2018, Vol. 39
文章信息
- 杨倩, 李颖, 王璐, 宋志超, 冯美娟, 丁玲, 王金桃.
- Yang Qian, Li Ying, Wang Lu, Song Zhichao, Feng Meijuan, Ding Ling, Wang Jintao.
- 脆性组氨酸三联体、甲基-CpG-结合蛋白2异常表达与宫颈癌变的关系及交互作用
- Interaction between abnormal expression of fragile histidine triad and methyl-CpG-binding protein 2 on cervical cancerization
- 中华流行病学杂志, 2018, 39(5): 689-693
- Chinese Journal of Epidemiology, 2018, 39(5): 689-693
- http://dx.doi.org/10.3760/cma.j.issn.0254-6450.2018.05.030
-
文章历史
收稿日期: 2017-10-17
DNA甲基化是表观遗传的核心内容，在肿瘤的发生发展中扮演着重要角色[1]。研究表明，抑癌基因启动子区CpG岛的异常甲基化可造成基因表达沉默，肿瘤抑制功能丧失，从而引发肿瘤[2]。肿瘤抑制基因脆性组氨酸三联体（FHIT）定位于人类染色体3p14.2，具有管理细胞凋亡，抑制细胞增殖扩散等多种生物学功能[3]。FHIT基因功能丧失与肿瘤的发生发展密切相关，而启动子区CpG岛高甲基化使其自身表达水平下降或缺失是FHIT基因失活的重要机制[4]。在DNA甲基化致抑癌基因失活的过程中，有多种蛋白和核因子的参与，其中DNA甲基化CpG岛结合蛋白（MBD）起着阅读和传递甲基化信息的重要作用，甲基-CpG-结合蛋白2（MeCP2）是首个被发现的MBD家族成员，研究提示MeCP2可以特异性识别并结合DNA甲基化位点，广泛参与抑癌基因高甲基化导致的转录沉默过程[5]。本课题组前期研究显示，FHIT蛋白表达降低与宫颈癌变有密切关系[6]，但其与MeCP2异常表达在宫颈癌变中的关系尚不明确。为此本研究纳入不同宫颈病变患者探讨FHIT、MeCP2异常表达与宫颈癌变的关系及交互效应。
对象与方法1.研究对象：选取2009年9月至2011年3月在山西省肿瘤医院、山西医科大学第二医院妇科和介休市妇幼保健院妇科经病理学确诊的宫颈鳞状细胞癌（SCC）患者73例，宫颈上皮内瘤样变（CIN）患者113例（CINⅠ45例，CINⅡ/Ⅲ 68例）以及宫颈正常（NC）妇女60人为研究对象。经知情同意，应用结构式问卷收集人口学特征、生殖情况、生活习惯、妇科病史、肿瘤家族史等资料，同时采集全部研究对象的手术或活检宫颈组织标本，于-80 ℃冰箱贮存待检。
2.研究方法：
（1）检测HPV感染：采用酚-氯仿蛋白酶K法从宫颈组织中提取DNA，参照课题组前期建立的PCR扩增方法检测HPV感染状况[7]。
（2）荧光定量PCR检测FHIT及MeCP2 mRNA表达量：提取总RNA（Trizol法），参照课题组前期建立的方法[8]，分别获得FHIT及MeCP2的特异性扩增曲线和溶解曲线。以FHIT Ct值/β-actin Ct值及MeCP2 Ct值/β-actin Ct值分别表示FHIT及MeCP2 mRNA的相对表达量。Ct比值越大，表示对应的mRNA表达水平越低，反之亦然。
（3）Western blot检测FHIT及MeCP2蛋白表达水平：提取蛋白，经BCA定量。参照课题组前期建立的方法检测FHIT及MeCP2蛋白表达水平[6]。FHIT、MeCP2一抗分别为1 : 800和1 : 2 000稀释的兔抗人单克隆抗体；内参蛋白（β-actin）一抗为1 : 1 000稀释的兔抗人β-肌动蛋白抗体。在相对分子质量16.8、53和43 KD处分别获得FHIT、MeCP2和β-actin蛋白条带。利用Quantity One软件分析各条带的光密度值（A值），将目的条带与β-actin条带A值的比值作为FHIT及MeCP2蛋白的相对表达量。
（4）MSP检测FHIT基因CpG岛甲基化状况：参照课题组前期建立的方法检测FHIT基因CpG岛甲基化状况[9]，采用酚-氯仿法提取宫颈组织总DNA，亚硫酸盐进行DNA甲基化修饰，55 ℃避光孵育过夜，经Wizard DNA clean up system试剂纯化后，溶于40 μl三蒸水，在PTC200-PCR仪上进行扩增。FHIT基因CpG岛甲基化引物：5′-TTG GGG CGC GGG TTT GGG TTT TTA CGC-3′，5′-CGT AAA CGA CGC CGA CCC CAC TA-3′；非甲基化引物：5′-TTG GGG TGT GGG TTT GGG TTT TTA TG-3′，5′-CAT AAA CAA CAC CAA CCC CAC TA-3′。对PCR扩增产物进行2%琼脂糖凝胶电泳，在VILBER CV-A50C凝胶成像仪下观察，于74 bp处分别获得FHIT基因甲基化和未甲基化条带。
3.统计学分析：采用SPSS 20.0软件进行χ2检验、χ2趋势检验、Kruskal-Wallis H检验、Spearman秩相关分析、因素与宫颈疾病之间关联强度（OR值及其95%CI）分析；采用广义多因子降维法（GMDR）进行交互作用评价[10]。检验水准α＝0.05。
结果1.样本特征：NC、CINⅠ、CINⅡ/Ⅲ及SCC组的年龄中位数分别为45（27~69）、48（29~63）、49（30~65）、50（28~70）岁。各组在民族、出生地、居住地、婚姻状况、吸烟、饮酒、首次性交年龄、经期性生活、产次、绝经、肿瘤家族史方面的差异无统计学意义（P＞0.05），但在HPV感染（χ2＝28.30，P＜0.001）、年龄（χ2＝18.06，P＝0.034）、文化程度（χ2＝36.75，P＜0.001）、职业（χ2＝29.90，P＜0.001）、洗澡频率（χ2＝19.90，P＝0.003）、阴部清洗频率（χ2＝44.34，P＜0.001）、性生活后清洗（χ2＝13.82，P＝0.003）、首次生育年龄（χ2＝18.72，P＝0.004）、孕次（χ2＝18.16，P＝0.006）、人工流产史（χ2＝35.07，P＜0.001）、人工流产次数（χ2＝23.99，P＜0.001）、月经初潮年龄（χ2＝14.35，P＝0.023）、妇科病史（χ2＝25.46，P＜0.001）的差异均有统计学意义。
2. FHIT基因甲基化及其表达与宫颈病变的关系：FHIT基因CpG岛甲基化率呈逐渐升高趋势（χ2＝18.08，P＜0.001），且NC组与SCC组的差异有统计学意义；经Kruskal-Wallis H检验，各组间FHIT mRNA（H＝27.32，P＜0.001）与蛋白（H＝47.10，P＜0.001）表达量总体分布不全相同。采用Bonferroni法（调整检验水准α＝0.05/比较次数＝0.05/6＝0.008 3）两两比较发现，FHIT mRNA和蛋白表达量CINⅡ/Ⅲ组和SCC组均低于NC组，SCC组的蛋白表达量低于CINⅠ组。进一步以NC组的FHIT mRNA和蛋白表达量的P50值（1.24和1.28）作为FHIT低表达的分界点进行定性分析发现，随着宫颈病变的进展，FHIT mRNA和蛋白低表达率均呈逐渐升高趋势（表 1）。Spearman秩相关分析显示，FHIT基因CpG岛甲基化率与FHIT蛋白表达量（r＝-0.226，P＜0.001）呈负相关，而与FHIT mRNA Ct比值（r＝0.057，P＝0.375）未显示差异有统计学意义。
3. MeCP2表达与宫颈病变的关系：经Kruskal- Wallis H检验，各组间MeCP2 mRNA（H＝26.19，P＜0.001）与蛋白（H＝69.02，P＜0.001）表达量总体分布不全相同。采用Bonferroni法（调整检验水准α＝0.05/比较次数＝0.05/6＝0.008 3）两两比较显示，MeCP2 mRNA和蛋白表达量在NC组与CINⅡ/Ⅲ组和SCC组及CINⅠ组与SCC组的差异有统计学意义。进一步以NC组的MeCP2 mRNA和蛋白表达量的P50值（1.22和1.02）作为MeCP2高表达的分界点进行定性分析，结果显示，随着宫颈病变的进展，MeCP2 mRNA和蛋白高表达率均呈逐渐升高趋势（表 2）。
4. MeCP2与FHIT在各宫颈病变组中的相关性及交互作用：在分析了MeCP2、FHIT表达与宫颈癌变关系的基础上，对两变量进行了相关性分析。经Spearman秩相关分析显示，MeCP2蛋白表达量与FHIT mRNA Ct比值（r＝0.254，P＜0.001）呈正相关，即与FHIT mRNA表达量呈负相关；与FHIT蛋白表达量（r＝-0.213，P＝0.001）呈负相关（图 1）。为评价MeCP2与FHIT基因在宫颈癌变中的交互作用，将MeCP2 mRNA和蛋白、FHIT mRNA和蛋白及FHIT基因CpG岛甲基化状况纳入GMDR模型，调整影响宫颈癌变的相关因素，以检验平衡集精度（TBA）和交叉验证一致性（CVC）最高且置换检验有统计学意义（P＜0.05）为最佳交互作用模型，结果显示，CINⅡ/Ⅲ组为MeCP2蛋白高表达、FHIT基因CpG岛甲基化及mRNA和蛋白低表达（TBA＝0.784 8，CVC＝10/10）；SCC组为MeCP2 mRNA和蛋白高表达、FHIT基因CpG岛甲基化及mRNA和蛋白低表达（TBA＝0.768 7，CVC＝10/10），CINⅠ组未见交互作用存在（P＞0.05），见表 3。
|
| 注：NC为正常宫颈，CIN为宫颈上皮内瘤样变，SCC为宫颈鳞状细胞癌；MeCP2为甲基-CpG-结合蛋白2；FHIT为脆性组氨酸三联体；mRNA Ct比值为FHIT Ct/β-actin Ct值 图 1 各宫颈病变组MeCP2与FHIT mRNA（上）及蛋白（下）表达的关系 |
抑癌基因启动子区甲基化与肿瘤的关系密切，能使基因转录抑制或沉默。FHIT基因表达缺失可能阻断了生长信号抑制途径，使细胞凋亡受阻，从而导致肿瘤发生[4]。在宫颈癌组织中FHIT蛋白的失活与FHIT基因异常高甲基化有关，FHIT蛋白在FHIT基因高甲基化的组织中表达降低而在正常组织中表达正常[11]。Banzai等[4]研究显示，宫颈癌组织中FHIT基因CpG岛甲基化率明显高于宫颈上皮内瘤样变和正常宫颈组织。本课题组前期研究发现，宫颈癌组FHIT基因CpG岛甲基化率远高于正常宫颈组[6]。本研究从FHIT基因CpG岛甲基化、FHIT mRNA和蛋白三方面综合分析了FHIT基因异常表达与宫颈病变的关系，并进一步探究FHIT基因CpG岛甲基化与FHIT mRNA和蛋白表达的相关性。结果显示，随着宫颈病变的进展，FHIT基因CpG岛甲基化率逐渐升高，而FHIT mRNA和蛋白的表达量呈下降的趋势，提示FHIT基因CpG岛高甲基化及FHIT mRNA和蛋白低表达均可增加宫颈癌变的危险性。相关性分析显示，FHIT基因CpG岛甲基化率与FHIT蛋白表达在宫颈癌变中呈负相关，提示FHIT蛋白表达降低与FHIT基因CpG岛高甲基化有关。
Bernard等[12]发现MeCP2能促进前列腺癌细胞的生长，其过量表达可能增加机体细胞恶变的危险性。有研究报道在乳腺癌[13]、结直肠癌[14]等肿瘤中存在MeCP2蛋白的异常高表达。本课题组发现MeCP2与宫颈癌变有关，此次研究从不同宫颈病变阶段MeCP2的转录和翻译两个水平分析显示，MeCP2 mRNA和蛋白在SCC组的表达量均显著高于NC组和CINⅠ组，随宫颈病变的进展均逐渐增加，提示MeCP2表达异常增高，可增加宫颈癌及其癌前病变的风险，特别是在宫颈上皮内瘤样变阶段即有MeCP2 mRNA和蛋白的增高，对宫颈癌变具有一定的预警意义。
基因的表达一方面受到甲基化的影响，另一方面与MBD密切相关。MeCP2是MBD家族的重要成员，能识别并结合甲基化的CpG残基区，形成稳定的转录抑制复合体，同时引起染色质结构的修饰与重塑，使之发生浓缩、凝聚，导致基因表达沉默，这被认为是甲基化序列长期沉默的主要原因[5]。本研究发现，MeCP2蛋白表达与FHIT mRNA和蛋白的表达呈负相关，提示FHIT表达下降可能与MeCP2蛋白高表达有关。尽管有细胞实验发现，MeCP2通过结合到LIN28A甲基化的CpG岛抑制其在胰腺癌细胞中的表达[15]，但两者间的相互关系尚待深入研究。
本研究基于FHIT基因表达缺失既与其CpG岛甲基化有关也与MeCP2高表达有关的生物学基础，运用GMDR进一步探讨了FHIT、MeCP2在宫颈癌变中的交互作用发现，在CINⅡ/Ⅲ组中，MeCP2蛋白高表达、FHIT基因CpG岛甲基化及mRNA和蛋白低表达存在交互作用，MeCP2 mRNA和蛋白高表达、FHIT基因CpG岛甲基化及mRNA和蛋白低表达在SCC组中存在交互作用，提示MeCP2与FHIT异常表达可能在宫颈癌变中存在协同作用。此发现补充了本课题组前期研究发现的MeCP2蛋白可能进一步抑制了甲基化p16的表达活性，促进了宫颈癌变的发生[16]。本研究虽然揭示出MeCP2与FHIT在宫颈癌变中具有交互作用，但其详细的分子学机制及因果推论尚待前瞻性队列研究及实验性研究提供更为有力的证据。
利益冲突: 无
| [1] | Peedicayil J. The role of DNA methylation in the pathogenesis and treatment of cancer[J]. Curr Clin Pharmacol, 2012, 7(4): 333–340. DOI:10.2174/157488412803305858 |
| [2] | Lu Q, Ma DH, Zhao SP. DNA methylation changes in cervical cancers[J]. Methods Mol Biol, 2012, 863: 155–176. DOI:10.1007/978-1-61779-612-8_9 |
| [3] | Huang Q, Liu Z, Xie F, et al. Fragile histidine triad (FHIT) suppresses proliferation and promotes apoptosis in cholangiocarcinoma cells by blocking PI3K-Akt pathway[J]. Sci World J, 2014, 2014: 179698. DOI:10.1155/2014/179698 |
| [4] | Banzai C, Nishino K, Quan JH, et al. Promoter methylation of DAPK1, FHIT, MGMT, and CDKN2A genes in cervical carcinoma[J]. Int J Clin Oncol, 2014, 19(1): 127–132. DOI:10.1007/s10147-013-0530-0 |
| [5] | Baubec T, Ivánek R, Lienert F, et al. Methylation-dependent and -independent genomic targeting principles of the MBD protein family[J]. Cell, 2013, 153(2): 480–492. DOI:10.1016/j.cell.2013.03.011 |
| [6] |
陈霄, 王金桃, 白丽霞, 等. 宫颈癌变中叶酸缺乏与脆性组氨酸三联体基因表达异常的相互作用[J]. 中华流行病学杂志, 2015, 36(4): 387–392.
Chen X, Wang JT, Bai LX, et al. Interaction between folate deficiency and aberrant expression related to fragile histidine triad gene in the progression of cervical cancerization[J]. Chin J Epidemiol, 2015, 36(4): 387–392. DOI:10.3760/cma.j.issn.0254-6450.2015.04.020 |
| [7] |
王金桃, 高尔生, 程玉英, 等. 内源性雌、孕激素与人乳头瘤病毒在宫颈癌发生中的协同作用研究[J]. 中华流行病学杂志, 2005, 26(5): 370–373.
Wang JT, Gao ES, Cheng YY, et al. Analysis on synergistic action between estrogen, progesterone and human papillomaviruses in cervical cancer[J]. Chin J Epidemiol, 2005, 26(5): 370–373. DOI:10.3760/j.issn:0254-6450.2005.05.017 |
| [8] |
王金桃, 吴婷婷, 白兰, 等. 叶酸对DNMT1和MeCP2在宫颈癌细胞中表达调节的实验研究[J]. 中华流行病学杂志, 2013, 34(2): 173–177.
Wang JT, Wu TT, Bai L, et al. Effect of folate in modulating the expression of DNA methyltransferase 1 and methyl-CpG-bingding protein 2 in cervical cancer cell lines[J]. Chin J Epidemiol, 2013, 34(2): 173–177. DOI:10.3760/cma.j.issn.0254-6450.2013.02.016 |
| [9] |
吴婷婷, 王金桃, 丁玲, 等. 叶酸缺乏和p16基因CpG岛甲基化对宫颈癌变的作用[J]. 中华疾病控制杂志, 2013, 17(1): 9–12.
Wu TT, Wang JT, Ding L, et al. Folate deficiency and aberrant methylation of p16 CpG islands on cervical cancer and its precancerous lesions[J]. Chin J Dis Control Prev, 2013, 17(1): 9–12. |
| [10] |
陈卿, 唐迅, 胡永华. 应用广义多因子降维法分析数量性状的交互作用[J]. 中华流行病学杂志, 2010, 31(8): 938–941.
Chen Q, Tang X, Hu YH. Detecting interaction for quantitative trait by generalized multifactor dimensionality reduction[J]. Chin J Epidemiol, 2010, 31(8): 938–941. DOI:10.3760/cma.j.issn.0254-6450.2010.08.024 |
| [11] | Lando M, Fjeldbo CS, Wilting SM, et al. Interplay between promoter methylation and chromosomal loss in gene silencing at 3p11-p14 in cervical cancer[J]. Epigenetics, 2015, 10(10): 970–980. DOI:10.1080/15592294.2015.1085140 |
| [12] | Bernard D, Gil J, Dumont P, et al. The methyl-CpG-binding protein MECP2 is required for prostate cancer cell growth[J]. Oncogene, 2006, 25(9): 1358–1366. DOI:10.1038/sj.onc.1209179 |
| [13] | Xu XM, Jin HY, Liu YF, et al. The expression patterns and correlations of claudin-6, methy-CpG binding protein 2, DNA methyltransferase 1, histone deacetylase 1, acetyl-histone H3 and acetyl-histone H4 and their clinicopathological significance in breast invasive ductal carcinomas[J]. Diagn Pathol, 2012, 7: 33. DOI:10.1186/1746-1596-7-33 |
| [14] | Song N, Li KQ, Wang Y, et al. Lentivirusmediated knockdown of MeCP2 inhibits the growth of colorectal cancer cells in vitro[J]. Mol Med Rep, 2015, 13(1): 860–866. DOI:10.3892/mmr.2015.4612 |
| [15] | Xu M, Bian SH, Li J, et al. MeCP2 suppresses LIN28A expression via binding to its methylated-CpG islands in pancreatic cancer cells[J]. Oncotarget, 2016, 7(12): 14476–14485. DOI:10.18632/oncotarget.7507 |
| [16] |
梁雅丽. 叶酸、p16甲基化、MeCP2蛋白表达在宫颈癌变中的作用[D]. 太原: 山西医科大学, 2010.
Liang YL. The role of folate and p16 gene promoter region CpG island methylation and MeCP2 protein expression in cervical lesions[D]. Taiyuan: Shanxi Medical University, 2010. |