畜牧兽医学报  2022, Vol. 53 Issue (2): 548-555. DOI: 10.11843/j.issn.0366-6964.2022.02.021    PDF    
种蛋孵化死胚及孵化厅环境样本中铜绿假单胞菌的分离鉴定及其耐药性分析
余蕴1, 向勇1, 李庆钵1, 刘鹏1, 黎丽珍1, 廖明2,3,4,5,6, 曹伟胜1,3,4,5,6     
1. 华南农业大学兽医学院, 广州 510642;
2. 岭南现代农业科学与技术广东省实验室, 广州 510642;
3. 农业农村部人兽共患病重点实验室, 广州 510642;
4. 广东省动物源性人兽共患病预防与控制重点实验室, 广州 510642;
5. 人兽共患病防控制剂国家地方联合工程实验室, 广州 510642;
6. 农业农村部兽用疫苗创制重点实验室, 广州 510642
摘要:本研究旨在了解种鸡场中种蛋孵化死胚和周围环境中感染或污染铜绿假单胞菌(Pseudomonas aeruginosa,PA)的比率及分离株的耐药性。从广东省的5个规模化种鸡场采集孵化厅死胚及其周围环境样本进行PA的分离鉴定,采用K-B纸片扩散法分析其抗菌药物敏感性,并通过常规PCR检测对应的耐药基因。结果显示,在采集的679份样本中,分离到共77株(77/679,11.3%)PA,其中2株来源于环境样本(2/24,8.3%),75株来源于死胚(75/655,11.5%)。药敏试验检测显示,耐药率最高的是复方新诺明(100%)和四环素(100%),其次为氯霉素(75.4%),另外第三代头孢噻肟也有检测出耐药株,耐药率达11.7%;多重耐药率高达62.3%;耐药基因qacE△1-sul1(29.9%)和ant(3″)-I(29.9%)的检出率最高,其次为DHA(28.3%),而oprD2基因阳性率为11.7%,提示其对碳青霉烯类抗菌药的耐药性转移风险水平较高。综上,所调查的5个种鸡场的种蛋孵化死胚及其周围环境中均存在不同程度的PA感染或污染,且分离鉴定的菌株表现出较强的耐药性。因此建议该5个种禽场在养殖过程中要加强饲养管理,及时清洁和消毒种蛋、孵化机及其周边环境;另一方面应定期进行药敏试验,合理使用抗菌药物,以尽量减少耐药及多重耐药菌株的出现。
关键词种鸡场    死胚    铜绿假单胞菌    耐药性    耐药基因    
Isolation, Identification and Drug Resistance Analysis of Pseudomonas aeruginosa from Dead Embryos and Environment Samples of Hatchery in Breeding Chicken Farms
YU Yun1, XIANG Yong1, LI Qingbo1, LIU Peng1, LI Lizhen1, LIAO Ming2,3,4,5,6, CAO Weisheng1,3,4,5,6     
1. College of Veterinary Medicine, South China Agricultural University, Guangzhou 510642, China;
2. Guangdong Laboratory for Lingnan Modern Agriculture, Guangzhou 510642, China;
3. Key Laboratory of Zoonosis of Ministry of Agriculture and Rural Affairs, Guangzhou 510642, China;
4. Key Laboratory of Zoonosis Prevention and Control of Guangdong Province, Guangzhou 510642, China;
5. National and Regional Joint Engineering Laboratory for Medicament of Zoonosis Prevention and Control, Guangzhou 510642, China;
6. Key Laboratory of Animal Vaccine Development, Ministry of Agriculture and Rural Affairs, Guangzhou 510642, China
Abstract: This study aims to investigate the prevalence and drug resistance of Pseudomonas aeruginosa (PA) in breeder farms in Guangdong Province. Samples of dead embryos of breeding chickens and their surrounding environment were collected from different regions of Guangdong Province for the separation and identification of PA. The K-B paper disk diffusion method was used to analyze its antimicrobial sensitivity, and its resistance genes were detected by conventional PCR. The results showed that a total of 77 strains of PA (77/679, 11.3%) including 2 strains from environmental samples (2/24, 8.3%) and 75 strains (75/655, 11.5%) from dead embryos were isolated. The drug susceptibility test showed that the highest drug resistance rate was compound trimethoprim (100%) and tetracycline (100%), followed by chloramphenicol (75.4%). In addition, drug-resistant strains were also detected in the third-generation cefotaxime, the drug resistance rate reached 9.3%; It is worth noting that the multi-drug resistance rate is as high as 62.3%; the resistance genes qacE△1-sul1 (29.9%) and ant(3″)-I (29.9%) have the highest detection rate, followed by DHA (28.3%), and the positive rate of oprD2 gene was 11.7%, suggesting that its resistance to carbapenem antimicrobial drugs has a high level of transfer risk. In summary, there were varying degrees of PA infection or pollution in the five breeder farms and their surroundings in Guangdong Province, and the isolated and identified strains showed strong drug resistance. Therefore, it is suggested that the five poultry farms should strengthen the breeding management during the breeding process, clean and disinfect the breeding eggs. On the other hand, drug susceptibility tests should be conducted regularly, and antibiotics should be used rationally to minimize the emergence of drug-resistant and multi-drug resistant strains.
Key words: breeding chicken farms    dead embryos    Pseudomonas aeruginosa    antimicrobial resistance    resistance genes    

铜绿假单胞菌(Pseudomonas aeruginosa,PA)是一种分布广泛的人兽共患条件致病菌,可以在人、动物、环境中循环传播[1-2],严重影响着人类健康和畜禽养殖生产。研究人员对PA耐药性的关注度从未降低,它是医院临床高度关注并愈发棘手的问题,作为对抗PA最后一道有效防线的亚胺培南和美罗培南等碳青霉烯类抗菌药也逐渐失去其作用[3-4]。近年来,有研究发现鸡及其养殖环境当中的PA中一些重要耐药基因的检出率逐渐升高,如金属β内酰胺酶(metallo-β-lactamases,MBLs)的相关耐药基因MBLVIM-2MBLSPM-1[5-6]。张艳等[7]对从医院分离到的100株PA进行耐药性分析,数据显示,亚胺培南耐药基因oprD2的检出率为93.0%,显著高于其他耐药基因的检出率,提示PA的耐药性日渐严重,极大的危害临床抗感染治疗,在全球范围内均构成极大的威胁[8-10]。但目前对种禽场孵化厅中PA的感染情况和耐药性的相关报道仍然较少。因此,本研究旨在对广东省种禽场孵化厅中PA的流行情况进行调查,为预防和控制该病原菌提供理论依据;其次,对分离到的PA进行抗菌药物敏感性分析及耐药基因的检测,为种禽场的合理用药提供参考。

1 材料与方法 1.1 试验材料

LB琼脂培养基、LB液体培养基、MH琼脂培养基、MH培养基、铜绿假单胞菌ATCC27853、大肠杆菌ATCC25922均为广东环凯微生物科技有限公司产品。NAC琼脂培养基、NAC液体培养基、无菌均质袋等均为青岛海博生物技术有限公司产品。rTaq PCR Premix为上海翌圣生物科技有限公司产品;药敏纸片为OXOID公司产品。SQ Tissue组织DNA提取试剂盒为OMEGA公司产品。

1.2 样品采集

2018年3月—2019年1月,从广东省5个不同规模化种禽场收集孵化厅内21日龄仍未出壳且外壳完好的种蛋孵化死胚共655份,以及孵化机灰尘、污垢等环境样本共24份,总计样本679份。环境样本用灭菌棉拭子采集并放入装有适量的灭菌NAC液体培养基的15 mL离心管中,从样品采集到运送至实验室不超过8 h。

1.3 PA的分离与鉴定

用75%酒精将死胚外壳充分消毒3次,无菌操作取出胚体并剪碎,尤其使胸腔、腹腔和卵黄囊充分暴露,随后将整个胚体放入无菌均质袋。接着加入适量的无菌NAC液体培养基到装有样品的无菌均质袋中,37 ℃、120 r·min-1条件下选择性增菌8 h,增菌后移取1 mL增菌液转种于10 mL新的无菌NAC液体培养基内,37 ℃、120 r·min-1进行二次选择增菌12~16 h。接着用接种环蘸取菌液划线接种于NAC琼脂培养基,37 ℃培养18~24 h,挑取疑似PA的绿色单菌落,参考文献[11-12]进行菌种16S rRNA基因和特异性基因oprI的PCR鉴定,并送至广州擎科生物有限公司测序,引物序列见表 1

表 1 PA的16S rRNA和oprI基因的PCR引物序列及产物片段大小 Table 1 PCR primer sequences and amplicon sizes of 16S rRNA and oprI gene of Pseudomonas aeruginosa
1.4 药物敏感性试验

根据世界卫生组织(World health organziatio, WHO)推荐的K-B纸片扩散法和美国临床实验室标准化委员会(Clinical and laboratory standards institute,CLSI)推荐的操作规程,以铜绿假单胞菌ATCC27853、大肠杆菌ATCC25922为药敏试验质控菌株,严格参照CLSI2019标准对试验结果进行判定,测定所有PA分离株对22种抗菌药物的敏感性。抗菌药物:氨苄西林(ampicillin,AMP)、复方新诺明(complex sulfamethoxazole,SXT)、萘啶酸(naphthyridic acid,NA)、卡那霉素(kanamycin,K)、四环素(tetracycline,TE)、氯霉素(chloramphenicol,C)、哌拉西林(piperacillin,PRL)、头孢噻肟(cefotaxime,CTX)、头孢吡肟(cefepime,FEP)、头孢他啶(ceftazidime,CAZ)、头孢哌酮(cefoperazone,CFP)、亚胺培南(imipenem,IPM)美罗培南(meropenem,MEM)、氨曲南(aztreonam,ATM)、哌拉西林/他唑巴坦(piperacillin/tazobactam,TZP)、头孢哌酮/舒巴坦(cefoperazone/sulbactam,SCF)、妥布霉素(tobramycin,TOB)、阿米卡星(amikacin,AK)、庆大霉素(gentamicin,CN)、环丙沙星(ciprofloxacin,CIP)、左氧氟沙星(levofloxacin,LEV)和多黏菌素B(polymyxin B,PB)。

1.5 耐药基因检测

参照SQ Tissue组织DNA提取试剂盒(OMEGA)说明书提取PA总DNA。参考文献[13-14]中的PCR引物及反应体系和条件对相应28个耐药基因(TEMSHVCTXVEBVIMIMPSPMGIMoprD2NDMDHAOXA-10、OXA-23、qnrAqnrDqnrSaac(3)-Iaac(3)-IIaac(6′)-Ibaac(6′)-IIant(3″)-ItetAtetBcatBcmlAqacE△1-sul1、mcr-1和NDM-1)进行PCR检测。PCR产物大于500 bp时反应条件:94 ℃预变性3 min;94 ℃变性1 min,55 ℃退火1 min,72 ℃延伸1 min,35个循环;72 ℃后延伸8 min。PCR产物小于500 bp时反应条件:94 ℃预变性3 min;94 ℃变性30 s,55 ℃退火30 s,72 ℃延伸1 min,35个循环;72 ℃后延伸8 min,退火温度可根据引物合成的Tm值作适当调整。PCR产物经1%琼脂糖凝胶电泳后,通过凝胶成像分析系统观察并拍照保存。

2 结果 2.1 PA的分离与鉴定

PA在NAC琼脂培养基及LB琼脂培养基上均呈现出圆形、光滑、湿润的绿色菌落,并带有特殊芳香气味,生化分析结果显示其均符合PA的生化特性(表 2)。对分离到的疑似PA菌株的16S rRNA及oprI基因进行PCR扩增,结果显示其扩增出大小约为470和214 bp左右的片段(图 1),结合测序结果确认为PA。本研究分离鉴定出PA共77株(77/679,11.3%),其中, 2株来源于环境样本中的孵化机污垢(2/24,8.3%),75株来源于死胚(75/655,11.5%)(表 3)。

表 2 PA分离株的生化鉴定 Table 2 Biochemical identification of Pseudomonas aeruginosa isolates
M. DNA相对分子质量标准;1. PA分离株;2. 阳性对照;3. 阴性对照 M. DNA marker; 1. PA isolates; 2. Positive control; 3. Negative control 图 1 PA的16S rRNA和oprI基因PCR扩增产物的琼脂糖凝胶电泳 Fig. 1 Agarose gel electrophoresis of PCR product for 16S rRNA and oprI gene
表 3 种鸡场中PA分离株的数量及分离率 Table 3 Quantity and isolation rate of Pseudomonas aeruginosa in breeding poultry farms
2.2 抗菌药物敏感性

药物敏感性试验结果显示,除天然耐药的AMP、K和NA之外,PA对TE、SXT、C的耐药性较强,耐药率分别为100%、100%、75.4%,其次为CTX(11.7%)、CIP(9.1%)、LEV(9.1%)、CN(7.9%)、TOB(7.8%);另外,PA对PRL、CFP和AK也表现出了较低的耐药率;未检测到对FEP、CAZ、IPM、MEM、ATM、TZP、SCF和PB耐药的PA菌株。除天然耐药外,耐3类或3类以上抗菌药的PA占比为74.1%(57/77),表现出多重耐药性,其中,耐3类抗菌药的菌株数量最多,占62.3%(48/77);耐4类抗菌药的菌株占比为3.9%(3/77);耐6类抗菌药的菌株占比为7.8%(6//77)。耐药谱分析显示(表 4),所有分离菌株100%表现出耐4种及以上抗菌药,最广耐14种抗菌药,其中6耐菌株最多。

表 4 PA的耐药谱及相应数量 Table 4 The drug resistance spectrum and quantity of Pseudomonas aeruginosa
2.3 耐药基因检测

77株PA的28种耐药基因检测结果显示,18种耐药基因检测阳性(表 5),其中磺胺类的qacE△1-sul1检出率最高,对应的耐药表型是SXT;而碳青霉烯类耐药基因oprD2的检出率达到11.7%,对应的耐药表型主要是IPM;质粒介导诱导产生氟喹诺酮类耐药的qnr基因qnrAqnrDqnrS的检出率均为9.1%;氨基糖苷类的aac(3)-IIant(3″)-I耐药基因检出率最高;氯霉素类耐药基因检出率最高为cmlA(2.6%);四环素类耐药基因以tetA(3.9%)为主。磺胺类的耐药基因qacE △1-sul1阳性率为13.73%,而5种常见的MBLs耐药基因(VIMIMPSPMGIMNDM)及氨基糖苷类的aac(3)-Imcr-1检测结果均为阴性。

表 5 PA耐药基因的检出率 Table 5 Detection rate of drug resistant genes in Pseudomonas aeruginosa
3 讨论

当前,PA是医院内重要的条件致病菌,常引起免疫力低下或有外伤伤口患者的严重感染,而且是导致重症病房患者死亡的罪魁祸首[15-16]。关于医院及其环境中PA的流行情况有太多的文献报道,相比之下,关于动物源PA的流行情况却较少报道,缺乏该方面的流行病学数据。本研究共分离到77株PA,总体分离率为11.3%,其中, 2株来源于环境样本(2/24,8.3%),75株来源于死胚(75/655,11.5%);数据表明,不仅在死胚中发现有不同程度的PA感染,而且种禽场周围环境中也有一定比例的PA污染。有研究表明,种禽场环境当中的PA是污染种蛋的一个重要因素,尤其是孵化箱内环境[17-19]。而在G场的死胚和环境样本中均分离到了PA,因此作者推断环境中的PA可能是导致种蛋感染的重要原因,即胚胎可能被孵化箱内的PA污染,并侵入蛋壳,致其死亡;另一方面,即便是在死胚和环境样本中均分离到了PA,但也不能将鸡胚死亡或孵化率较低的结果全部归因于PA的感染,因为在个别养殖场的死胚中也分离到了沙门菌[20];所以,孵化率受影响是多种因素共同作用的结果。但在F场中并未分离到PA,说明其饲养管理和生物安全措施实施得较好,推测这也是该场孵化率稍高于其他养殖场的原因。所以在家禽养殖过程中,不应该继续忽视PA的存在,应当重视起来,需要加强饲养管理及生物安全措施,防止PA污染种蛋,避免损失。

本研究选取了常用的22种抗菌药进行药物敏感性试验,其中, IPM、PRL、FEP、CAZ等都是医院临床治疗PA感染性疾病的一线药物[21-22],但部分PA分离株也对其表现出了耐药现象,即便其耐药率较低,但也应当引起重视,特别是医院临床抗感染的一线药物亚胺培南。而在所调查的11个养殖场中,均未使用上述抗菌药,这也从侧面反映出PA在群体遗传进化过程中,其耐药性越来越强,推测与全球范围内医院中多重耐药PA菌株的暴发流行有关;反观AMP、K、NA这3种抗菌药,在养殖场中的使用率极高,但PA对其天然耐药,因此不具备预防治疗意义。而PA对SXT、TE、C三者的耐药率也很高,因此养殖场需要更换其他抗菌药使用。另外,耐药谱分析显示, 最广耐14种抗菌药;其中多重耐药PA占比高达为62.3%,这些数据表明禽源PA的耐药情况同样不容乐观,且日渐严重。耐药基因oprD2对应的耐药表型是亚胺培南,且医院内的PA分离株对IPM表现出较强的耐药性[23-24]。而在本研究中,虽然未检测到对IPM耐药的菌株,但其oprD2基因的阳性率高达11.7%,推断可能是因为oprD2耐药基因没有表达或表达量不够,不足以引起对应的耐药表型,同时也提示种禽场PA分离株对IPM的耐药性转移风险水平较高。虽然本研究中分离到的PA并未被检测到MBLs耐药基因,但仍然不能掉以轻心,毕竟已表现出对碳青霉烯类耐药性转移的风险,并且有必要进行动物源PA耐药基因的监测。

PA目前的流行情况(尤其是医院内的流行情况)已经十分严峻,而医院中PA的流行在某种程度上对动物源PA的流行造成了一定的威胁,医院内的PA传播至ICU病人,病人将PA带入到家庭环境,最终导致其宠物感染PA并发病,这都是有依据可言的。另一方面,由于PA强大的耐药性和对环境的适应性,使其本身就具有较强的流行性。在面对动物源PA的逐渐流行时,应该趁早将其扼杀在摇篮里。

4 结论

通过对5个不同种鸡场中的种蛋孵化死胚和环境样本进行铜绿假单胞菌的分离鉴定,发现其死胚中均存在不同程度的感染,且个别种鸡场的死胚和环境样本中均分离到了该菌。这些PA分离株具有多重耐药性,提示种鸡场一方面应做好生物安全措施,加强饲养管理,及时对种蛋、孵化机及其周边环境进行清洁和消毒;另一方面应定期进行药敏试验,根据结果合理选择并交替使用抗菌药,如阿米卡星、哌拉西林、头孢哌酮等可作为铜绿假单胞菌较好的预防或治疗药物。

参考文献
[1]
LIN T, QUELLIER D, LAMB J, et al. Pseudomonas aeruginosa-induced nociceptor activation increases susceptibility to infection[J]. PLoS Pathog, 2021, 17(5): e1009557. DOI:10.1371/journal.ppat.1009557
[2]
WANG T T, DU X, JI L X, et al. Pseudomonas aeruginosa T6SS-mediated molybdate transport contributes to bacterial competition during anaerobiosis[J]. Cell Rep, 2021, 35(2): 108957. DOI:10.1016/j.celrep.2021.108957
[3]
MEMAR M Y, YEKANI M, GHANBARI H, et al. Antimicrobial and antibiofilm activities of meropenem loaded-mesoporous silica nanoparticles against carbapenem-resistant Pseudomonas aeruginosa[J]. J Biomater Appl, 2021. DOI:10.1177/08853282211003848
[4]
TARAZI Y H, ABU-BASHA E, ISMAIL Z B, et al. Antimicrobial susceptibility of multidrug-resistant Pseudomonas aeruginosa isolated from drinking water and hospitalized patients in Jordan[J]. Acta Trop, 2021, 217: 105859. DOI:10.1016/j.actatropica.2021.105859
[5]
ZHANG R M, LIU Z H, LI J Y, et al. Presence of VIM-positive Pseudomonas species in chickens and their surrounding environment[J]. Antimicrob Agents Chemother, 2017, 61(7): e00167-17.
[6]
MARTINS W M B S, NARCISO A C, CAYÔ R, et al. SPM-1-producing Pseudomonas aeruginosa ST277 clone recovered from microbiota of migratory birds[J]. Diagn Microbiol Infect Dis, 2018, 90(3): 221-227. DOI:10.1016/j.diagmicrobio.2017.11.003
[7]
张艳, 李静, 赵淑珍. 多重耐药铜绿假单胞菌耐药基因的检测与分析[J]. 临床合理用药杂志, 2018, 11(29): 172-173.
ZHANG Y, LI J, ZHAO S Z. Detection and analysis of multidrug resistant Pseudomonas aeruginosa resistant genes[J]. Chinese Journal of Clinical Rational Drug Use, 2018, 11(29): 172-173. (in Chinese)
[8]
BARRAZA J P, WHITELEY M. A Pseudomonas aeruginosa antimicrobial affects the biogeography but not fitness of Staphylococcus aureus during coculture[J]. mBio, 2021, 12(2): e00047-21.
[9]
JAHANGIRI A, NESHANI A, MIRHOSSEINI S A, et al. Synergistic effect of two antimicrobial peptides, Nisin and P10 with conventional antibiotics against extensively drug-resistant Acinetobacter baumannii and colistin-resistant Pseudomonas aeruginosa isolates[J]. Microb Pathog, 2021, 150: 104700. DOI:10.1016/j.micpath.2020.104700
[10]
PORTELINHA J, ANGELES-BOZA A M. The antimicrobial peptide Gad-1 clears Pseudomonas aeruginosa biofilms under cystic fibrosis conditions[J]. ChemBioChem, 2021, 22(9): 1646-1655. DOI:10.1002/cbic.202000816
[11]
李玲. 鸡铜绿假单胞菌的分离鉴定及生物学特性研究[D]. 保定: 河北农业大学, 2013.
LI L. Isolation and identification and biological characteristics of pseudomonas aeruginosa isolted from chicken[D]. Baoding: Heibei Agricultural University, 2013. (in Chinese)
[12]
XIANG Y, YAN L, ZHENG X C, et al. Rapid detection of Pseudomonas aeruginosa by cross priming amplification[J]. J Integ Agr, 2020, 19(10): 2523-2529. DOI:10.1016/S2095-3119(20)63187-2
[13]
陈茶, 黄彬, 蓝锴, 等. 铜绿假单胞菌"泛耐株"耐药相关基因研究[J]. 中国抗生素杂志, 2009, 34(2): 111-113, 129.
CHEN C, HUANG B, LAN K, et al. Study on resistance mechanism and resistant genes of pan resistant Pseudomonas aeruginosa[J]. Chinese Journal of Antibiotics, 2009, 34(2): 111-113, 129. (in Chinese)
[14]
明德松, 庄建良, 苏智军, 等. 全耐铜绿假单胞菌40种耐药相关基因的研究[J]. 中华医院感染学杂志, 2009, 19(23): 3160-3163.
MING D S, ZHUANG J L, SU Z J, et al. Forty types of resistant-related genes in a pan-resistant Pseudomonas aeruginosa[J]. Chinese Journal of Nosocomiology, 2009, 19(23): 3160-3163. (in Chinese)
[15]
VALLABHANENI S, HUANG J Y, GRASS J E, et al. Antimicrobial susceptibility profiles to predict the presence of carbapenemase genes among carbapenem-resistant Pseudomonas aeruginosa isolates[J]. J Clin Microbiol, 2021, 59(6): e02874-20.
[16]
VANDEVANTER D R, HELTSHE S L, HILLIARD J B, et al. Pseudomonas aeruginosa Antimicrobial susceptibility test (AST) results and pulmonary exacerbation treatment responses in cystic fibrosis[J]. J Cyst Fibros, 2021, 20(2): 257-263. DOI:10.1016/j.jcf.2020.05.008
[17]
HASSAN W H, IBRAHIM A M K, SHANY S A S, et al. Virulence and resistance determinants in Pseudomonas aeruginosa isolated from pericarditis in diseased broiler chickens in Egypt[J]. J Adv Vet Anim Res, 2020, 7(3): 452-463. DOI:10.5455/javar.2020.g441
[18]
孙理云, 孔瑞娜, 温广辉, 等. 健康肉鸡高比率携有多重耐药铜绿假单胞菌[J]. 中国人兽共患病学报, 2012, 28(2): 193-195.
SUN L Y, KONG R N, WEN G H, et al. Antibiogram of Pseudomonas aeruginosa isolated from healthy broilers[J]. Chinese Journal of Zoonoses, 2012, 28(2): 193-195. (in Chinese)
[19]
刘晓文, 张庆, 宋新慧, 等. 噬菌体降低铜绿假单胞菌所致腐蛋的效果[J]. 畜牧兽医学报, 2020, 51(7): 1756-1763.
LIU X W, ZHANG Q, SONG X H, et al. Effect of phage on the reduction of rotten eggs caused by Pseudomonas aeruginosa[J]. Acta Veterinaria et Zootechnica Sinica, 2020, 51(7): 1756-1763. (in Chinese)
[20]
晏玲, 向勇, 刘鹏, 等. 黄羽肉种鸡场死胚中鸡白痢沙门菌的分离鉴定及耐药性分析[J]. 中国家禽, 2019, 41(8): 49-52.
YAN L, XIANG Y, LIU P, et al. Isolation, identification and drug resistance analysis of salmonella pullorum in dead embryos of yellow-feather breeding chicken farm[J]. China Poultry, 2019, 41(8): 49-52. (in Chinese)
[21]
LANGENDONK R F, NEILL D R, FOTHERGILL J L. The building blocks of antimicrobial resistance in Pseudomonas aeruginosa: implications for current resistance-breaking therapies[J]. Front Cell Infect Microbiol, 2021, 11: 665759. DOI:10.3389/fcimb.2021.665759
[22]
SADER H S, CARVALHAES C G, STREIT J M, et al. Antimicrobial activity of ceftazidime-avibactam, ceftolozane-tazobactam and comparators tested against Pseudomonas aeruginosa and Klebsiella pneumoniae isolates from United States medical centers in 2016-2018[J]. Microb Drug Resist, 2021, 27(3): 342-349. DOI:10.1089/mdr.2020.0217
[23]
SHAHBANDEH M, EGHDAMI A, MOGHADDAM M M, et al. Conjugation of imipenem to silver nanoparticles for enhancement of its antibacterial activity against multidrug-resistant isolates of Pseudomonas aeruginosa[J]. J Biosci, 2021, 46(1): 26. DOI:10.1007/s12038-021-00143-9
[24]
HE L, HE A G, QIAN Y. Imipenem-resistant Pseudomonas aeruginosa treated with piperacillin/tazobactam in a patient with severe pneumonia: a case report and related literature review[J]. Ann Palliat Med, 2021, 10(1): 810-817. DOI:10.21037/apm-20-2495

(编辑   白永平)