERIC-PCR反应条件及结果鉴定(1)反应体系组成和反应条件:依据文献方法〔7〕。PCR产物进行1.5%琼脂糖凝胶电泳(U=3V/cm;T=100min)。DNA标准分子量为DL2000,PCR产物经溴化乙锭(EB)染色后在凝胶成像系统上照相。
1.2.3 PCR产物回收与克隆将上述扩增产物利用1.5%琼脂糖凝胶电泳分离。选取重复性好的Bt基因组DNA扩增片段,使用DNA凝胶回收试剂盒进行回收、纯化。纯化产物连于pGEM-T载体,转入JM109感受态大肠埃希菌。连接反应、转化操作以及克隆子的鉴定按照常规方法进行;阳性克隆子用NaOH/SDS碱裂解法制备质粒DNA。
1.2.4 斑点杂交按照随机引物DNA标记试剂盒(Random Primer DNA Labeling System)说明标记回收产物,以标记产物为探针,分别与供试菌株基因组DNA进行杂交。
1.2.5 引物设计及PCR验证发生特异性杂交反应的克隆片段由大连TaKaRa生物工程有限公司进行测序。利用Primer Premier 5.0软件〔8〕, 根据特异克隆片段序列信息设计引物,序列分别为:BthⅠ:5′-CGAGCAGTAGGCGAACCATTG-3′BthⅡ:5′-TGGCATGGGCTTTCGGATATT-3′。引物对应的扩增产物长度为363bp;PCR反应条件:94℃预变性2min;94℃30s,55℃30s,72℃30s,共30循环;72℃延伸5min。体系同ERICPCR。以6株Bt及其他对照菌株的染色体DNA作为模板,进行PCR反应。
2 结果 2.1 ERIC-PCR图谱(图 1)
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1:CGMCC 1.1749;2:CGMCC 1.1754;3:CGMCC 1.2944:CGMCC 1.905;5:CGMCC 1.989;6:CGMCC 1.18467:CGMCC 1.126;8, 9:Bc分离株B:negative control-no DNAM:DL2000 图 1 Bt、Bc基因组DNA ERIC-PCR结果指纹图谱 |
6株苏云金芽孢杆菌和3株腊状芽孢杆菌的基因组DNA经ERIC-PCR扩增,均可产生清晰的DNA指纹图谱,扩增片段范围100~2 500bp,各菌株扩增图谱的多态性程度不同。Bt基因组DNA指纹图谱较一致,由3条主带构成,所有供试Bt菌株均有1条250bp左右的扩增片段,而蜡状芽孢杆菌间DNA指纹图谱变异较大。另外,Bt和Bc均可扩增得到600bp左右的共有片段。
2.2 斑点杂交(图 2)
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1~6:Bt菌株;7, 8, 9:Bc菌株;10:枯草芽孢杆菌;11:大肠埃希菌;12:金黄色葡萄球菌 图 2 500bp探针对各菌株杂交放射性自显影1.5d照片 |
纯化、克隆指纹图谱中稳定出现的Bt DNA扩增片段,经DU-640测定浓度约为90μg/L,以其为探针对固定于膜上的供试菌株基因组DNA进行斑点杂交。结果显示,以500bp片段为探针,与苏云金芽孢杆菌杂交结果为阳性,枯草芽孢杆菌及属外的各菌株杂交结果为阴性。
2.3 PCR验证(图 3)
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1~6:Bt菌株;7, 8:Bc菌株;9:大肠埃希菌 图 3 引物BthⅠ和BthⅡ对Bt菌及对照菌DNA的扩增结果 |
根据特异克隆片段序列设计的BthⅠ和BthⅡ引物对,可以从Bt菌的基因组DNA中扩增出约360bp的片段,符合预期结果;而所有对照菌株均没有扩增条带,表明此特异片段来源于Bt菌基因组DNA。
3 讨论根据本研究得到的Bt指纹图谱的保守性和Bc指纹图谱的变异性可以推测出,Bt在进化过程中出现较晚,这与Carlson等的Bt可能是获得携有cry基因质粒的Bc变种的观点相符〔9〕。从本实验的扩增图谱中还可看出, Bt亚种tolworthi HD125与其他Bt菌株的主带型一致,这一结果与Carlson和Kolsto关于肠毒素基因阴性Bt菌株起源的观点一致,即Bc获得cry基因后,进化为肠毒素基因阳性Bt菌株,然后失去该基因进化为肠毒素基因阴性Bt菌株〔10〕。另外,Bt与Bc均可扩增产生600bp左右的共有DNA片段,体现了二者在遗传上的高度同源性。因此,ERIC指纹图谱可以正确反映出Bt与Bc的亲缘关系。由于Bt和Bc间的同源性关系,Bt安全性问题越来越受到人们重视〔11, 12〕。本研究筛选到的500bp片段可作为苏云金芽孢杆菌的鉴定用探针。
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2007, Vol. 23
