柴胡为伞形科植物柴胡(Bupleurum chinense DC.)或狭叶柴胡(Bupleurum scorzonerifolium Wild.)的干燥根, 二者分别习称为“北柴胡”和“南柴胡”[1]。柴胡味苦, 微寒, 入肝、胆经, 具有和解退热、疏肝解郁、升举阳气之功效[2]。柴胡中含有多种活性成分, 包括皂苷、挥发油、黄酮、多糖等几大类[3−6], 其中, 皂苷类成分是柴胡的主要活性成分, 具有解热、抗炎、抗肿瘤、保肝、免疫调节等药理作用[7]。
中药炮制的目的有多方面, 主要表现为以下几点:提高净度, 确保质量, 增效、减毒, 改变作用趋向, 缓和性能, 便于调剂和制剂, 便于保存, 便于服用等[8]。柴胡传统的炮制品沿用至今的有生品、醋制品、酒制品和蜜制品, 现代还增加了鳖血制品、麸炒品、酒润麸炒品等, 临床上常用生品和醋制品。目前, 在柴胡炮制方法的研究中, 围绕生品和醋制品的较多, 对其他炮制品的研究则较少, 并且对不同炮制品中化学成分的研究较集中于柴胡皂苷a、d, 指标成分较少, 不足以科学的评价柴胡的炮制方法[9−11]。
随着中药材种植规模的增加, 现今关于北柴胡采收期方面的研究日益增多, 但大部分研究都是针对某一个地区的北柴胡, 对多个主产地的北柴胡采收期并未系统的研究[12−15]。鉴于此, 本文采用HPLC法对北柴胡不同产地、不同采收期和不同炮制品中的柴胡皂苷a、b2、c、d、e、f进行测定, 观察不同产地的北柴胡不同采收期柴胡皂苷的动态积累规律, 并考察不同的炮制方法对北柴胡中柴胡皂苷含量的影响, 为规范北柴胡的最佳采收期和炮制方法提供理论依据, 对有效的利用北柴胡资源及扩大其临床应用范围有着重要意义。
材料与方法 仪器 Shimadzu LC-20A Prominence UFLC XR高效液相色谱仪、Shimadzu AUY120电子天平(日本岛津公司); METTLER TOLEDO电子天平(瑞士梅特勒−托利多公司); TDZ4-WS低速台式离心机(湖南湘仪实验室仪器开发有限公司); KQ-300E型超声波清洗器(昆山市超声仪器有限公司); 电磁炉(广东美的生活电器制造有限公司); 电热鼓风干燥箱(上海一恒科学仪器有限公司); 多功能粉碎机(浙江德清拜杰电器有限公司)。
试剂与样品 柴胡皂苷a (纯度98.4%, 批号: MUST-17050105)、柴胡皂苷b2 (纯度99.5%, 批号: MUST-17032104)、柴胡皂苷c (纯度98.5%, 批号: MUST-17031402)、柴胡皂苷d (纯度98.6%, 批号: MUST-17050106)和柴胡皂苷f (纯度98.6%, 批号: MUST-17031806) (成都曼斯特生物科技有限公司); 柴胡皂苷e (纯度≥98.0%, 批号: CHB170818) (成都克洛玛生物科技有限公司); 乙腈(色谱纯, 美国Sigma公司); 甲醇(色谱纯, 山东禹王和天下新材料有限公司); 氨水(分析纯, 天津市科密欧化学试剂有限公司); 纯净水(杭州娃哈哈集团有限公司)。米醋(山西水塔醋业股份有限公司), 黄酒(浙江塔牌绍兴酒有限公司), 蜂蜜(上海冠生园蜂制品有限公司), 鳖血(中华鳖的新鲜血液), 麦麸(市售)。北柴胡共32批, 在种植后第二年开始采收, 于2017年5月至12月(每月中旬)分别采自四个产地的同一种植基地(辽宁省朝阳市、陕西省宝鸡市、甘肃省陇南市和山西省运城市), 药材在采挖后洗净并烘干。经沈阳药科大学功能食品与葡萄酒学院贾英教授鉴定, 为伞形科植物柴胡(Bupleurum chinense DC.)的干燥根, 其来源见表 1。炮制用药材为辽宁朝阳市二年生成熟北柴胡。
表1(Table 1)
Table 1 The source of all the samples
No. |
Producing area |
Harvest time |
1 |
Liaoning Chaoyang |
2017.5 |
2 |
Liaoning Chaoyang |
2017.6 |
3 |
Liaoning Chaoyang |
2017.7 |
4 |
Liaoning Chaoyang |
2017.8 |
5 |
Liaoning Chaoyang |
2017.9 |
6 |
Liaoning Chaoyang |
2017.10 |
7 |
Liaoning Chaoyang |
2017.11 |
8 |
Liaoning Chaoyang |
2017.12 |
9 |
Shaanxi Baoji |
2017.5 |
10 |
Shaanxi Baoji |
2017.6 |
11 |
Shaanxi Baoji |
2017.7 |
12 |
Shaanxi Baoji |
2017.8 |
13 |
Shaanxi Baoji |
2017.9 |
14 |
Shaanxi Baoji |
2017.10 |
15 |
Shaanxi Baoji |
2017.11 |
16 |
Shaanxi Baoji |
2017.12 |
17 |
Gansu Longnan |
2017.5 |
18 |
Gansu Longnan |
2017.6 |
19 |
Gansu Longnan |
2017.7 |
20 |
Gansu Longnan |
2017.8 |
21 |
Gansu Longnan |
2017.9 |
22 |
Gansu Longnan |
2017.10 |
23 |
Gansu Longnan |
2017.11 |
24 |
Gansu Longnan |
2017.12 |
25 |
Shanxi Yuncheng |
2017.5 |
26 |
Shanxi Yuncheng |
2017.6 |
27 |
Shanxi Yuncheng |
2017.7 |
28 |
Shanxi Yuncheng |
2017.8 |
29 |
Shanxi Yuncheng |
2017.9 |
30 |
Shanxi Yuncheng |
2017.10 |
31 |
Shanxi Yuncheng |
2017.11 |
32 |
Shanxi Yuncheng |
2017.12 |
|
Table 1 The source of all the samples
|
HPLC色谱条件 色谱柱: Agela Venusil MP C18 (4.6 mm × 250 mm, 5 μm); 流动相: A (水) − B (乙腈), 梯度洗脱, 程序为: 0~10 min, 34% B; 10~42 min, 34%~50% B, 流速: 1.0 mL·min−1, 柱温: 30 ℃, 检测波长: 210 nm和254 nm, 进样量: 10 μL。
北柴胡不同炮制品的制备
生柴胡[16, 17] 取北柴胡原药材, 除去杂质与残茎, 洗净泥沙, 加水润透后切段(1 cm左右), 烘干, 即得。
炒柴胡[16, 18] 取生柴胡置炒锅内, 用文火炒制8 min, 出锅后放凉, 置烘箱40 ℃烘6 h, 即得。
醋柴胡[16, 17] 醋拌品, 100:20 (药材:辅料, 即每100 g生柴胡加入20 g炮制辅料)加入米醋, 拌匀, 室温闷透(闷润4 h), 置烘箱40 ℃烘6 h, 即得。醋炙品, 100:20加入米醋, 拌匀, 室温闷透(闷润4 h), 置锅内文火炒制8 min, 出锅后放凉, 置烘箱40 ℃烘6 h, 即得。
酒柴胡[16, 17] 酒拌品、酒炙品的炮制方法同醋拌品与醋炙品的制备方法(100:20加入黄酒)。
蜜柴胡[16, 19] 蜜拌品、蜜炙品的炮制方法同醋拌品与醋炙品的制备方法(100:20加入炼蜜, 炼蜜用1/2的沸水稀释)。
麸炒柴胡[16, 20] 麸炒品, 取麦麸(100:20加入麦麸)置预热的锅中, 翻炒麦麸, 起烟后, 加入生柴胡, 文火炒制8 min, 出锅后筛去麦麸, 放凉, 置烘箱40 ℃烘6 h, 即得。酒润麸炒品[16, 21], 先加入黄酒(100:20)室温闷透, 炮制方法同麸炒品的制备方法。
鳖血柴胡[16, 17]鳖血炙品(100:20加入1:1冷开水稀释的鳖血)与鳖血黄酒炙品(100:20加入1:1黄酒稀释的鳖血)的炮制方法同醋炙品的制备方法。
对照品储备液的制备 分别取柴胡皂苷a、b2、c、d、e和f对照品适量, 精密称定, 加入甲醇溶解制成质量浓度分别为1.760、0.024 90、0.499 0、1.990、0.250 5和0.498 0 mg·mL−l的混合对照品储备液。
供试品溶液的制备 取北柴胡经粉碎(过4号筛)所得的粉末约0.5 g, 精密称定, 置具塞锥形瓶中, 加入含5%氨水的甲醇溶液25 mL, 30 ℃水温超声处理30 min, 滤过, 分别用甲醇10 mL洗涤容器与药渣2次, 合并洗液与滤液后回收溶剂。残渣加甲醇溶解, 转移至10 mL量瓶中, 加甲醇定容, 摇匀后过0.22 μm微孔有机滤膜, 取续滤液, 即得。
系统适用性 分别取混合对照品溶液和供试品溶液, 按“高效液相色谱条件”进样分析, 各色谱峰的拖尾因子均在0.95~1.05之间, 与相邻色谱峰的分离度大于1.5, 柴胡皂苷a、b2、c、d、e和f的理论塔板数均不小于5 000;取混合对照品溶液, 按“高效液相色谱条件”连续进样5次, 各色谱峰峰面积的相对标准偏差不大于2.0%;取对照品溶液适量, 加入甲醇溶液逐步稀释, 以信噪比3:1时对应待测物浓度为检测限, 以信噪比10:1时对应待测物浓度为定量限, 进行测定。配制一系列不同浓度的灵敏度对照溶液, 测定各待测物质的信噪比, 均大于10, 结果表明色谱系统的检测能力良好。
结果 1 HPLC定量方法学考察 1.1 专属性 通过比较空白溶液、对照品溶液和供试品溶液的色谱图考察专属性。结果表明, 供试品溶液中其他成分对待测成分无干扰, 分析方法专属性良好, 色谱图见图 1。
1.2 检测限与定量限 取各对照品溶液适量, 加入甲醇溶液逐步稀释, 以信噪比3:1时对应待测物浓度为检测限(LOD), 以信噪比10:1时对应待测物浓度为定量限(LOQ)进行测定, 结果见表 2。
表2(Table 2)
Table 2 Linearity, LOD and LOQ of six saikosaponins
Analyte |
Regression equation |
r2 |
Linear range/μg·mL−1 |
LOD/μg·mL−1 |
LOQ/μg·mL−1 |
Saikosaponin a |
y = 4.116×103x − 2.844×104 |
0.999 6 |
35.20 − 1 760 |
0.980 |
2.941 |
Saikosaponin b2 |
y = 2.987×104x − 5.032×103 |
0.999 3 |
0.498 0 − 24.90 |
0.142 3 |
0.332 0 |
Saikosaponin c |
y = 3.104×103x − 7.341×103 |
0.999 1 |
9.98 − 499.0 |
0.785 9 |
2.358 |
Saikosaponin d |
y = 4.242×103x − 3.212×104 |
0.999 2 |
39.80 − 1 990 |
1.331 |
3.992 |
Saikosaponin e |
y = 4.559×103x − 5.792×103 |
0.999 5 |
5.010 − 250.5 |
1.354 |
3.711 |
Saikosaponin f |
y = 2.559×103x − 6.893×103 |
0.999 6 |
9.96 − 498.0 |
2.635 |
6.451 |
|
Table 2 Linearity, LOD and LOQ of six saikosaponins
|
1.3 线性与范围 分别精密量取混合对照品储备液0.1、1.0、2.0、3.0和4.0 mL置5 mL量瓶中, 用甲醇稀释至刻度, 摇匀, 与混合对照品储备液同时配置成系列标准溶液。按“高效液相色谱条件”进样测定, 记录色谱峰的峰面积, 以各对照品浓度x (μg·mL−l)为横坐标, 峰面积y为纵坐标, 绘制标准曲线, 进行回归计算, 结果见表 2。
1.4 精密度 重复性 取同一批北柴胡粉末(No.4)各约0.25 g、0.5 g、1.0 g, 精密称定, 按“供试品溶液的制备”项下操作, 制备低、中、高浓度供试品溶液各3份, 按“高效液相色谱条件”进样测定。柴胡皂苷a、b2、c、d、e和f含量的RSD分别为1.58%、1.38%、1.38%、1.61%、1.67%和1.47%, 结果表明方法重复性良好。
中间精密度 连续3天取同一批北柴胡粉末(No.4), 按“供试品溶液的制备”项下操作, 制备供试品溶液各3份, 按“高效液相色谱条件”进样测定。柴胡皂苷a、b2、c、d、e和f含量的RSD分别为1.61%、1.59%、1.61%、1.61%、1.80%和1.18%, 结果表明方法日间精密度良好。取同一批北柴胡粉末(No.4), 由3个不同的分析人员独立按“供试品溶液的制备”项下操作, 平行制备供试品溶液3份, 按“高效液相色谱条件”进样测定。柴胡皂苷a、b2、c、d、e和f含量的RSD分别为1.62%、1.93%、1.32%、1.53%、1.53%和1.52%, 结果表明方法中间精密度良好。
1.5 准确度 取已知含量的北柴胡粉末(No.4) 9份, 各约0.25 g, 精密称定, 分别按已知含量的50%、100%和150% 3个水平加入对照品, 按“供试品溶液的制备”项下操作, 制备供试品溶液, 按“高效液相色谱条件”进样测定, 记录柴胡皂苷a、b2、c、d、e和f的峰面积, 并计算各成分的回收率及RSD, 结果如表 3所示。
表3(Table 3)
Table 3 The results of recovery test
Analyte |
Original /mg |
Added /mg |
Measured /mg |
Recovery /% |
RSD /% |
Saikosaponin a |
3.793 |
1.619 |
5.443 |
101.9 |
1.34 |
|
| 3.238 |
7.123 |
102.9 |
0.59 |
|
| 4.856 |
8.79 |
102.9 |
0.88 |
Saikosaponin b2 |
0.027 45 |
0.018 66 |
0.046 66 |
103.0 |
1.04 |
|
| 0.037 31 |
0.065 56 |
102.1 |
1.04 |
|
| 0.055 97 |
0.084 6 |
102.2 |
0.66 |
Saikosaponin c |
0.977 |
0.498 8 |
1.491 |
103.0 |
0.82 |
|
| 0.998 |
1.979 |
100.5 |
1.06 |
|
| 1.496 |
2.489 |
101.0 |
0.60 |
Saikosaponin d |
4.529 |
2.125 |
6.688 |
101.6 |
1.09 |
|
| 4.250 |
8.91 |
103.1 |
0.70 |
|
| 6.375 |
11.11 |
103.2 |
0.90 |
Saikosaponin e |
0.406 7 |
0.175 0 |
0.580 7 |
99.4 |
1.57 |
|
| 0.350 0 |
0.760 6 |
101.1 |
1.41 |
|
| 0.525 0 |
0.939 |
101.4 |
0.42 |
Saikosaponin f |
0.705 4 |
0.373 1 |
1.072 |
98.1 |
1.16 |
|
| 0.746 2 |
1.420 |
95.8 |
1.32 |
|
| 1.119 |
1.827 |
100.2 |
1.78 |
|
Table 3 The results of recovery test
|
1.6 稳定性 按“供试品溶液的制备”项下制备供试品溶液, 室温放置, 分别于0、2、4、6、8、12和24 h按“高效液相色谱条件”进样测定, 记录峰面积, 柴胡皂苷a、b2、c、d、e和f峰面积的RSD分别为1.03%、1.21%、1.44%、1.41%、1.09%和1.32%, 表明供试品溶液在24 h内稳定。
2 样品含量测定 取不同批次的北柴胡粉末约0.5 g, 精密称定, 按“供试品溶液的制备”项下操作, 制备供试品溶液, 按“高效液相色谱条件”进样10 μL, 测定峰面积, 采用外标法对柴胡皂苷类成分的含量进行测定, 不同产地、不同采收期的北柴胡中柴胡皂苷含量的结果见表 4, 不同炮制品(n = 3)的柴胡皂苷含量的结果见表 5。
表4(Table 4)
Table 4 The content of saikosaponins at different harvest time from different producing areas
No. |
Content of six saikosaponins/% |
Total/% |
a |
b2 |
c |
d |
e |
f |
1 |
1.135 |
0.010 42 |
0.381 9 |
1.530 |
0.114 5 |
0.300 8 |
3.472 |
2 |
1.067 |
0.009 11 |
0.293 2 |
1.404 |
0.104 5 |
0.229 2 |
3.107 |
3 |
1.156 |
0.009 70 |
0.334 9 |
1.598 |
0.118 0 |
0.277 9 |
3.494 |
4 |
1.235 |
0.009 56 |
0.337 2 |
1.679 |
0.120 8 |
0.267 3 |
3.648 |
5 |
1.094 |
0.009 17 |
0.288 0 |
1.453 |
0.102 6 |
0.265 3 |
3.212 |
6 |
1.072 |
0.009 50 |
0.296 7 |
1.414 |
0.110 9 |
0.267 2 |
3.170 |
7 |
1.175 |
0.009 55 |
0.343 7 |
1.690 |
0.117 9 |
0.263 1 |
3.599 |
8 |
1.167 |
0.009 41 |
0.340 8 |
1.675 |
0.117 2 |
0.270 8 |
3.581 |
9 |
1.029 |
0.004 325 |
0.185 9 |
1.372 |
0.115 8 |
0.270 6 |
2.978 |
10 |
1.046 |
0.003 854 |
0.193 8 |
1.360 |
0.125 9 |
0.260 6 |
2.991 |
11 |
1.014 |
0.005 188 |
0.161 5 |
1.367 |
0.110 3 |
0.217 0 |
2.875 |
12 |
1.256 |
0.005 230 |
0.279 7 |
1.795 |
0.136 7 |
0.354 4 |
3.828 |
13 |
1.175 |
0.003 074 |
0.287 6 |
1.448 |
0.143 7 |
0.334 7 |
3.393 |
14 |
0.957 |
0.003 162 |
0.243 3 |
1.258 |
0.117 7 |
0.287 9 |
2.867 |
15 |
0.914 |
0.002 289 |
0.178 4 |
1.193 |
0.107 7 |
0.227 2 |
2.623 |
16 |
1.021 |
0.002 254 |
0.208 6 |
1.322 |
0.124 2 |
0.258 6 |
2.937 |
17 |
1.106 |
0.016 55 |
0.278 8 |
1.321 |
0.112 0 |
0.194 7 |
3.029 |
18 |
0.880 |
0.003 923 |
0.197 8 |
1.109 |
0.093 0 |
0.122 7 |
2.406 |
19 |
0.882 |
0.005 314 |
0.209 9 |
1.095 |
0.080 5 |
0.160 0 |
2.433 |
20 |
1.115 |
0.006 463 |
0.252 1 |
1.424 |
0.105 0 |
0.191 0 |
3.094 |
21 |
1.107 |
0.006 566 |
0.289 4 |
1.349 |
0.106 7 |
0.208 1 |
3.067 |
22 |
0.854 |
0.003 574 |
0.196 9 |
1.067 |
0.086 8 |
0.122 2 |
2.331 |
23 |
0.889 |
0.003 728 |
0.207 7 |
1.113 |
0.096 7 |
0.129 2 |
2.440 |
24 |
0.853 |
0.003 614 |
0.203 4 |
1.064 |
0.084 4 |
0.122 6 |
2.331 |
25 |
0.695 5 |
0.004 422 |
0.138 9 |
1.015 |
0.103 0 |
0.163 6 |
2.121 |
26 |
0.749 5 |
0.003 988 |
0.156 7 |
1.012 |
0.106 9 |
0.203 2 |
2.232 |
27 |
0.805 |
0.003 228 |
0.175 0 |
1.086 |
0.115 8 |
0.195 0 |
2.380 |
28 |
1.195 |
0.005 794 |
0.424 5 |
1.491 |
0.140 7 |
0.317 1 |
3.574 |
29 |
0.968 |
0.007 180 |
0.335 4 |
1.252 |
0.127 2 |
0.249 5 |
2.939 |
30 |
0.987 |
0.005 732 |
0.343 2 |
1.400 |
0.143 1 |
0.288 6 |
3.168 |
31 |
0.581 9 |
0.002 327 |
0.205 5 |
0.867 |
0.093 4 |
0.196 1 |
1.946 |
32 |
0.647 2 |
0.004 876 |
0.195 6 |
1.001 |
0.140 8 |
0.187 9 |
2.177 |
|
Table 4 The content of saikosaponins at different harvest time from different producing areas
|
表5(Table 5)
Table 5 The content of saikosaponins in different processed products (n = 3)
No. |
Processed product |
Content of six saikosaponins/% |
Total/% |
a |
b2 |
c |
d |
e |
f |
1 |
Raw product |
1.399 |
0.011 02 |
0.420 4 |
1.860 |
0.153 1 |
0.311 6 |
4.156 |
2 |
Stir-fried |
1.304 |
0.026 99 |
0.418 1 |
1.771 |
0.150 8 |
0.302 1 |
3.973 |
3 |
Vinegar-moistened |
1.201 |
0.013 55 |
0.378 3 |
1.598 |
0.139 6 |
0.276 8 |
3.606 |
4 |
Vinegar-stir-fried |
1.117 |
0.014 60 |
0.374 7 |
1.440 |
0.126 8 |
0.246 3 |
3.319 |
5 |
Wine-moistened |
1.249 |
0.016 21 |
0.384 1 |
1.656 |
0.139 0 |
0.281 0 |
3.726 |
6 |
Wine-stir-fried |
1.200 |
0.013 30 |
0.367 8 |
1.587 |
0.131 8 |
0.308 9 |
3.609 |
7 |
Honey-moistened |
1.052 |
0.009 08 |
0.327 2 |
1.403 |
0.120 8 |
0.226 2 |
3.138 |
8 |
Honey-stir-fried |
1.067 |
0.011 25 |
0.332 7 |
1.370 |
0.118 5 |
0.242 2 |
3.141 |
9 |
Bran-stir-fried |
1.358 |
0.023 74 |
0.433 1 |
1.857 |
0.155 5 |
0.322 9 |
4.150 |
10 |
Bran-wine-stir-fried |
1.214 |
0.011 99 |
0.377 8 |
1.610 |
0.138 3 |
0.282 4 |
3.634 |
11 |
Turtle blood-stir-fried |
1.223 |
0.013 67 |
0.386 0 |
1.626 |
0.138 7 |
0.302 7 |
3.690 |
12 |
Turtle blood-wine-stir-fried |
1.153 |
0.014 85 |
0.364 2 |
1.527 |
0.130 2 |
0.274 0 |
3.463 |
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Table 5 The content of saikosaponins in different processed products (n = 3)
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根据上述不同产地、不同采收期和不同炮制方法的北柴胡中6种柴胡皂苷的含量测定结果, 分别以采收地、炮制品为横坐标, 6种柴胡皂苷含量之和为纵坐标绘制柱形图, 结果见图 2、图 3。
讨论 北柴胡生长分为营养生长期和生殖生长期, 大致分为6个阶段:抽茎拔节期(5月)、孕蕾期(6月)、开花期(7月~8月)、做果期(8月)、果熟期(9月)、枯萎期(10~12月)[22]。5月, 北柴胡处于营养生长期, 在过去一年积累的皂苷类成分在根部蓄积, 此时柴胡皂苷的含量较高; 6月北柴胡进入开花前的准备期、7月进入盛花期, 此间需消耗大量的水和养分, 柴胡皂苷的含量较低; 8月北柴胡进入做果期, 植株生长缓慢, 皂苷类物质大量积累, 达到峰值, 9月之后北柴胡的生长发育基本停止, 10月开始进入枯萎期, 这时柴胡皂苷的含量又产生一个低值, 11月之后随着气温的降低, 北柴胡进入越冬期, 植株整体进入休眠状态, 柴胡皂苷的含量达到一个稳定的状态。
四个产地中, 不同采收期的北柴胡中柴胡皂苷的含量变化趋势不尽相同, 辽宁、陕西和甘肃的北柴胡在5月和8月柴胡皂苷的含量均较高, 而山西的北柴胡中柴胡皂苷的含量只在8月达到最大值, 这可能与各地区气候条件、土壤类型不同有关, 因此, 采收期的选择应因地制宜。但只以柴胡皂苷的含量决定北柴胡的最佳采收期并不合适, 研究[23]表明一年生柴胡成熟根的柴胡皂苷含量要高于两年生柴胡, 但一年生成熟根的产量远远不及二年生柴胡, 从实际出发, 应结合根的产量、柴胡皂苷含量等来确定北柴胡的最佳采收期; 北柴胡在生长后期根干重持续增加, 10月中旬达到最大值, 并且此时北柴胡的地上部分开始枯萎, 便于采挖根部[22]。结合实际, 辽宁、陕西和甘肃三个产地建议在春、秋季采收北柴胡, 山西则建议在秋季采收。
11种炮制品中柴胡皂苷含量依次为:生品 > 麸炒品 > 炒制品 > 酒拌品 > 鳖血炙品 > 酒润麸炒品 > 酒炙品 > 醋拌品 > 鳖血黄酒炙品 > 醋炙品 > 蜜炙品 > 蜜拌品; 除蜜拌品之外, 其他炮制品中柴胡皂苷b2的含量均比生品高, 并且柴胡皂苷a、b2、d三者的含量差异显著, 可能是因为在炮制过程中加入了米醋等辅料, 并且加热, 导致柴胡皂苷a、d结构中C13、C28间的氧醚环开环降解, 分别生成次生柴胡皂苷b1和b2所致[24]; 但柴胡皂苷b2的增加量与柴胡皂苷d的减少量并不成比例, 可能是因为酸性、加热等条件下, 柴胡皂苷a、d的糖苷键易水解[25], 使得柴胡皂苷d降解为其他产物并不完全转化为b2, 或是柴胡皂苷b2的来源并不一定局限于柴胡皂苷d[26], 有可能是由柴胡皂苷a或是其他途径转化而来。北柴胡以不同的方法炮制后, 柴胡皂苷的含量差异显著, 仅依据柴胡皂苷的含量, 建议北柴胡使用生品, 这与北柴胡临床常用生品相符。药材炮制后可起到“增效、减毒”的作用, 研究[27]表明柴胡经炮制后药效会产生明显的变化, 因此, 在用药过程中, 应根据病症不同采用不同的炮制品, 以达到合理用药的目的。