耐辐射菌Deinococcus radiodurans是一种微小的球菌, 由于其对电离辐射和许多化学诱变剂都具有极强的抗性[1], 近年来倍受放射生物学家的关注, 且普遍认为该菌的辐射抗性缘自于其有超常的DNA修复系统[2]。尤在含DNA修复酶类等蛋白质中, 其中能与DNA结合者称之为DNA结合蛋白(DNA-Binding Protein, DBP)表现为甚。以往的研究已表明DBP含量与DNA的损伤和修复的功能密切相关, 但关于耐辐射菌的DBP及其在耐辐射分子学组成特性等的研究目前报道甚少。本文拟在DBP的组份与辐射抗性的相关性方面作一初步探讨。
1 材料和方法 1.1 细菌株及培养条件耐辐射菌(Deinococcus radiocluras)为野生型的MR1、KR1和SarK三种; 大肠杆菌(E.coli)为JM109, 嗜热菌(T.thermophilius)为YT1; 枯草杆菌(B.Subtilis)为RM125。TGY培养基: 0.5%胰蛋白胨(Difco), 0.1%葡萄糖, 0.3%酵母提取物(Difco)。LB-L培养基: 1 %胰蛋白胨, 0.5%酵母提取物, 0.5 %NaCl。TM培养基: 0.4%胰蛋白胨, 0.2%酵母提取物, 0.1NaCl。耐辐射菌, 嗜热菌分别生长在TGY、TM培养基中, 培养温度分别为30 ℃和65 ℃。大肠杆菌和枯草杆菌生长在LB-1培养基中, 培养温度为37℃。
1.2 菌体蛋白粗提物的制备培养一定时间后的各种细菌, 离心收获、磷酸盐缓冲液(PBs)洗两次, 4 ℃下经超声破碎, 低温离心(1500r·min-1) 30min, 收集上清液备用。
1.3 染色体DNA的分离及地高辛(DIG)标记DNA探针的制备按Saito等[3]方法分离纯化耐辐射菌DOVA。纯化后的DNA经内切酶Sau3A1(Takara.Jp)部分消化, 继之用DIG标记试剂盒(Takara), 按其说明书陈述步骤制备DIG标记的DNA探针。
1.4 South-Western印迹法检测DBP细菌的蛋白提取物经SDS-PAGE后, 转印到PVdF(聚偏二氟乙烯)膜上(4℃, 150mA, 90min), 按照South-Western印迹法检测试剂盒(Takara)的使用说明, 进行DBP的检测。其简要过程为:结合, 缓冲液洗膜, DIG-DNA探针与膜温育, 标记碱性磷酸酶(AKP)的抗DIGDNA结合, AKP与其底物NBT进行显色反应, 最后对信号加以检测。
1.5 氨基酸(AA)序列分析采用Edman' s降解法, 取其PTH-AA衍生物在N-端AA自动测序仪(470A型, ABI公司)上进行分析。将上述AA编码序列输入NCBI数据库, 采用BLAST[4]和FASTA[5]软件, 对已知蛋白质的AA序列与已知数据库作同源性分析。
2 结果 2.1 野生型耐辐射菌、嗜热菌、大肠杆菌及枯草杆菌等四种菌株DBP的检测取培养48h后的细菌培养物, 经South-Western印迹法检测所得DBP结果见图 1。
由图 1显示出三种野生型的耐辐射菌(MR1, KR1, SarK)均可检测到八种DBP, 它们的分子量分别为: 122, 93, 33, 29, 16, 15, 14和12kDa。而在嗜热菌、大肠杆菌中均没有检测到相应的DBP, 枯草杆菌在33kDa处可检测到一个弱信号。
2.2 93kDa和33kDa两种DBP的N-末端氨基酸序列分析取经TGy培养48~72h后的耐辐射菌KR1, 制备蛋白提取物, 93kDa和33kDa蛋白区带各取4~6个平行样, 作N-末端氨基酸序列分析, 其结果如下:
93kDa: MLKEDAARKTYVSPAVWEGCGREKFPVLNS
33kDa: MWPFGKSTADRVKDAFKANPVLAPLGGEVQ—
在已知的数据库中, 均未找到各自的同源序列, 表明这两种DBP有可能是新的蛋白质。
2.3 不同培养基和培养时间对耐辐射菌DBP表达水平的影响野生型耐辐射菌KR1分别培养在两种培养基(TGY, LB-1)中, 并在不同时间(8, 13, 18, 24和48h后)收获细胞, 经检测, DBP的实验结果(图 2)表明, 不同培养基及不同培养时间对两种DBP(93kDa, 33kDa)的表达水平有明显影响。就野生型KR1的93kDa DBP在低于24h内的表达水平而言, 选用LB-L培养基明显高于其在TGy培养基中的表达水平, 它们均随着时间的延长而增高。应指出的33kDa DBP需待48h培养后仅仅在TGY培养基中表达, 其水平也随着培养时间延长而增高。
耐辐射菌D.radiodurans能够抗较大剂量的辐射及其它化学损伤剂的毒害, 一般认为这种细菌的耐辐射性与其本身具有高效而准确的DNA修复系统所决定。据报道[6]迄今为止, 只有四种与辐射相关的蛋白基因被克隆, 即recA, polA, uvrA和pprA。前三种基因产物分别与大肠杆菌的RecA蛋白, DNA聚合酶工和Uvr蛋白具有同源性, 而pprA基因是一个新分离出来的能促进DNA修复的基因, 尚未发现与其产物具有同源性的蛋白质。Kitayama等研究[7]指出, D·radiodurans的耐辐射性与其核内DNA的特异结构与组成有关。在耐辐射菌中DNA的G+C的含量约占70 %, 并有部分蛋白参与DNA分子构象的稳定性, 使DNA较易被修复, 而这些蛋白大多呈DBP形式存在。大肠杆菌中的DBPⅡ是研究得最多的一种。本文从三种野生型D.radiodurans中检测到八种DBP, 并和其他的三种细菌对照比较, 发现这些DBP似平均为耐辐射菌所特有, 特别是93kDa, 和33kDa这两种新蛋白, 推测其在耐辐射菌的辐射抗性中占有重要地位。由于其N-末端AA序列已被阐明, 则可以通过制备寡核苷酸探针, 并从D.radiodurans的DNA基因库中筛选出编写该DBP基因的DNA片段, 进而加以克隆, 这样便可通过辐射所致离体定向诱变法来进一步探讨DBP的放射损伤及防护的作用及其机制。
研究已表明[8], 耐辐射菌D.radiodurans在正常的培养基中(TGY, 30℃), 在指数生长期, 90 %呈二联体, 稳定生长期绝大多数呈四迭体形态。至于LB-L培养基对该耐辐射菌是“过营养”, 即全优条件, 细菌的倍增时间缩短, 形态且有改变, 比如细胞体积增大, 多联体细胞的比例增高等。但就辐射的耐受性而言, 生长在LB-L全优培养基中却低于生长在TGY次优培养基中。除形态上造成的差异外, 本研究已清楚表明DBP表达水平因不同培养基而异, 例如93kDa DBP在两者培基中均表达, 而33kDa DBP只是在次优条件TGy中表达, 所以, 耐辐射菌具有的严谨反应的本能也是造成辐射抗性较高的另一种主要原因。
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