国际神经病学神经外科学杂志  2014, Vol. 41 Issue (4): 385-388

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王凯, 陈世文
脑红蛋白在创伤性脑损伤中的研究进展
国际神经病学神经外科学杂志, 2014, 41(4): 385-388
Disease Surveillance, 2014, 41(4): 385-388

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收稿日期:2014-05-19
修回日期:2014-08-18
脑红蛋白在创伤性脑损伤中的研究进展
王凯, 陈世文    
苏州大学上海市第六人民医院神经外科, 上海 200233
摘要:脑红蛋白广泛分布于脑内神经元,能可逆性地与氧结合,在缺血缺氧的状态下表达增加并发挥显著的神经保护作用.近年来研究发现创伤性脑损伤后脑组织脑红蛋白的表达反应性增高并表现出良好的神经保护作用.本文就近年来脑红蛋白在创伤性脑损伤中的研究进展作一综述.
关键词脑红蛋白     创伤性脑损伤     神经保护    

脑红蛋白(Neuroglobin,Ngb)是在2000年由Burmester等[1]首次发现并报道的一种携氧球蛋白,属于血红素类球蛋白,在大脑神经元细胞中广泛表达。Ngb与氧有很高的亲和力,能可逆性地与氧结合,在神经系统氧的摄取、运输和利用的过程中起着重要作用。创伤性脑损伤(Traumatic Brain Injury,TBI)后脑组织出现继发性缺血缺氧改变,研究表明脑组织缺血缺氧状态下Ngb表达增高并表现出显著的神经保护作用。 1 Ngb的结构与分布 1.1 Ngb的结构

Ngb是由151个氨基酸组成的单一多肽链,相对分子质量为17KD,其编码基因位于染色体14q24[1]。Ngb是含有卟啉环的亚铁血红素球蛋白,在生理条件下Ngb主要以脱氧六配体的形式存在,而在病理状态下主要以五配体的突变体形式存在[2]。Ngb末端组氨酸残基(His E7)占据亚铁血红素的第6个配位键位点,氧和一氧化碳等外源性配体须替换末端的His E7来和Ngb结合[2]。通过光谱分析发现,脑红蛋白中的血红素嵌在蛋白质的口袋里,远端血红素口袋中存在多个界限构象和多个一氧化碳停泊位点,这些位点可供配体移动[2]。这种特殊的结构促进了氧和亚铁血红素的结合,使得Ngb表现出较高的氧结合率和较低的氧解离率。 1.2 Ngb的分布

Burmester等[1]用Northen杂交和原位杂交分析发现NGB广泛分布于人和小鼠脑内的神经元,尤其在额叶、下丘脑和丘脑表达最强。邓美玉等[3]利用免疫组织化学方法分析发现,Ngb蛋白免疫反应阳性物质在大鼠脑中特异性的分布于大脑皮质、海马、丘脑、下丘脑、嗅球和小脑。Hundahl等[4]对人脑标本研究发现,人脑中Ngb的分布与啮齿类动物相似,在下丘脑、杏仁核和中脑被盖部高度表达,在大脑皮质也有表达,但是在小脑皮质和海马没有检测到。不同脑区中脑红蛋白含量不同,这与不同脑区对缺氧损害的耐受性是一致的,Ngb含量越低,组织对缺氧的耐受性越差[1]

Schmidt等[5]发现Ngb在视网膜神经元中较高表达,约为脑内浓度的100倍。Ngb在外周神经系统和一些代谢活跃的内分泌组织,如肾上腺、垂体等也有表达[6]2 TBI后Ngb的表达变化

很多学者对不同TBI动物模型(包括控制性皮质撞击模型伤、自由落体脑外伤模型)后Ngb的表达进行了测定,发现TBI后损伤灶周围半影区皮质Ngb的基因和蛋白表达均显著增高[7, 8, 9, 10, 11, 12, 13]。陈雪梅等[13]应用大鼠局灶性脑挫伤模型研究发现大鼠脑挫伤后打击周边缘区Ngb mRNA的表达水平明显增高;而损伤区Ngb mRNA表达则相反,在伤后15分钟开始下降,24小时降至最低水平;非损伤区皮质Ngb mRNA表达和打击周边缘区一样,也强于正常皮质,只是表达水平远不及打击周边缘区。出现这样的表达现象,可能是由于损伤区机械性暴力对神经细胞造成直接损伤导致原发性神经元坏死,使Ngb合成表达障碍;而在损伤周边缘区和损伤侧皮质由于脑微循环障碍、继发性脑缺血缺氧,促使Ngb合成表达增加。一些学者的研究结果显示在TBI后在脑损伤灶同侧的海马Ngb的表达也增强[10, 11, 12]

TBI后Ngb的表达并非无限制的增高,而是会在某个时间点达到高峰。多数实验结果显示Ngb蛋白表达只有一个高峰,但高峰时间却不尽相同(分布在伤后6小时到7天不等),随后表达逐渐降低[8、11、14-15],但Lin等[7]对大鼠重度闭合性脑损伤模型的研究结果显示Ngb mRNA分别在30分钟和48小时大脑皮层表达达高峰,Ngb在伤后30分钟升高,分别在2小时和5天达高峰,从而认为TBI后Ngb 的基因和蛋白表达呈双峰变化。总之,TBI后Ngb的表达水平随时间的变化趋势尚没有形成统一的认识[7-8、11、14-15],这可能与不同实验的动物模型(实验动物的选择、TBI的致伤方式、损伤的程度等)、测定时间点、实验仪器这几个方面的差别有关。 Ngb的表达水平与TBI的严重程度有关。Valentina等[14]通过对不同严重程度的大鼠弥漫性轴索损伤模型研究发现:重度脑损伤和轻度脑损伤后Ngb的表达水平与对照组相比均增高,且重度脑损伤的Ngb表达水平在伤后12小时、24小时、48小时、120小时均明显高于轻度脑损伤。Shang等[15]的研究也得出了相似的结论。以上研究说明TBI程度越重,Ngb的表达水平越高。 以前的研究认为Ngb在神经系统中是神经元细胞特有的表达产物,但DellaValle等[10]研究发现在生理状态下Ngb只在神经元细胞表达,但在某些病理状态下(包括TBI、脑型疟、自身免疫性脑脊髓炎)反应性星形胶质细胞和参与瘢痕形成的星形胶质细胞也表达Ngb,TBI后3天损伤灶周围反应性星形胶质细胞表达Ngb,不过有趣的是,TBI后10天时Ngb表达只局限在损伤灶内的星形胶质细胞,在损伤灶周围的星形胶质细胞未能检测到,这可能与星形胶质细胞从损伤灶周围向中心迁移参与受损脑组织瘢痕修复有关。Taylor等[11]的研究结果也显示小鼠TBI后在损伤皮质及同侧海马的神经元细胞和神经胶质细胞均有Ngb表达。 3 Ngb的神经保护作用及机制 3.1 神经保护作用

Sun等[16]研究发现,当培养的小鼠皮质神经元氧剥夺时,Ngb的表达上升;用反义寡核苷酸技术去除培养的神经元中的Ngb mRNA能加重神经元的缺氧损害;反之,在体外培养的转基因神经元中,Ngb的高度表达能提高神经元在缺氧状态下的存活率。他们还以腺病毒为载体将Ngb cDNA转染入大鼠脑神经元中,发现急性缺血状态下大鼠脑梗死体积较对照组缩小约50%,而利用脑室内注射反义寡核苷酸减少Ngb表达时,脑梗死体积较对照组增加60%,说明在缺血缺氧状态下Ngb对脑组织有神经保护作用[17]。很多学者的实验也证实了这一点。

近年来一些研究发现Ngb对TBI后的脑组织也有保护作用[7-8、11-12、15]。Shang等[15]通过体外培养神经元细胞划伤模型的研究发现:Ngb过表达能明显提高机械性损伤神经元细胞的存活率,表明Ngb具有显著的神经保护作用。Zhao等[8]通过对小鼠TBI模型的研究发现,Ngb过表达的转基因小鼠TBI后3周脑损伤灶的体积较野生型小鼠明显减小。以上结果显示:TBI后Ngb无论在体外细胞培养水平还是动物体内水平均能发挥神经保护作用。 3.2 神经保护机制

关于Ngb的神经保护机制目前仍未完全阐明,先前的实验研究表明脑缺血缺氧状态下Ngb作为内源性因子可能通过以下几个方面发挥神经保护作用:①转运和储存氧:Ngb与氧有很高的亲和力,能可逆性地与氧结合,在缺氧状态下Ngb在线粒体周围高表达,从而促进氧向线粒体扩散或直接介导氧向线粒体内传递,增加代谢活跃的神经组织的供氧,促进三磷酸腺苷(adenosine tri-phosphate,ATP)的产生,维持神经细胞的功能[6、20]。②抑制凋亡:Ngb能维持细胞色素C在一个非凋亡的氧化态来抑制内源性细胞凋亡途径[18]。③对抗自由基的毒性作用:过表达的Ngb使得细胞对一氧化氮及其产物的敏感性降低,同时能减轻过氧化氢诱导的活性氧和活性氮的累积并限制脂质过氧化反应,减少氧化应激产生的自由基毒性作用[8, 19, 20, 21, 22]。④维持神经元体内金属离子的平衡:缺氧神经元体内的钙、铁、铜、锌的浓度增加,促进了炎症反应、线粒体功能的紊乱[23]。缺氧状态下Ngb抑制钙离子内流,减少细胞对铁、铜、锌的吸收,进而抑制细胞的坏死和凋亡 [23]。⑤维持线粒体的功能:Ngb能够抑制缺氧神经元体内线粒体的聚集,并能激活线粒体的ATP敏感的钾离子通道,从而减少氧化应激和增加细胞内的ATP水平 [20、24]。

TBI后脑组织继发性缺血缺氧主要发生于损伤灶周围半影区,与Ngb表达增高的部位一致,因此TBI后Ngb的神经保护机制可能与缺血缺氧状态下的神经保护机制有相同之处。Lin等[7]研究发现凋亡相关的Bax/Bcl-2比值在大鼠TBI后急剧上升,但是其上升速率在Ngb表达急剧升高时明显下降,提示TBI后Ngb可能通过调节Bax/Bcl-2的比值来发挥抗凋亡作用。Zhao等[8]的研究结果显示在TBI后6小时Ngb过表达的转基因小鼠脑中氧化损伤标记物3-硝基酪氨酸(3-NT)较野生型小鼠明显减少,提示Ngb的过表达可能减轻脑组织的氧化应激损伤。而Valentina等[14]的研究结果显示轻度TBI后Ngb的基因和蛋白表达并没有随着氧化/抗氧化平衡的短暂变化而发生明显变化,从而提出了不同的观点,认为:Ngb不是作为内源性神经抗氧化剂通过抑制过氧化损害发挥作用。这可能是由于轻度TBI后脑组织虽然有损伤,但是损伤程度不足以引起Ngb表达的明显变化;或者目前的研究检测手段不足以精确检测Ngb的表达的轻微变化;亦或者Ngb的神经保护作用的确不是通过维持氧化/抗氧化平衡来实现,而是通过其他机制发挥作用,这方面仍需进一步研究。 4 Ngb对TBI预后的影响及应用前景

Taylor等[11]通过对Ngb过表达的转基因小鼠和野生型小鼠的对比实验发现,TBI后转基因小鼠Ngb的表达遍及整个脑组织,而野生型小鼠则主要集中在受伤皮质及同侧海马,转基因小鼠和野生型小鼠在伤后不同时间点的感觉运动功能均下降,但转基因小鼠在伤后2天、3天和7天的感觉运动功能明显好于野生型小鼠,并且在伤后7天时转基因小鼠基本恢复到与受伤前相近的水平,说明Ngb过表达能改善TBI的预后。Zhao 等[8]也做了相似的试验,结果显示:Ngb无论是受伤前基础表达水平伤后6小时的表达水平,转基因小鼠均显著高于野生型小鼠;而脑外伤后3周,Ngb过表达的转基因小鼠尽管损伤灶体积明显小于野生型小鼠,但在感觉运动和空间记忆等功能缺损的恢复方面并没有明显的差别。两个相似的实验却得到了不同的结论,可能是由于二者对伤后神经功能障碍的评估标准、动物模型的脑损伤部位和影响参数的选择不同造成的。Chuang等[9]对196例重度TBI的白种人患者的研究发现,Ngb的基因多态性与外伤性脑损伤的预后相关。目前中重度TBI治疗的预后还不尽如人意,鉴于Ngb在实验中对TBI具有神经保护作用,其将来有可能使TBI的治疗有所突破。

提高神经元体内Ngb的水平可能有助于TBI的治疗。由于哺乳动物的Ngb是一种细胞内蛋白,不能穿过细胞膜[25],所以直接应用外源性的Ngb不是一种可行性的治疗措施。有学者尝试通过间接途径来提高Ngb的表达水平,并发现去铁胺、肉桂酸和丙戊酸在体外培养的条件下能提高神经元细胞体内Ngb的表达[26],通过提高Ngb的表达治疗TBI具有令人期待的前景。 5 展望

减轻继发性神经损害是临床治疗TBI关键。Ngb特有的体内分布、表达特点和神经保护功能为人们寻找治疗TBI新的有效途径提供了可能。过去的研究发现Ngb在TBI的病程进展过程中也能发挥重要神经保护作用,并且其过表达能有效地改善TBI的预后,但是Ngb的神经保护机制仍不完全明确。有关Ngb在TBI方面的研究主要还处于动物实验阶段,进一步探索Ngb的神经保护机制及如何在避免附加损伤的前提下提高Ngb的水平并应用于临床是今后的研究方向。

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