中华流行病学杂志  2022, Vol. 43 Issue (5): 728-733   PDF    
http://dx.doi.org/10.3760/cma.j.cn112338-20211010-00779
中华医学会主办。
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文章信息

王婷, 王丹丹, 陈文鑫, 晋聪, 李雁笛, 扆琳珠, 丰淑英, 汪波, 冯永亮, 王素萍.
Wang Ting, Wang Dandan, Chen Wenxin, Jin Cong, Li Yandi, Yi Linzhu, Feng Shuying, Wang Bo, Feng Yongliang, Wang Suping
HBsAg阳性母亲C基因型HBV DNA CpG岛分布特点和宫内传播的关系
Distributive characteristics of HBV DNA CpG islands in HBsAg positive mothers and its relationship with intrauterine transmission
中华流行病学杂志, 2022, 43(5): 728-733
Chinese Journal of Epidemiology, 2022, 43(5): 728-733
http://dx.doi.org/10.3760/cma.j.cn112338-20211010-00779

文章历史

收稿日期: 2021-10-10
HBsAg阳性母亲C基因型HBV DNA CpG岛分布特点和宫内传播的关系
王婷1 , 王丹丹1 , 陈文鑫1 , 晋聪1 , 李雁笛1 , 扆琳珠1 , 丰淑英2 , 汪波2 , 冯永亮1 , 王素萍1     
1. 山西医科大学公共卫生学院流行病学教研室/临床流行病学与循证医学中心,太原 030001;
2. 太原市第三人民医院妇产科,太原 030001
摘要: 目的 探讨HBsAg阳性母亲C基因型HBV DNA CpG岛的类型、长度、CG位点等的分布特点及其与HBV宫内传播的关系,为HBV宫内传播机制研究提供新视角。方法 连续收集2011年6月至2013年7月太原市第三人民医院妇产科住院分娩的HBsAg阳性母亲及其新生儿,通过面对面问卷调查及电子病历收集流行病学资料,采用电化学发光法和荧光定量PCR分别检测母亲及新生儿HBV血清学标志物及血清HBV DNA。以新生儿出生24 h内乙型肝炎(乙肝)疫苗/乙肝免疫球蛋白注射前股静脉血HBsAg和/或HBV DNA阳性判定为HBV宫内传播。将HBV宫内传播者中HBV DNA载量≥106 IU/ml(满足克隆测序要求)的22例母亲及其新生儿作为宫内传播组,从未发生宫内传播者中随机选取HBV DNA载量≥106 IU/ml的22例作为对照组,以HBV DNA测序分型结果为C基因型的39例母亲进行HBV DNA CpG岛分布预测等分析。结果 39例HBV C基因型的母亲中,宫内传播组19例,对照组20例。39例C基因型者HBV DNA均含有传统CpG岛Ⅱ、岛Ⅲ,而对照组中有传统CpG岛Ⅰ以及新型CpG岛Ⅳ、岛Ⅴ;HBV宫内传播组和对照组母亲携带的HBV DNA CpG岛Ⅱ、岛Ⅲ长度和CpG岛Ⅱ CG位点个数分布不同,差异有统计学意义(P < 0.05),HBV宫内传播组中CpG岛Ⅱ长度≥518 bp且其CG位点个数≥40个(11/19)的比例明显高于对照组(2/20),差异有统计学意义(P < 0.05);位于X基因启动子区的CpG岛Ⅱ长度和CG位点个数大于对照组,差异有统计学意义(P < 0.05)。HBV宫内传播组中大部分母亲(12/19)携带的HBV DNA CpG岛Ⅱ完全覆盖了Xp区,明显多于对照组(5/20),且其HBV DNA Xp区CG位点个数大于对照组,差异有统计学意义(P < 0.05)。结论 HBsAg阳性母亲C基因型HBV DNA CpG岛分布与宫内传播有关,CpG岛Ⅱ长度长、CG位点个数多可能会增加HBV宫内传播的发生风险。
关键词: 乙型肝炎病毒    C基因型    CpG岛    宫内传播    
Distributive characteristics of HBV DNA CpG islands in HBsAg positive mothers and its relationship with intrauterine transmission
Wang Ting1 , Wang Dandan1 , Chen Wenxin1 , Jin Cong1 , Li Yandi1 , Yi Linzhu1 , Feng Shuying2 , Wang Bo2 , Feng Yongliang1 , Wang Suping1     
1. Department of Epidemiology/Center of Clinical Epidemiology and Evidence-Based Medicine, Shanxi Medical University, Taiyuan 030001, China;
2. Department of Obstetrics and Gynaecology, the Third People Hospital of Taiyuan City, Taiyuan 030001, China
Abstract: Objective To investigate the type, length, and CG loci of HBV DNA CpG islands in HBsAg positive maternal C genotype and its relationship with intrauterine HBV transmission, so as to provide a new perspective for the study of intrauterine transmission of HBV. Methods From June 2011 to July 2013, HBsAg-positive mothers and their newborns who delivered in the obstetrics and gynecology department of the Third People's Hospital of Taiyuan were collected. Epidemiological data were collected through face-to-face questionnaires and electronic medical records. Serum HBV markers and serum HBV DNA were detected by electrochemiluminescence and quantitative fluorescence PCR, respectively. Intrauterine transmission of HBV was determined by positive HBsAg and/or HBV DNA in femoral venous blood before injection of HBV vaccine/Hepatitis B immunoglobulin within 24 h of birth. A total of 22 mothers and their newborns with HBV DNA load ≥106 IU/ml in intrauterine transmission were selected as the intrauterine transmission group, and 22 mothers with HBV DNA load ≥106 IU/ml without intrauterine transmission were chosen as the control group by random seed method. The distribution prediction of CpG islands of HBV DNA in 39 mothers with genotype C by HBV DNA sequencing was analyzed. Results Among 39 mothers with HBV C genotype, 19 were in the intrauterine transmission group, and 20 were in the control group. The HBV DNA of 39 patients with genotype C traditional CpG island Ⅱ and Ⅲ, while the control group had traditional CpG island Ⅰ and novel CpG island Ⅳ and Ⅴ. The length of CpG island Ⅱ and Ⅲ and the number of CG loci of CpG island Ⅱ in the intrauterine transmission group differed from those in the control group (P < 0.05). The CpG island Ⅱ length ≥518 bp and the number of CG loci ≥40 in the intrauterine transmission group (11/19) were significantly higher than those in the control group (2/20) (P < 0.05). The length of CpG island Ⅱ and the number of CG loci in the X gene promoter region (Xp region) were higher than those in the control group (P < 0.05). In the HBV intrauterine transmission group, most of maternal (12/19) HBV DNA CpG island Ⅱ completely covered the Xp region, which was significantly higher than that in the control group (5/20), and the number of HBV DNA Xp region CG loci was higher than that in the control group (P < 0.05). Conclusions The distribution of maternal C genotype HBV DNA CpG islands is related to intrauterine transmission. The length of CpG island Ⅱ and the number of CG sites may increase the risk of intrauterine transmission of HBV.
Key words: Hepatitis B virus    Genotype C    CpG islands    Intrauterine transmission    

我国是HBV感染中流行区,疾病负担较为严重[1-2]。HBV宫内传播是我国HBV感染的重要传播途径[3-5],且HBV宫内传播是目前人群中慢性乙肝感染者积累的重要原因之一[6],研究HBV宫内传播的发生机制十分必要。HBV具有高度的变异性,根据其基因组间核酸序列差异性可将其分为多个基因型,在我国以C基因型较为多见[7-8]。HBV C基因型有两个常见的传统CpG岛,即CpG岛Ⅱ、CpG岛Ⅲ。HBV DNA CpG岛分布在HBV基因组的开放阅读框(S基因、C基因、P基因以及X基因)及顺式作用元件(启动子、增强子等)上:CpG岛Ⅱ与增强子I、X基因启动子区(Xp区)以及X基因区部分重叠,CpG岛Ⅲ在P基因区的起始位点附近[9-10]。这些HBV基因组结构都与HBV在体内的复制密切相关,而HBsAg阳性母亲体内HBV高复制水平又是宫内传播发生的重要危险因素[11-12],由此推测CpG岛在HBV基因组结构上的分布可能与HBV宫内传播有关,其可能会通过影响HBV DNA碱基对的排列顺序而影响HBV在宿主体内的复制、转录和表达,从而进一步影响HBV宫内传播。本研究以HBV C基因型的HBsAg阳性母亲作为研究对象,探讨母亲携带的HBV DNA CpG岛分布特点及与HBV宫内传播的关系,从而为HBV宫内传播机制研究提出新视角,为降低HBV宫内传播提供新思路。

对象与方法

1. 研究对象:连续收集2011年6月至2013年7月山西省太原市第三人民医院妇产科的HBsAg阳性母亲及其新生儿399对。通过面对面问卷调查及电子病历收集母亲的一般人口学资料、本次妊娠情况和新生儿的分娩、出生情况等资料;采集母亲分娩前24 h内肘静脉血及新生儿出生后24 h内乙肝疫苗/乙肝免疫球蛋白注射前股静脉血各3 ml,分装血清于-80 ℃冰箱保存备检。本研究经山西医科大学伦理委员会批准,所有研究对象均签署知情同意书。

2. HBV宫内传播判定标准:新生儿出生后24 h内且主/被动免疫前,股静脉血HBsAg和/或HBV DNA阳性者判定为HBV宫内传播[13-14]

3. 母亲及新生儿HBV血清学标志物及血清HBV DNA检测:采用电化学发光法(ECLIA,试剂购自德国罗氏诊断有限公司)检测HBV血清学标志物(HBsAg、抗-HBs、HBeAg、抗-HBe、抗-HBc),采用荧光定量PCR(试剂购自中山大学达安基因股份有限公司)检测血清HBV DNA载量。

4. 母亲携带的HBV DNA的提取和扩增:使用德国Qiagen公司生产的QIAamp DNA提取试剂盒,严格按照使用说明书操作提取血清HBV DNA。使用梯度PCR仪(德国EPPENDORF公司)进行DNA扩增,DNA分单、双链进行扩增,扩增HBV单链(1 442 bp)用HBV-DF/DR引物(DF:5'-GTC TGC GGC GTT TTA TC-3',DR:5'-AAG TTG CAT GGT GCT GGT GA-3');扩增HBV双链(2 410 bp)用HBV-SF/SR引物(SF:5'-TCA CCT CTG CCT AAT CAT CTC ATG-3',SR:5'-GCA AAG CCC AAA AGA CCC ACA AT-3')。PCR为50 μl反应体系,包括3 μl HBV DNA模板,10 μl 5×TransStart® FastPfu Buffer,4 μl dNTPs,1 μl TransStart® FastPfu DNA聚合酶,30 μl超纯水(ddH2O)及上、下游引物各1 μl[引物由生工生物工程(上海)股份有限公司设计、合成]。PCR扩增条件:94 ℃变性5 min;94 ℃ 30 s,55 ℃ 30 s,68 ℃单链80 s/双链110 s,35个循环;68 ℃延伸10 min。

5. 母亲携带的HBV DNA测序及基因型确定:将上述PCR产物经凝胶电泳分离回收,将HBV DNA片段连接到pEASY-Blunt Zero Cloning载体,转入Trans1-T1噬菌体抗性化学感受态细胞(北京TransGen生物技术有限公司)进行培养,培养液送生工生物工程(上海)股份有限公司进行测序。所得HBV序列经编辑(DNAStar软件包)、拼接(SeqMan软件)、位置调整(Mega 6.0软件包)后采用邻接(Neighbor-joining)法构建系统进化树(Kimura双参数,1 000次验证)。通过与NCBI下载的标准序列比对进行基因分型,详见课题组前期研究[13-14]

6. 母亲携带的HBV DNA CpG岛分布预测:利用“MethPrimer”网站(http://www.urogene.org/methprimer/)对母亲携带的HBV DNA CpG岛的分布进行预测。进入网站后,点击“Go to MethPrimer(plus CpG Island Prediction)”界面,输入已经测序确定的母亲携带的HBV DNA序列,调整CpG岛预测所需参数为默认参数(默认参数:片段长度≥100 bp;GC含量≥50.0%;检测到的CpG岛与预期的CpG岛的比值≥0.6),汇总CpG岛的类型、位置及长度等。

7. 统计学分析:用EpiData 3.1软件建库并进行数据录入,采用SAS 9.4软件进行数据分析。非正态分布的计量资料用MQ1Q3)进行统计描述,计数资料用例数、构成比(%)进行统计描述;计量/计数资料组间比较用Wilcoxon秩和检验/χ2检验。以P < 0.05为差异有统计学意义。

结果

1. 母亲携带的HBV基因型:共收集399对HBsAg阳性母亲及其新生儿,其中54例新生儿发生HBV宫内传播。发生宫内传播者中,22例母亲外周血HBV DNA载量满足克隆测序要求(HBV DNA≥106 IU/ml);未发生HBV宫内传播者中,91例母亲外周血HBV DNA载量满足克隆测序要求,以随机种子方法选择22例作为对照。

对44例HBsAg阳性母亲的HBV DNA进行扩增克隆测序,HBV基因型分析结果显示:44例样本中39例(88.64%,39/44)为C基因型(均为C2亚型),余2例为B基因型,3例为B/C基因混合型。选择HBV C基因型的39例HBsAg阳性母亲作为研究对象进一步进行HBV DNA CpG岛分布预测,其中宫内传播组19例,未发生宫内传播的对照组20例。

2. HBV C基因型的HBsAg阳性母亲及新生儿的一般情况:39例HBsAg阳性母亲年龄在20~35岁,均为汉族,分娩孕周为37~41周;新生儿出生体重和身长范围分别为2.5~4.3 kg和45~52 cm。比较HBV宫内传播组与对照组母亲及新生儿的一般人口学特征和母亲携带的HBV复制情况,结果显示母亲的年龄、分娩孕周和血清HBeAg、HBV DNA以及新生儿的性别、出生身长和出生体重在两组间的差异无统计学意义(P>0.05)。见表 1

表 1 HBV宫内传播组与对照组母亲及新生儿一般情况及母亲携带的HBV复制情况比较MQ1Q3

3. C基因型HBV DNA CpG岛分布与宫内传播的关系:HBV DNA CpG岛分布预测结果显示,39例C基因型中共检出5个CpG岛,包括传统CpG岛Ⅰ、Ⅱ、Ⅲ以及新型CpG岛Ⅳ和Ⅴ,且均含CpG岛Ⅱ和岛Ⅲ。HBV宫内传播组仅含CpG岛Ⅱ和岛Ⅲ;对照组均含CpG岛Ⅱ和岛Ⅲ,且有CpG岛Ⅰ、岛Ⅳ和岛Ⅴ各1例。另外,HBV宫内传播组(1例)和对照组(2例)的岛Ⅱ为“中断CpG岛Ⅱ”(中断CpG岛Ⅱ是指CpG岛Ⅱ被非甲基化区域分为两部分)。HBV宫内传播组的HBV DNA CpG岛有2种类型,而对照组共有5种类型,15.00%(3/20)同时还含有CpG岛Ⅰ、岛Ⅳ或岛Ⅴ。见表 2

表 2 HBV宫内传播组与对照组母亲携带的HBV DNA CpG岛位置分布

4. C基因型HBV DNA CpG岛Ⅱ、岛Ⅲ与HBV宫内传播的关系:HBV宫内传播组和对照组母亲的HBV DNA均含有CpG岛Ⅱ和岛Ⅲ,进一步研究HBV DNA CpG岛Ⅱ、岛Ⅲ与HBV宫内传播的关系。比较两组母亲携带的HBV DNA CpG岛Ⅱ、岛Ⅲ的长度及其CpG位点(CG位点)个数,结果显示,HBV宫内传播组的CpG岛Ⅱ长度及其CG位点个数大于对照组(P < 0.05);CpG岛Ⅲ长度小于对照组(P < 0.05),但CpG岛Ⅲ CG位点个数在两组间的差异无统计学意义(P > 0.05)。见表 3。将CpG岛长度和CG位点个数以三分位数为界分析其分布差异,结果显示,HBV宫内传播组和对照组CpG岛Ⅱ长度及CG位点个数和岛Ⅲ长度分布明显不同(P < 0.05),在HBV宫内传播组中有11例母亲的HBV DNA CpG岛Ⅱ长度≥518 bp,且CG位点个数≥40个,而18例对照组的CpG岛Ⅱ长度 < 518 bp,且CG位点个数 < 40个;在宫内传播组中有10例母亲(10/19)的HBV DNA CpG岛Ⅲ长度 < 149 bp,明显多于对照组(2/20)。见表 4

表 3 HBV DNA CpG岛长度、CG位点个数与HBV宫内传播的关系[MQ1Q3)]
表 4 HBV DNA CpG岛长度、CG位点个数与HBV宫内传播的关系

5. HBV DNA Xp区和P基因区(P区)的CpG岛分布与HBV宫内传播的关系:测序及CpG岛预测结果表明,39例母亲的HBV DNA CpG岛Ⅱ位置跨越nt1 111~1 717,与部分Xp区(nt1 170~1 359)重叠,CpG岛Ⅲ位置跨越nt2 260~2 466,与部分P区(nt2 307~3 125,nt1~1 620)重叠。进一步分析HBV Xp区和P区的CpG岛分布与HBV宫内传播的关系,结果显示,HBV宫内传播组HBV Xp区(有较多RNA聚合酶Ⅱ结合位点的区域)CpG岛长度大于对照组(P=0.013)。在HBV宫内传播组的19例母亲中有12例母亲携带的HBV DNA CpG岛Ⅱ完全覆盖了Xp区,远多于对照组(5/20)。见图 1。同时,HBV宫内传播组HBV DNA Xp区CG位点个数高于对照组(P=0.041),提示HBV Xp区的CpG岛Ⅱ与HBV宫内传播有关;而P区CpG岛的长度及其CG位点个数在两组之间接近(P>0.05)。见表 5

图 1 HBV宫内传播组和对照组母亲携带的HBV DNA CpG岛覆盖Xp区情况
表 5 HBV DNA Xp区CpG岛长度和CG位点个数与宫内传播的关系[MQ1Q3)]
讨论

HBV宫内传播无法完全得到有效控制是人群中HBV感染者积累的重要原因[6],了解HBV宫内传播发生的机制对于减轻由HBV引起的相关疾病负担具有重要意义。有研究表明CpG岛的分布与下游基因的表达有关[15],而HBV DNA CpG岛在HBV基因组结构上的分布有所不同[8-9],可能会通过影响母亲携带的HBV在体内的复制而导致宫内传播的发生,相关研究未见报道。本研究发现,C基因型HBsAg母亲携带的HBV DNA CpG岛的分布与HBV宫内传播发生有关,可能为HBV宫内传播机制研究提供新的思路。

HBV是一种因缺乏聚合酶校正功能而具有高度变异性的病毒,根据基因组序列异质性将其分为不同的基因型[16],在我国以C基因型较为多见[7-8]。本研究同样显示大部分的HBsAg阳性母亲的HBV基因型为C基因型(88.64%,39/44),B基因型及B/C基因混合型(11.36%,5/44)较少。

CpG岛是HBV基因组中富含CG双核苷酸的序列,目前普遍认为HBV DNA中有3个传统类型的CpG岛:Ⅰ、Ⅱ和Ⅲ,以及3个新发现的CpG岛:Ⅳ、Ⅴ和Ⅵ。本研究中39例HBV C基因型HBsAg阳性母亲携带的HBV DNA均含有CpG岛Ⅱ和岛Ⅲ,其他岛仅在个别研究对象中出现,这与已有研究结果相似[9, 15]。本研究中HBV宫内传播组的母亲携带的HBV DNA仅含有传统CpG岛Ⅱ和岛Ⅲ,对照组含有传统CpG岛Ⅰ及新的CpG岛Ⅳ及岛Ⅴ。HBV宫内传播组的HBV DNA CpG岛的类型较对照组少,提示发生HBV宫内传播的HBV DNA CpG岛类型的分布可能比较保守。本研究还发现部分岛Ⅱ出现“中断”现象,其发生机制和临床意义目前尚不清楚,Hou等[15]在岛Ⅱ的“中断”区域,检测到了与HBV基因结构和功能异常有关的突变现象,而本研究中仅发现3例,待扩大样本量继续研究。本研究结果还显示对照组有新型CpG岛Ⅳ和岛Ⅴ,新型岛Ⅳ的位置在岛Ⅰ和岛Ⅱ之间,新型岛Ⅴ位于岛Ⅱ和岛Ⅲ之间,新型CpG岛可能是DNA甲基化的潜在区域[17-18],关于新型岛的生物学意义还有待进一步探讨。

本研究中HBV宫内传播组母亲携带的HBV DNA CpG岛Ⅱ长度、CG位点个数和Xp区的CpG岛Ⅱ长度、CG位点个数均明显高于对照组(P < 0.05),提示HBV DNA CpG岛Ⅱ长度和CG位点个数与HBV宫内传播有关。一方面,HBV DNA CpG岛Ⅱ与HBV的部分增强子(Enh I)、Xp区以及部分X基因区重叠。Enh I/X基因启动子能与多种核内转录因子相结合,增强启动子的转录水平从而上调前基因组RNA(pgRNA)的表达,而X基因编码的HBx蛋白具有广泛的转录激活功能。Enh I/X基因启动子及X基因的正确表达均有利于维持HBV在体内的高水平复制[19-20]。另一方面,有研究表明CpG岛的存在与基因调控区相关[21],也有研究显示,CpG岛较长的启动子具有更多的RNA聚合酶Ⅱ结合位点[22-23]。在HBV DNA中,CpG岛Ⅱ覆盖部分Xp区(nt1 170~1 359),启动子区的CpG岛越长,其RNA聚合酶Ⅱ结合位点越多,由于HBV DNA在复制过程中缺乏病毒聚合酶的校对功能,大量的RNA聚合酶Ⅱ的结合位点能够有效校对HBV聚合酶蛋白,减少在复制的DNA链中出现随机的碱基错误合并,避免HBV基因的结构和功能异常,有助于HBV在体内的复制。在本研究中,HBV宫内传播组母亲的HBV DNA载量也相对较高,而母亲体内高病毒载量又是HBV宫内传播发生重要的危险因素,支持了CpG岛Ⅱ的长度及CG位点个数与HBV宫内传播的关系。

本次研究显示,与CpG岛Ⅱ相反,CpG岛Ⅲ短,发生HBV宫内传播可能性高。HBV DNA CpG岛Ⅲ位于部分P区上,但进一步分析HBV DNA CpG岛Ⅲ长度及CG位点个数在P区的分布,发现在两组之间并无差异,出现这种差异的原因还有待进一步探讨。

本研究存在局限性。由于目前测序技术的高载量要求和测序结果的稳定问题,本研究只选择了HBV DNA高载量的母亲及新生儿作为研究对象,无法评估不同HBV DNA水平下HBV DNA CpG岛分布与HBV宫内传播的相关性,因此研究结论需要增加研究样本量进一步深入阐释。

综上所述,HBsAg阳性母亲C基因型HBV DNA CpG岛分布可能与HBV宫内传播有关,HBV DNA CpG岛类型分布保守、CpG岛Ⅱ长度长和CG位点个数多可能会增加HBV宫内传播的发生风险。

利益冲突  所有作者声明无利益冲突

作者贡献声明  王婷、王丹丹:实验操作、数据处理、论文撰写;陈文鑫、晋聪、李雁笛、扆琳珠:采集、整理数据;丰淑英、汪波:采集数据、支持性贡献;冯永亮、王素萍:研究指导、论文修改、经费支持

参考文献
[1]
World Health Organization. Global Hepatitis Report, 2017[EB/OL]. (2017-04-19). https://www.who.int/publications/i/item/global-hepatitis-report-2017.
[2]
Liu J, Liang WN, Jing WZ, et al. Countdown to 2030:eliminating hepatitis B disease, China[J]. Bull World Health Organ, 2019, 97(3): 230-238. DOI:10.2471/blt.18.219469
[3]
Xu YY, Liu HH, Wang Y, et al. The next step in controlling HBV in China[J]. BMJ, 2013, 347: f4503. DOI:10.1136/bmj.f4503
[4]
Thio CL, Guo N, Xie C, et al. Global elimination of mother-to-child transmission of hepatitis B: revisiting the current strategy[J]. Lancet Infect Dis, 2015, 15(8): 981-985. DOI:10.1016/s1473-3099(15)00158-9
[5]
张磊, 邵中军. HBV宫内传播研究在乙型肝炎防控工作中发挥着重要的作用[J]. 中华流行病学杂志, 2019, 40(9): 1055-1058.
Zhang L, Shao ZJ. Important role of study on intrauterine transmission of HBV in prevention and control of hepatitis B[J]. Chin J Epidemiol, 2019, 40(9): 1055-1058. DOI:10.3760/cma.j.issn.0254-6450.2019.09.007
[6]
王贵强, 王福生, 庄辉, 等. 慢性乙型肝炎防治指南(2019年版)[J]. 肝脏, 2019, 24(12): 1335-1356.
Wang GQ, Wang FS, Zhuang H, et al. Guidelines for the Prevention and Treatment of Chronic Hepatitis B (2019 version)[J]. Chin Hepatol, 2019, 24(12): 1335-1356. DOI:10.14000/j.cnki.issn.1008-1704.2019.12.001
[7]
Zeng G, Wang Z, Wen S, et al. Geographic distribution, virologic and clinical characteristics of hepatitis B virus genotypes in China[J]. J Viral Hepat, 2005, 12(6): 609-617. DOI:10.1111/j.1365-2893.2005.00657.x
[8]
伍宵, 魏少峰, 徐楠, 等. 中国慢性HBV感染者基因型分布及其临床意义Meta分析[J]. 实用肝脏病杂志, 2017, 20(3): 271-275.
Wu X, Wei SF, Xu N, et al. Meta-analysis on distribution of hepatitis B virus genotypes and related clinical outcomes in China[J]. J Pract Hepatol, 2017, 20(3): 271-275. DOI:10.3969/j.issn.1672-5069.2017.03.005
[9]
Zhang YM, Li CX, Zhang YJ, et al. Comparative analysis of CpG islands among HBV genotypes[J]. PLoS One, 2013, 8(2): e56711. DOI:10.1371/journal.pone.0056711
[10]
Zhong CY, Hou ZW, Huang JH, et al. Mutations and CpG islands among hepatitis B virus genotypes in Europe[J]. BMC Bioinformatics, 2015, 16(1): 38. DOI:10.1186/s12859-015-0481-8
[11]
Shih YF, Liu CJ. Mother-to-infant transmission of hepatitis B virus: challenges and perspectives[J]. Hepatol Int, 2017, 11(6): 481-484. DOI:10.1007/s12072-017-9831-0
[12]
Peng SX, Wan ZH, Liu TT, et al. Incidence and risk factors of intrauterine transmission among pregnant women with chronic hepatitis B virus infection[J]. J Clin Gastroenterol, 2019, 53(1): 51-57. DOI:10.1097/mcg.0000000000001001
[13]
武佳欣, 杨志清, 张睿君, 等. HBsAg阳性母亲携带的HBV核心启动子突变与宫内传播的关系[J]. 中华流行病学杂志, 2020, 41(6): 902-907.
Wu JX, Yang ZQ, Zhang RJ, et al. Relationship between mutations of HBV basal core promoter region in HBsAg-positive mothers and intrauterine transmission[J]. Chin J Epidemiol, 2020, 41(6): 902-907. DOI:10.3760/cma.j.cn112338-20200224-00163
[14]
赵甜静, 杨志清, 李雁笛, 等. C基因型HBV变异与宫内传播的关系[J]. 中华流行病学杂志, 2021, 42(4): 716-722.
Zhao TJ, Yang ZQ, Li YD, et al. Relationship between C genotype HBV mutation and intrauterine transmission[J]. Chin J Epidemiol, 2021, 42(4): 716-722. DOI:10.3760/cma.j.cn112338-20200915-01163
[15]
Hou ZW, Huang JH, Zhong CY, et al. CpG islands of hepatitis B virus genome isolated from Chinese patients[J]. Gene, 2015, 561(2): 261-267. DOI:10.1016/j.gene.2015.02.036
[16]
Chen L, Shi Y, Yang WR, et al. Differences in CpG island distribution between subgenotypes of the Hepatitis B Virus genotype[J]. Med Sci Monit, 2018, 24: 6781-6794. DOI:10.12659/msm.910049
[17]
凌青霞, 陈明泉, 施光峰. DNA甲基化修饰在乙肝病毒持续感染相关肝病中的研究现状[J]. 肝脏, 2014, 19(5): 362-364.
Ling QX, Chen MQ, Shi GF. Research status of DNA methylation modification in hepatitis B virus persistent infection-associated liver disease[J]. Chin Hepatol, 2014, 19(5): 362-364. DOI:10.14000/j.cnki.issn.1008-1704.2014.05.010
[18]
Vivekanandan P, Thomas D, Torbenson M. Hepatitis B viral DNA is methylated in liver tissues[J]. J Viral Hepat, 2008, 15(2): 103-107. DOI:10.1111/j.1365-2893.2007.00905.x
[19]
Bock CT, Malek NP, Tillmann HL, et al. The enhancerⅠ core region contributes to the replication level of hepatitis B virus in vivo and in vitro[J]. J Virol, 2000, 74(5): 2193-2202. DOI:10.1128/jvi.74.5.2193-2202.2000
[20]
郑丹华, 王小众. 乙型肝炎病毒X蛋白的研究进展[J]. 中国病原生物学杂志, 2018, 13(10): 1158-1161.
Zheng DH, Wang XZ. Advances in the study of the hepatitis B virus X protein[J]. J Parasit Biol, 2018, 13(10): 1158-1161. DOI:10.13350/j.cjpb.181023
[21]
Kim TH, Barrera LO, Zheng M, et al. A high-resolution map of active promoters in the human genome[J]. Nature, 2005, 436(7052): 876-880. DOI:10.1038/nature03877
[22]
Elango N, Yi SV. Functional relevance of CpG island length for regulation of gene expression[J]. Genetics, 2011, 187(4): 1077-1083. DOI:10.1534/genetics.110.126094
[23]
Thompson AJ, Colledge D, Rodgers S, et al. Stimulation of the interleukin-1 receptor and Toll-like receptor 2 inhibits hepatitis B virus replication in hepatoma cell lines in vitro[J]. Antivir Ther, 2009, 14(6): 797-808. DOI:10.3851/imp1294