扩展功能
文章信息
- 罗龙, 殷俊, 杨晓苏
- 硫化氢与MAPK/Nrf2信号通路关系的研究进展
- 国际神经病学神经外科学杂志, 2017, 44(6): 660-663
-
文章历史
收稿日期: 2017-02-06
修回日期: 2017-09-14
硫化氢(H2S)广泛存在于各种细胞中,在神经系统、心血管活动和消化系统调节等方面发挥着重要作用。丝裂原活化蛋白激酶(mitogen-activated protein kinase, MAPK)和转录因子E2相关因子2(nuclear factor erythroid2-related factor 2, Nrf2)在细胞增殖、分化和凋亡以及应激和炎症等多种生理和病理过程中发挥重要作用。目前关于H2S与MAPK/Nrf2信号转导途径关系已有大量报道,其应用价值也备受关注,文中根据H2S的生理功能,以及H2S与MAPK/Nrf2信号通路间关系进行综述。
1 硫化氢H2S在各组织器官广泛分布,体内以气态形式和硫氢化钠(sodium hydrosulfide, NaHS)存在。NaHS能解离成Na+和HS-,HS-能与体液中H+结合生成H2S。H2S与NaHS在体内维持一个动态平衡,主要通过胱硫醚β合成酶(cys-tathionineβ-synthase, CBS)、胱硫醚-γ-裂解酶(cys-tathionineγ-lyase, CSE)和巯基丙酮酸硫基转移酶(mercaptopyruvate sul-furtransferase, MPST)催化含硫氨基酸后生成,目前认为这三种酶具有组织特异性,CBS在小鼠主要分布于脑内,小鼠胚胎脑组织早期主要分布于室管膜附近的神经上皮细胞,后期则分布于放射状胶质细胞和星型胶质细胞,其催化硫化氢的合成受睾酮和硫腺苷甲硫氨酸的影响,人体CBS mRNA主要存在于脑、肺、肝肾。Ichinohe等[1]发现,唐氏综合征患者脑内CBS含量约正常人的3倍,这类患者常合并阿尔茨海默病,CBS富集于星型胶质细胞及神经纤维缠结区。CSE主要分布于脑、胰岛β细胞、血管组织等。Shibuya等[2]发现在脑内,天门冬氨酸氨基转移酶以L-半胱氨酸和α-酮戊二酸为底物生成3-巯基丙酮酸,后者在3MST的作用下生成H2S和丙酮酸盐,3MST主要分布于神经元。
硫化氢生理作用复杂,生理浓度的H2S具有抗氧化应激、抗炎和舒张血管等作用。H2S的生理浓度在大鼠脑内为50~160 μmol/L。Ren等[3]的研究显示,大鼠全脑缺血15 min后,用不同剂量外源性H2S腹腔注射,25 μmol/L的外源性H2S具有脑保护作用,而180 μmol/L的外源性H2S会加重脑损伤。殷俊等[4, 5]通过缺血2 h再灌注6 h~7 d的大鼠模型发现,50 μmol/L和100 μmol/L外源性硫化氢均能减小脑梗死体积,提高HSP20含量,降低TNF-α含量,100 μmol/L外源性H2S脑保护作用更明显。Li等[6]观察不同剂量外源性H2S对缺血21 h大鼠的影响发现,75 μmol/L外源性H2S具有保护作用,上调线粒体超氧化物歧化酶、谷胱甘肽过氧化物酶和bcl-2的含量,下调线粒体丙二醛、神经元bax和caspase3蛋白含量,而175 μmol/L外源性H2S则明显增大梗死体积。在细胞模型中,Tay等[7]在糖氧剥夺的SH-SY5Y细胞模型中发现,糖氧剥夺前15 min给予10~100 μmol/L外源性H2S,其具有剂量依赖的细胞保护作用。另外,有文献报道[8]外源性硫化氢能改善大鼠空间学习和脑损伤所致的记忆减退,减轻神经元水肿和较少萎缩。外源性硫化氢可通过活化ATP依赖的K+和CL-通道增加神经元内谷胱甘肽含量发挥抗氧化应激作用,并能增加线粒体内谷胱甘肽含量。
2 丝裂原活化蛋白激酶及转录因子E2相关因子2丝裂原活化蛋白激酶(MAPK)包含一组三级磷酸化依赖的激酶,MAPK被MAPK的激酶(MAPKK)磷酸化后激活,MAPKK被MAPKK的激酶(MAPKKK)磷酸化而激活,从而将MAPK和细胞表面的受体以及胞外的信号联系在一起。目前发现的MAPK信号通路成员共4个,包括细胞外信号调节激酶(extracellular signal regulated kinases, ERKs)以及ERK5/大丝裂素活化蛋白激酶1(big mitogen-activated protein kinase, BMK1)、c-Jun氨基端激酶(c-Jun amino-terminal kinase, JNK)和p38 MAPK。MAPK在各种细胞中广泛存在,在未受刺激的细胞中,MAPK主要存在于胞质中;受到刺激后,MAPK转向核内并使下游基因表达改变。ERK1/2单体分子质量为42~44KD,主要通过跨膜蛋白及主动转运进入核内。形成磷酸化加非磷酸化二聚体的ERK2更易于进入胞核,并发现形成二聚体进入胞核是MAPK家族的一个普遍现象。
MAPK参与多种生理病理过程,如细胞生长、增殖、分化和凋亡以及应激、炎症和耐药等。MAPK通路在卵母细胞的减数分裂、微管形成及纺锤体牵拉中发挥重要作用,特别是减数分裂的第二期。Liu等[9]报道MAPK通路在精子的极化和活化中起双重调节作用。活化的p38MAPK通路能够促进成骨细胞分化及矿化,促进骨骼形成。目前普遍认为MAPK通路在促进凋亡和抑制凋亡存在某种平衡,平衡打破后可引起不同的细胞效应。p38既能抗凋亡也能促进凋亡,其功能发挥与细胞种类及应激环境相关。近年发现MAPK路径与肿瘤耐药相关,非小细胞肺癌细胞通过p38通路对顺铂耐药,敲除p38MAPK基因或使用p38通路抑制剂能够逆转肿瘤细胞耐药并促进肿瘤细胞凋亡。转录因子E2相关因子2(Nrf2)与MAPK通路关系密切,众多研究发现H2S可通过促进Nrf2活化调节MAPK信号通路。Nrf2是细胞内抗炎和抗氧化应激的主要因子,其分子量为68 KD。未激活的Nrf2与Keap1结合,H2S能促进keap1/Nrf2解离并使Nrf2活化,激活后的Nrf2进入细胞核,与抗氧化反应元件(antioxidant response element, ARE)结合,发挥抗炎抗氧化作用[10, 11]。
3 H2S与MAPK/Nrf2信号转导途径的关系 3.1 H2S与ERK1/2信号通路Boulton等[12]于1990年首次克隆了编码ERK1/2的DNA链,并将其命名为ERK1(extracellular signal-regulated kinase 1)。ERK1/2是最早发现也是研究最多的MAPK家族成员。ERK1/2可被各种生长因子、离子射线和过氧化氢等活化,进而调节细胞的增殖与分化、形态维持、骨架构建、凋亡与恶变等一系列生理病理过程。Liu等[13]建立阿霉素干预H9c2的心肌细胞模型发现,阿霉素能促进H9c2心肌细胞ERK1/2磷酸化促进细胞凋亡,预先用硫氢化钠处理后能使ERK1/2的磷酸化减少,并上调抗凋亡蛋白Bcl-2,下调促凋亡蛋白Bax,使用选择性ERK1/2抑制剂干预得到类似于硫化氢干预的结果,因此推论,H2S通过减少ERK1/2磷酸化减弱阿霉素的心肌细胞毒性。Ha等[14]发现硫化氢能减轻类软骨炎细胞的炎症反应,下调促炎因子IL-1β,而IL-1β能刺激ERK1/2/NF-κB表达,说明ERK1/2/NF-κB参与IL-1β下游炎症反应,而H2S能通过下调ERK1/2/NF-κB发挥抗炎作用。另外,体外实验发现H2S通过抑制P38、ERK、JNK、PLC-γ2和c-PLA2磷酸化从而抑制胶原诱导的血小板聚集。
3.2 H2S与ERK3/4信号通路ERK3又称MAPK6,是一种非典型的MAPK,分子量为100 KD。Pew等[15]通过对比妊娠中期的ERK3基因敲除小鼠及野生小鼠,发现野生小鼠在糖皮质激素刺激后肺表面活性蛋白B明显增加,而基因敲除鼠对糖皮质激素反应较野生鼠明显差,由此说明ERK3在糖皮质激素促进胎肺成熟中发挥关键作用,ERK3基因缺陷或缺失小鼠明显的生长缓慢、容易发绀及早期死亡,因此,ERK3是提高婴儿成活率的新的治疗靶点。Bian等[16]对肺癌细胞进行研究发现,络氨酰DNA磷酸二酯酶(tyrosyl DNA phosphodiesterase 2, TDP2)能够修复拓扑异构酶Ⅱ(topoisomerase 2, Top2)抑制剂引起的DNA损伤,活化的ERK3能调节TDP2的磷酸化影响其活性,使肺癌细胞DNA损伤减小,由此得出结论,活化的ERK3能够削弱Top2抑制剂引起的DNA损伤。Marguis等[17]的研究发现,ERK3参与T细胞受体(T cell receptor, TCR)诱导的T细胞活化,ERK3缺陷的T细胞在抗CD3抗体的刺激下应答低下。H2S与ERK3/4信号通路关系目前缺乏相关研究报道。
3.3 H2S与ERK5信号通路ERK5又叫BMK1,分子量为120 KD。ERK5能被氧化剂、细胞内渗透压变化、表皮生长因子(epidermal growth factor, EGF)和神经生长因子等活化[18]。ERK5生理作用复杂,参与细胞增殖及凋亡、有丝分裂、细胞内信号转导、调控癌基因、恶性肿瘤形成、耐药以及胚胎干细胞的分化[19]等。近年来,对ERK5的研究主要集中在ERK5与肿瘤关系,EGF可活化ERK5,后者促进DNA损伤诱导的细胞凋亡因子(DNA damage induced apoptosis suppressor, DDIAS)表达,后者通过上调β链蛋白(β-catenin)基因促进肿瘤细胞转移。microRNA-200b-3p能够下调ERK5,抑制胶质瘤增殖及上皮间质转换(epithelial-mesenchymal tranzition, EMT)。有文献[22]报道ERK5与乳腺癌对三苯氧胺耐药及复发相关,故ERK5抑制剂有望成为新的抗肿瘤药物。H2S与ERK5信号通路关系目前缺乏相关研究报道。
3.4 H2S与JNK和P38信号通路c-Jan氨基末端激酶(c-JunN-terminal kinase, JNK)又被称为应激活化蛋白激酶(stress activated kinase, SAPK),是1990年被发现的丝氨酸/苏氨酸活化蛋白激酶。分子量46 KD的JNK 1和分子量55 KD的JNK 2几乎在所有细胞均有表达,而JNK 3选择性在脑、心和睾丸中表达。p38是p38 MAPK通路的主要蛋白,其分子量为38 KD,与JNK同属SAPK。JNK及p38能被多种刺激所激活,包括肿瘤坏死因子、白介素-1、游离脂肪酸、活性氧族、内质网应激、毒素、药物、病原体和代谢改变等[23]。Zhou等[24]通过体外和体内实验证实H2S通过抑制JNK和p38,减少高糖诱导的细胞凋亡。Pan等[25]发现通过抑制CSE使内源性H2S减少能明显抑制肝癌细胞增殖,并发现磷酸化的JNK/p38起促进凋亡的作用。Guo等[10]的研究表明,H2S能减轻胃粘膜上皮细胞缺血再灌注损伤,抑制JNK和p38的活化及NF-κB活化是抗炎和抗氧化应激的关键因素,由此得出结论,H2S或许是急性胃粘膜损伤新的治疗方法。类似的,Wang等[26]的实验表明H2S通过下调JNK/NF-κB抗氧化型低密度脂蛋白(oxidized low density lipoprotein, OX-LDL)诱导的巨噬细胞炎症反应,这可能成为治疗动脉粥样硬化的新途径。另外,有研究[27]发现H2S联合PNU通过抑制JNK和p38通路能提高因休克或缺血再灌注所降低的平均动脉压。
3.5 H2S与Nrf2信号通路近年研究发现,H2S通过介导Nrf2活化参与抗氧化和抗炎等多种生理病理过程,H2S活化Nrf2可抑制糖尿病诱发的动脉粥样硬化。Huang等[28]对高血压肾损伤模型Dahl大鼠研究发现,H2S能够活化Nrf2对抗高盐所致的肾损伤。有文献[29]报道microRNA-144、microRNA-a和microRNA-b/c调节Nrf2的活化,活化的Nrf2能够减轻支气管哮喘的炎症反应,下调炎性介质IL-4和IL-10,可减少炎症细胞在支气管肺泡的渗入及黏附,还可减少活性氧族(8-0HdG、8-iso-PGF2α和NF-κB)含量。Nrf2与MAPK通路相互关系目前已有大量研究,在吸烟大鼠模型中[30],H2S对肺纤维化起保护作用,H2S通过促进Nrf2进入胞核、抑制P38、JNK和ERK1/2磷酸化并抑制NF-κB活化从而起到抗炎和抗氧化应激作用。
4 展望迄今为止,关于H2S、MAPK /Nrf2信号通路以及两者之间关系研究已有大量报道,但仍有问题存在。硫化氢具有抗炎作用,而H2S与颅脑损伤的严重程度呈负相关对传统观念是一个冲击[31];H2S在不同组织安全剂量范围有待进一步验证及探索;MAPK/Nrf2通路与其他因子的相互作用及MAPK级联通路之间的交叉整合机制尚不十分明确。另外,对H2S与ERK3/4和ERK5信号转导途径之间关系还缺少研究。近年来,越来越多的研究者以MAPK/Nrf2通路为靶点,阐明其与疾病的发生发展规律,特别是肿瘤,在攻克疾病方面有巨大的推动作用。
| [1] |
Ichinohe A, Kanaumi T, Takashima S, et al. Cystathionine beta-synthase is enriched in the brains of Down's patients[J]. Biochem Biophys Res Commun, 2005, 338(3): 1547-1550. DOI:10.1016/j.bbrc.2005.10.118 |
| [2] |
Shibuya N, Tanaka M, Yoshida M, et al. 3-Mercaptopyruvate sulfurtransferase produces hydrogen sulfide and bound sulfane sulfur in the brain[J]. Antioxid Redox Signal, 2009, 11(4): 703-714. DOI:10.1089/ars.2008.2253 |
| [3] |
Ren C, Du A, Li D, et al. Dynamic change of hydrogen sulfide during global cerebral ischemia-reperfusion and its effect in rats[J]. Brain Res, 2010, 1345: 197-205. DOI:10.1016/j.brainres.2010.05.017 |
| [4] |
殷俊, 曾庆海, 沈琴, 等. 外源性硫化氢对脑缺血再灌注大鼠神经功能的作用及其机制探讨[J]. 中华医学杂志, 2013, 93(11): 868-872. DOI:10.3760/cma.j.issn.0376-2491.2013.11.019 |
| [5] |
Yin J, Tu C, Zhao J, et al. Exogenous hydrogen sulfide protects against global cerebral ischemia/reperfusion injury via its anti-oxidative, anti-inflammatory and anti-apoptotic effects in rats[J]. Brain Res, 2013, 1491: 188-196. DOI:10.1016/j.brainres.2012.10.046 |
| [6] |
Li GF, Luo HK, Li LF, et al. Dual effects of hydrogen sulphide on focal cerebral ischaemic injury via modulation of oxidative stress-induced apoptosis[J]. Clin Exp Pharmacol Physiol, 2012, 39(9): 765-771. DOI:10.1111/j.1440-1681.2012.05731.x |
| [7] |
Tay AS, Hu LF, Lu M, et al. Hydrogen sulfide protects neurons against hypoxic injury via stimulation of ATP-sensitive potassium channel/protein kinase C/extracellular signal-regulated kinase/heat shock protein 90 pathway[J]. Neuroscience, 2010, 167(2): 277-286. DOI:10.1016/j.neuroscience.2010.02.006 |
| [8] |
Li Z, Wang Y, Xie Y, et al. Protective effects of exogenous hydrogen sulfide on neurons of hippocampus in a rat model of brain ischemia[J]. Neurochem Res, 2011, 36(10): 1840-1849. DOI:10.1007/s11064-011-0502-6 |
| [9] |
Liu Z, Wang B, He R, et al. Calcium signaling and the MAPK cascade are required for sperm activation in Caenorhabditis elegans[J]. Biochim Biophys Acta, 2014, 1843(2): 299-308. DOI:10.1016/j.bbamcr.2013.11.001 |
| [10] |
Guo C, Liang F, Shah MW, et al. Hydrogen sulfide protected gastric epithelial cell from ischemia/reperfusion injury by Keap1 s-sulfhydration, MAPK dependent anti-apoptosis and NF-kappaB dependent anti-inflammation pathway[J]. Eur J Pharmacol, 2014, 725: 70-78. DOI:10.1016/j.ejphar.2014.01.009 |
| [11] |
Zheng J, Zhao T, Yuan Y, et al. Hydrogen sulfide (H2S) attenuates uranium-induced acute nephrotoxicity through oxidative stress and inflammatory response via Nrf2-NF-kappaB pathways[J]. Chem Biol Interact, 2015, 242: 353-362. DOI:10.1016/j.cbi.2015.10.021 |
| [12] |
Boulton TG, Yancopoulos GD, Gregory JS, et al. An insulin-stimulated protein kinase similar to yeast kinases involved in cell cycle control[J]. Science, 1990, 249(4964): 64-67. DOI:10.1126/science.2164259 |
| [13] |
Liu MH, Lin XL, Zhang Y, et al. Hydrogen sulfide attenuates doxorubicin-induced cardiotoxicity by inhibiting reactive oxygen species-activated extracellular signal-regulated kinase 1/2 in H9c2 cardiac myocytes[J]. Mol Med Rep, 2015, 12(5): 6841-6848. DOI:10.3892/mmr.2015.4234 |
| [14] |
Ha C, Tian S, Sun K, et al. Hydrogen sulfide attenuates IL-1beta-induced inflammatory signaling and dysfunction of osteoarthritic chondrocytes[J]. Int J Mol Med, 2015, 35(6): 1657-1666. DOI:10.3892/ijmm.2015.2183 |
| [15] |
Pew BK, Harris RA, Sbrana E, et al. Structural and transcriptomic response to antenatal corticosteroids in an Erk3-null mouse model of respiratory distress[J]. Am J Obstet Gynecol, 2016, 215(3): 381-384. |
| [16] |
Bian K, Muppani NR, Elkhadragy L, et al. ERK3 regulates TDP2-mediated DNA damage response and chemoresistance in lung cancer cells[J]. Oncotarget, 2016, 7(6): 6665-6675. |
| [17] |
Marquis M, Boulet S, Mathien S, et al. The non-classical MAP kinase ERK3 controls T cell activation[J]. PLoS One, 2014, 9(1): e86681. DOI:10.1371/journal.pone.0086681 |
| [18] |
Kamakura S, Moriguchi T, Nishida E. Activation of the protein kinase ERK5/BMK1 by receptor tyrosine kinases. Identification and characterization of a signaling pathway to the nucleus[J]. J Biol Chem, 1999, 274(37): 26563-26571. DOI:10.1074/jbc.274.37.26563 |
| [19] |
Williams CA, Fernandez-Alonso R, Wang J, et al. Erk5 Is a Key Regulator of Naive-Primed Transition and Embryonic Stem Cell Identity[J]. Cell Rep, 2016, 16(7): 1820-1828. DOI:10.1016/j.celrep.2016.07.033 |
| [20] |
Wrobel K, Zhao YC, Kulkoyluoglu E, et al. ERalpha-XPO1 crosstalk controls tamoxifen sensitivity in tumors by altering ERK5 cellular localization[J]. Mol Endocrinol, 2016, 30(10): 1029-1045. DOI:10.1210/me.2016-1101 |
| [21] |
Seki E, Brenner DA, Karin M. A liver full of JNK:signaling in regulation of cell function and disease pathogenesis, and clinical approaches[J]. Gastroenterology, 2012, 143(2): 307-320. DOI:10.1053/j.gastro.2012.06.004 |
| [22] |
Zhou X, An G, Lu X. Hydrogen sulfide attenuates the development of diabetic cardiomyopathy[J]. Clin Sci (Lond), 2015, 128(5): 325-335. DOI:10.1042/CS20140460 |
| [23] |
Pan Y, Ye S, Yuan D, et al. Hydrogen sulfide (H2S)/cystathionine gamma-lyase (CSE) pathway contributes to the proliferation of hepatoma cells[J]. Mutat Res, 2014, 763-764: 10-18. DOI:10.1016/j.mrfmmm.2014.03.002 |
| [24] |
Wang XH, Wang F, You SJ, et al. Dysregulation of cystathionine gamma-lyase (CSE)/hydrogen sulfide pathway contributes to ox-LDL-induced inflammation in macrophage[J]. Cell Signal, 2013, 25(11): 2255-2262. DOI:10.1016/j.cellsig.2013.07.010 |
| [25] |
Issa K, Kimmoun A, Collin S, et al. Compared effects of inhibition and exogenous administration of hydrogen sulphide in ischaemia-reperfusion injury[J]. Crit Care, 2013, 17(4): R129. DOI:10.1186/cc12808 |
| [26] |
Huang P, Shen Z, Liu J, et al. Hydrogen Sulfide Inhibits High-Salt Diet-Induced Renal Oxidative Stress and Kidney Injury in Dahl Rats[J]. Oxid Med Cell Longev, 2016, 2016: 2807490. |
| [27] |
Ho CY, Lu CC, Weng CJ, et al. Protective Effects of Diallyl Sulfide on Ovalbumin-Induced Pulmonary Inflammation of Allergic Asthma Mice by MicroRNA-144, -34a, and -34b/c-Modulated Nrf2 Activation[J]. J Agric Food Chem, 2016, 64(1): 151-160. DOI:10.1021/acs.jafc.5b04861 |
| [28] |
Zhou X, An G, Chen J. Inhibitory effects of hydrogen sulphide on pulmonary fibrosis in smoking rats via attenuation of oxidative stress and inflammation[J]. J Cell Mol Med, 2014, 18(6): 1098-1103. DOI:10.1111/jcmm.2014.18.issue-6 |
| [29] |
Marquis M, Boulet S, Mathien S, et al. The non-classical MAP kinase ERK3 controls T cell activation[J]. PLoS One, 2014, 9(1): e86681. DOI:10.1371/journal.pone.0086681 |
2017, Vol. 44


