武汉大学学报(医学版)   2018, Vol. 39Issue (3): 361-364, 368   DOI: 10.14188/j.1671-8852.2017.1237.
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引用本文 

王蕾蕾, 王云龙, 曹正国, 贺红. 慢病毒介导的Stat3沉默对成牙骨质细胞分化、凋亡、自噬的影响[J]. 武汉大学学报(医学版), 2018, 39(3): 361-364, 368. DOI: 10.14188/j.1671-8852.2017.1237.
WANG Leilei, WANG Yunlong, CAO Zhengguo, HE Hong. Effects of Stat3 Gene Silencing by Lentivirus-Mediated shRNA on Cementoblast Differentiation, Apoptosis and Autophagy[J]. Medical Journal of Wuhan University, 2018, 39(3): 361-364, 368. DOI: 10.14188/j.1671-8852.2017.1237.

作者简介

王蕾蕾, 女, 1992-, 医学硕士, 主要从事成牙骨质细胞的研究, E-mail:wangleilei_0302@163.com

基金项目

国家自然科学基金资助项目(编号:81671020)

通讯作者

贺红, 女, 1967-, 医学博士, 教授, 博士生导师, 主要从事正畸牙移动的研究, E-mail: drhehong@whu.edu.cn

文章历史

收稿日期:2017-01-15
慢病毒介导的Stat3沉默对成牙骨质细胞分化、凋亡、自噬的影响
王蕾蕾 1, 王云龙 2, 曹正国 1,3, 贺红 1,2     
1. 武汉大学口腔医学院口腔基础医学省部共建国家重点实验室培训基地/口腔生物医学教育部重点实验室 湖北 武汉 430079;
2. 武汉大学口腔医院 正畸一科 湖北 武汉 430079;
3. 武汉大学口腔医院 牙周科 湖北 武汉 430079
[摘要] 目的: 构建Stat3-shRNA慢病毒表达载体,观察慢病毒介导的信号传导及转录激活因子3(Stat3)沉默对小鼠成牙骨质细胞OCCM-30分化、凋亡、自噬的影响及相关机制。方法: 构建含有Stat3 shRNA的慢病毒载体,包装慢病毒后感染OCCM-30细胞,使用嘌呤霉素筛选出稳定细胞株。采用real-time PCR和Western Blot法检测慢病毒对Stat3的抑制效果。将细胞分成空白对照组、阴性对照组和Stat3抑制组三组,采用Western Blot检测Atg-5,Beclin-1,cleaved caspase-3,survivin蛋白水平的变化,使用real-time PCR法检测BSP,OCN,osterix在mRNA水平的变化。结果: 成功构建Stat3-shRNA慢病毒表达载体并用慢病毒感染OCCM-30细胞,有效降低了Stat3的mRNA和蛋白的表达量。在mRNA水平上,Stat3抑制组BSP,OCN,osterix表达量降低。由Western Blot结果可知,Stat3抑制组Atg-5,Beclin-1,survivin蛋白表达量明显降低,cleaved caspase-3蛋白表达量增加。结论: 慢病毒介导的Stat3-shRNA可有效抑制OCCM-30细胞内Stat3基因表达,从而抑制细胞分化和自噬,诱导凋亡,其相关机制可能是通过抑制Stat3信号转导通路实现的。
关键词慢病毒    shRNA    成牙骨质细胞    Stat3    
Effects of Stat3 Gene Silencing by Lentivirus-Mediated shRNA on Cementoblast Differentiation, Apoptosis and Autophagy
WANG Leilei1, WANG Yunlong2, CAO Zhengguo1,3, HE Hong1,2     
1. The State Key Laboratory Breeding Base of Basic Science of Stomatology(Hubei-MOST KLOS) & Key Laboratory for Oral Biomedical Engineering of Ministry of Education (KLOBME), Wuhan 430079, China;
2. Dept. of Orthodontics, School & Hospital of Stomatology, Wuhan University, Wuhan 430079, China;
3. Dept. of Periodontology, School & Hospital of Stomatology, Wuhan University, Wuhan 430079, China
[Abstract] Objective: To construct mouse Stat3-shRNA lentiviral vector, then to investigate the effects of signal transducers and activators transcription 3 (Stat3) gene silencing by lentivirus mediated Stat3-shRNA on the differentiation, apoptosis and autophagy of an immortalized murine cementoblast cell line OCCM-30. Methods: Mouse Stat3-shRNA lentivirus was constructed and infected into the cementoblast cell lines OCCM-30, and puromycin was used to select stable expression cell lines. Real-time PCR and Western Blot were used to measure the interference effects. Then, Western Blot was used to detect Atg-5, Beclin-1, cleaved caspase-3, and survivin protein expressions. Real-time PCR was used to measure mRNA expressions of BSP, OCN, and Osterix. Results: Stat3-shRNA lentivirus was successfully constructed and infected OCCM-30 cells. Both of the mRNA and protein levels of Stat3 were down-regulated in infected group. The real-time PCR results showed that in the infected group, the mRNA expression levels of BSP, OCN, and Osterix were reduced. Western Blot analyses demonstrated that the expression levels of Atg-5, Beclin-1, survivin were decreased, while cleaved caspase-3 expression level was increased in infected group. Conclusion: Stat3-shRNA lentivirus could down-regulate the expression of Stat3 in OCCM-30, so as to inhibit cells differentiation and autophagy, and accelerate cells apoptosis. The relative mechanism may be due to the block of Stat3 signaling pathway.
Key words: Lentivirus    shRNA    Cementoblast    Stat3    

牙骨质是包绕在牙齿根部的一层特殊的矿化组织,其对牙周结构的形成、发育和再生有重要作用[1]。在正畸力作用下,牙骨质的抗压性是牙齿移动的可靠保证。适度的正畸力能引起牙槽骨的吸收而不会引起牙骨质的吸收。但事实上,牙骨质往往也有少量的吸收,只是程度轻,范围小并有新形成的牙骨质及时修复,因此难以察觉。成牙骨质细胞的主要功能是形成牙骨质基质。一方面,成牙骨质细胞负责牙骨质基质的沉积和矿化,另一方面,其也能经由细胞分泌物和表面蛋白调控破骨细胞功能。成牙骨质细胞和成骨细胞均为可形成矿化组织的细胞,在细胞形态、功能、分化机制等方面有相似的生物学特性。成骨细胞的功能状态不仅与其分化状态有关,也受凋亡、增殖[2]和自噬的影响。因此,成牙骨质细胞或许也有类似的生理机制。

信号传导与转录激活因子3(signal transducers and activators of transcription 3,Stat3)是一种重要的信号蛋白。通过将Stat3磷酸化可以调控下游靶基因,从而影响细胞的增殖和凋亡。Stat3不仅参与了自噬过程,并且对成骨细胞的分化也有重要作用。本实验中,我们成功构建以Stat3为靶点的短发夹RNA(short hairpin RNA,shRNA)慢病毒表达载体,在包装产生慢病毒后,感染OCCM-30细胞,筛选获得稳定细胞株,并检测抑制Stat3对OCCM-30分化、凋亡、自噬的作用。

1 材料与方法 1.1 主要材料和仪器

成牙骨质细胞株OCCM-30(由美国华盛顿大学馈赠);HEK293E细胞(Invitrogen,美国);DMEM培养基、RPMI 1640培养基(Hyclone,美国);胎牛血清(Gibco,美国);PCR引物(上海生工生物公司,中国);逆转录、qRT-PCR试剂盒(TaKaRa,日本);PBS、胰蛋白酶、Trizol (Invitrogen,美国);异丙醇、无水乙醇、氯仿、细胞培养瓶(NEST,中国); 倒置显微镜(Nikon,日本);恒温细胞培养箱(Thermo,美国);NanoDrop2000超微量分光光度计(Thermo,美国);SYBR荧光定量PCR仪(ABI,美国)。

1.2 实验方法 1.2.1 成牙骨质细胞的培养

在培养瓶中接种合适密度且生长状态良好的成牙骨质细胞OCCM-30,加入DMEM培养液(含10% FBS),并放置于37 ℃,含5%CO2与95%空气的恒温培养箱,2-3 d换一次液。细胞融合至80%时传代。

1.2.2 质粒购买

小鼠Stat3 shRNA抑制序列由上海吉玛基因有限公司设计,并且与其公司的慢病毒载体质粒pLV3(H1/GFP Puro)相连。该质粒含有H1启动子及绿色荧光蛋白(GFP)编码区与嘌呤霉素(Puro)抗性编码区。总共设计两条抑制序列,分别为siA: 5′-CCCGCCAACAAAUUAAGAA-3,siB: 5′-GGGUCUCGGAAAUUUAACA-3′。两条构建好的质粒分别命名为pLV-stat3-siA和pLV-stat3-siB。阴性对照质粒pLV-NC由吉玛公司赠送。质粒psPAX2和pMD2.G购于美国Addgene公司。

1.2.3 慢病毒包装与收集

取对数期的293E细胞,充分消化后均匀接种在3个10 cm培养皿中,常规培养。待细胞长至70%融合时,将pLV-stat3-siA/pLV-stat3-siB/pLV-NC分别与psPAX2和pMD2.G按pLV:4.4 μg,psPAX2:7.2 μg,pMD 2.G:3.6 μg的量用Turbofect转染进293 E细胞里面,转染6 h之后换成普通培养液培养,分别在24 h和72 h后收集上清液,用0.45 μm滤器过滤后使用。

1.2.4 稳定转染细胞株的筛选

取对数期的OCCM-30,充分消化后均匀接种于6孔板中,每孔1×105个细胞,常规方法培养。待细胞长至60%时,吸去培养基,取收集的病毒上清液与普通OCCM-30培养液按1:1混匀后继续培养。6 h之后换成普通培养基,48 h之后开始用每毫升含2 μg的嘌呤霉素筛选,每天进行半量换液,连筛4 d。将筛出的细胞进行传代扩增,分别命名为阴性对照组(NC),Stat3抑制组A(SiA),Stat3抑制组B(SiB),用于下一步试验,并用荧光显微镜拍照,观察GFP情况。

1.2.5 实时荧光定量PCR(quantitative real-time polymerase chain reaction,qPCR)

用Trizol溶解收集细胞,并使用酚-氯仿提取各组总RNA。质检合格的RNA样品按照逆转录试剂盒的说明合成cDNA,按照qPCR试剂盒说明书对相关指标进行检测,以GAPDH作为内参。PCR参数:95 ℃ 30 s,经40个循环(95 ℃ 5 s,60 ℃ 30 s)。所有引物均由上海生工生物工程有限公司设计合成,见表 1

表 1 Real-time PCR引物序列
1.2.6

Western Blot收集细胞,用PBST清洗,并加入适当体积的细胞裂解液(含有蛋白酶抑制剂和磷酸酶抑制剂),在冰上裂解25-30 min,4 ℃、12 000 r/min离心10 min。收集上清液,采用BCA蛋白定量法测蛋白浓度,加相应体积的蛋白上样缓冲液煮沸至完全变性。以10 μl体系在10%SDS-PAGE凝胶上分离,然后转至PVDF膜(70 V,2 h)。在室温下,用含5%脱脂奶粉的TBST溶液孵育1 h,在一抗中(1:1 000)过夜,用TBST洗膜;在二抗(1:10 000)室温孵育2 h,最后用ECL化学发光法显影。

1.2.7 统计学处理

所有实验均独立重复3次。使用GraphPad Prism 5.0统计软件分析数据,用均数±标准差(x±s)表示数据,多组间差异用单因素方差分析法,组间两两比较采用t检验。P<0.05视为差异有统计学意义。

2 结果 2.1 GFP在OCCM-30细胞中的表达

用慢病毒感染OCCM-30细胞后,细胞生长状态良好。在荧光显微镜下可见阴性对照组,SiA组和SiB组均有明显的GFP。经药物筛选后,GFP表达率可达80%以上(图 1)。

图 1 荧光显微镜观察OCCM-30中的GFP表达(×100) A-C:GFP显微镜观察;D-F:普通显微镜观察;A、D:SiA实验组;B、E:SiB实验组;C、F:NC阴性对照组
2.2 慢病毒感染后Stat3 mRNA及蛋白表达情况

由qPCR结果(图 2)可见,细胞阻断Stat3后,SiB组Stat3的mRNA相对表达量下降,明显低于空白对照组和阴性对照组(P < 0.05)。而SiA组的效果不显著。Western Blot结果显示(图 2),SiB组Stat3的蛋白表达量较空白对照组和阴性对照组明显下降, 而SiA组的效果不显著。

图 2 OCCM-30细胞Stat3 mRNA和蛋白的表达 1:空白对照组;2:阴性对照组;3:SiA组;4:SiB组; 与空白对照组比较,**P < 0.05
2.3 阻断Stat3信号通路对OCCM-30细胞分化的影响

Real-time PCR(图 3)结果可见,Stat3通路被阻断后(SiB组),BSP,OCN,和Osterix的mRNA相对表达量下降,明显低于空白对照组和阴性对照组(P<0.05)。这些结果表明,抑制Stat3的表达可以抑制成牙骨质细胞的分化。

图 3 OCN,BSP,Osterix mRNA相对表达量 1:空白对照组;2:阴性对照组;3:Stat3抑制组;与空白对照组比较,**P<0.05
2.4 Stat3信号通路阻断后,抗凋亡蛋白、凋亡蛋白、自噬蛋白的表达情况

由Western Blot(图 4)结果可见,自噬相关指标Atg-5,Beclin-1的蛋白表达量较空白对照组和阴性对照组均下降,同时,Survivin的蛋白表达量降低,而cleaved caspase-3的表达量增加。

图 4 自噬蛋白、抗凋亡蛋白、凋亡蛋白的表达量 1:空白对照组;2:阴性对照组;3:Stat3抑制组
3 讨论

骨涎蛋白(bone sialoprotein,BSP)和骨钙素(osteocalcin,OCN)是成骨质细胞的分化标志蛋白,有研究表明在大鼠牙骨质结构中BSP和OPN在牙根发育过程中的表达特征与骨组织相似[3]。BSP蛋白对矿化沉积起正向调控作用,若BSP功能丧失,会导致骨形成和矿化速率的下降[4]。OCN在成骨细胞分泌的胞外基质的矿化过程中会表达增加,是骨形成晚期的特异性标志。锌指蛋白osterix是在成骨分化和骨形成过程中起重要作用的转录因子,能够正向调控成牙骨质细胞的分化。有实验结果表明,Stat3与肺纤维细胞的分化有关[5],本实验中发现,抑制Stat3后,分化相关指标表达量下降,即表明stat3可能与成牙骨质细胞的分化有关,其具体机制有待研究。

凋亡抑制基因Survivin是凋亡抑制蛋白家族成员,大部分通过Caspase途径抑制细胞色素C释放从而对凋亡起抑制作用[6],caspase分子是一类蛋白水解酶,在凋亡和炎症过程中起着重要作用。活化的caspase分子可以引起细胞凋亡,其中caspase-3是该家族中起关键作用的效应蛋白裂解液。在正畸牙移动的过程中,凋亡对成牙骨质细胞的功能有调控作用,本研究通过抑制Stat3来下调其下游的抗凋亡蛋白survivin,进而使cleaved caspase-3的表达量增加,诱导成牙骨质细胞细胞凋亡。Atg-5和Beclin-1是哺乳动物细胞自噬的标志性基因,并与自噬强度成正相关[7]。本研究中,抑制Stat3后,自噬相关蛋白表达量降低,表明自噬减弱。

综上,本研究成功构建了Stat3-shRNA慢病毒,并感染成牙骨质细胞,使细胞分化和自噬减弱,凋亡增强,其机制可能跟抑制Stat3信号通路有关。

参考文献
[1] 陈强, 林鹏, 陈路, 等. 成牙骨质细胞的研究进展[J]. 医学美学美容(中旬刊), 2014(5): 670-671.
Cheng Q, Lin P, Chen L, et al. Research progress of cementobast[J]. Medical Aesthetics and Cosmetology, 2014(5): 670-671.
[2] Liao CS, Cheng T, Wang S, et al. Shear stress inhibits IL-17A-mediated induction of osteoclastogenesis via osteocyte pathways[J]. Bone, 2017, 101: 10-20. DOI: 10.1016/j.bone.2017.04.003.
[3] Wu Y, Han X, Guo Y, et al. Response of immortalized murine cementoblast cells to hypoxia in vitro[J]. Arch Oral Biol, 2013, 58: 1718-1725. DOI: 10.1016/j.archoralbio.2013.08.001.
[4] Nollet M, Santucci-Darmanin S, Breuil V, et al. Autophagy in osteoblasts is involved in mineralization and bone homeostasis[J]. Autophagy, 2014, 10(11): 1965-1977. DOI: 10.4161/auto.36182.
[5] Papaioannou I, Xu S, Denton CP, et al. STAT3 controls COL1A2 enhancer activation cooperatively with JunB, regulates type Ⅰ collagen synthesis post-transcriptionally and is essential for lung myofibroblast differentiation[J]. Mol Biol Cell, 2017. Epub ahead of print. http://europepmc.org/abstract/MED/29142074
[6] Mobahat M, Narendran A, Riabowol K. Survivin as a preferential target for cancer therapy[J]. Int J Mol Sci, 2014, 15(2): 2494-2516. DOI: 10.3390/ijms15022494.
[7] 刘苗, 夏利平, 唐荣, 等. 阿伐他汀通过PI3K/Akt/mTOR途径调节白血病细胞自噬的作用及机制[J]. 武汉大学学报:医学版, 2016, 37(6): 875-879.
Liu M, Xia LP, Tang R, et al. Atorvastatin Regulates the autophagy of K562 Leukemic cells via the PI3K/AKT/mTOR pathway[J]. Medical Journal of Wuhan University, 2016, 37(6): 875-879.