文章信息
- 郑雅匀, 曹玉玺, 付士红, 程璟侠, 赵俊英, 代培芳, 孔祥盛, 梁国栋. 2014.
- Zheng Yayun, Cao Yuxi, Fu Shihong, Cheng Jingxia, Zhao Junying, Dai Peifang, Kong Xiangsheng, Liang Guodong. 2014.
- 山西省运城市2012年蚊媒病毒的分离鉴定
- Isolation and identification of mosquito-borne arboviruses in Yuncheng city, Shanxi province, 2012
- 中华流行病学杂志, 2015, 36(4): 368-373
- Chinese Journal of Epidemiology, 2015, 36(4): 368-373
- http://dx.doi.org/10.3760/cma.j.issn.0254-6450.2015.04.016
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文章历史
- 投稿日期:2014-10-29
2. 山西省疾病预防控制中心
2. Shanxi Provincial Center for Disease Control and Prevention
2006 年7-8 月在山西省运城市发生流行性乙 型脑炎(乙脑)流行,86%患者为成年人且死亡率很 高[1]。随即有研究者连续两年在当地开展蚊媒病毒 调查工作,但并未分离出乙脑的病原——乙脑病毒 (JEV)[2, 3]。本研究于2012 年夏季再次对山西省运 城市开展蚊媒病毒调查研究,结合多种捕蚊工具采 集标本,以期了解当地主要蚊媒病毒种类及遗传特 性,为当地疾病监测提供依据。 材料与方法
1. 标本采集:2012 年8 月7-12 日在山西省运 城市临猗县和永济市选择果园、猪场、鱼塘等场地,采用光催化诱蚊器、CO2蚊虫诱捕器、诱蚊诱卵器等 工具捕捉蚊虫。于每日17:00 至次日06:00 开启捕 蚊器,仅收集留取活蚊,将蚊虫置于-20 ℃冰箱 30 min,然后在冰排上剔去雄蚊、鉴定蚊种,50~100 只同属的蚊虫为单位装入1 支冻存管。编号记录后 装入液氮中保存待检。
2. 标本处理及病毒分离:将冻存的蚊虫标本倒 入预冷塑料研磨管中,每管加入1.5 ml 研磨液[每 100 ml 研磨液中包含MEM液96 ml,青霉素和链霉 素(PS)2 ml,1%谷氨酰胺(G)1 ml,7.5%碳酸氢钠约 1 ml],使用组织振荡仪充分研磨至匀浆状,以4 ℃ 18 000 g 离心30 min,取上清液接种于生长达到 70%~80%单层的C6/36 和BHK-21 细胞,并分别于 28 ℃和37 ℃的CO2孵箱中培养。逐日观察细胞病 变(CPE),当细胞病变达(约80%)时收获, 以-20 ℃反复冻融3 次使细胞充分裂解释放病毒,离 心后取上清再次接种细胞,连续盲传3 代,有病变者 继续传代至出现规律病变,无病变者舍弃。
3. 病毒分离物的分子生物学鉴定:使用德国 Qiagen 公司的Viral RNA Mini Kit 提取病毒总RNA, 按试剂盒说明书进行操作。使用美国Invitrogen 公 司“SuperScriptTMⅢ First-Strand Synthesis System for RT-PCR”试剂盒及随机引物Oligo(dT20)反转录获得 cDNA。使用宝生物工程(大连)有限公司的GoTaq Green Master Mix 及蚊媒病毒 种属特异引物进行PCR 扩增 (表 1)。扩增产物以1%琼脂糖凝 胶进行电泳,对阳性PCR 产物进 行回收,连接pGEM-T easy 载体 (美国Promega公司)测定序列。
4. 病毒分离物的基因序列进 化分析:使用DNAMAN 软件进 行测序片段的拼接和校正;采用 Clustal X2.09 软件完成核苷酸序 列同源性分析及比对;核苷酸差 异度分析经由DNAStar软件包中 的MegAlign 软件完成;应用 Mega v5.1 软件选择邻接法构建 系统进化树,自展数值为1 000。 结果
1. 蚊虫分布:在山西省运 城市临猗县和永济市的19 个 标本采集点共捕捉蚊虫4 属7 种10 455 只。从总量看,淡色库蚊(47.02%,4 917/ 10 455)和三带喙库蚊(46.43%,4 854/10 455)构成 比重相当,其他种类蚊虫仅占6.49%。临猗县以淡 色库蚊为绝对优势蚊种(91.96%,3 911/4 253),永济 市的主要蚊种为三带喙库蚊(72.85%,4 518/6 202)。
2. 病毒分离:将蚊虫标本分190 批处理,分别接 种C6/36 和BHK-21 细胞培养分离病毒,经连续3 代 (每代培养6 d)感染细胞,获得8 批标本在C6/36 细 胞导致规律CPE(包括聚集、融合、脱落),其中1 株 分离物能导致BHK-21 细胞发生剧烈病变,标本第 二代接种后培养3 d 即显示细胞迅速缩小、边缘不整 齐,4 d 全部细胞脱落。另有15 批标本第三代仅导 致C6/36 细胞轻微CPE(培养至6 d 仍无脱落,仅个 别细胞圆肿),将此培养物转接BHK-21 细胞后一代 即导致剧烈病变,主要表现为第3 天起细胞不规则 缩小,5 d可达到细胞完全脱落。
3. 病毒的分子生物学鉴定:对于发生细胞CPE 的23 株阳性分离物,首先使用蚊媒病毒种属特异引 物进行RT-PCR扩增鉴定。其中19 株属于黄病毒属 成员:包括15 株导致C6/36 细胞轻微病变的JEV (12-LY039、12-YJ016、12-YJ017、12-YJ021、 12-YJ022、12-YJ023、12-YJ030、12-YJ033、 12-YJ038、12-YJ044、12-YJ054、12-YJ075、 12-YJ078、12-YJ082、12-YJ084),以及4 株仅引起C6/36 细胞典型病变的库蚊黄病毒(CxFV) (12-LY005、12-LY015、12-LY035、12-YJ018);3 株 引起C6/36 细胞病变的分离物为淡色库蚊浓核病毒 (CppDNV)(12-LY002,12-LY003,12-LY006);1 株 同时导致C6/36 和BHK-21 细胞典型病变的分离物 为盖塔病毒(GETV)(12-YJ020)。所有毒株的背景 信息见表 2。
进一步对15 株JEV 进行E基因片段(JE-955F, JE-2536R)特异扩增,可获得1 500 bp 大小的目标产 物;4 株CxFV 的E 基因特异引物(CxFV-2F, CxFV-2R;CxFV-3F,CxFV-3R;CxFV-4F,CxFV-4R) 扩增均可获得1 200 bp 大小的目标产物。
4. 病毒分离株的系统进化分析:将PCR阳性产 物序列提交至GenBank 进行比对,并下载相关序列 构建数据集,使用邻接法构建系统进化树。
JEV:将新分离的15 株JEV株与不同国家、地区 的JEV毒株E基因序列进行系统进化分析及基因分 型,毒株来源涵盖不同宿主、分离年代和基因型别。 结果显示,JEV 包含5 个基因型别,2012 年山西省 JEV 新分离株均分布于基因Ⅰ型(图 1)。15 株新分 离JEV 高度同源,并与山西省2009 年猪源分离株 SX09S-01 遗传关系最近,位于同一进化簇中。其他 与山西省新分离JEV亲缘关系较接近的毒株包括辽 宁(XJ69)、江西(JX61)和上海的JEV分离株(SH53, SH17M-07)(图 1)。与目前在我国使用的减毒活疫 苗株SA14-14-2 序列相比,山西省新分离JEV 的核 苷酸同源性为87.9%~88.1%,氨基酸同源性达到 97.2%~100.0%;同为基因Ⅰ型,15 株新分离JEV 与 2009 年山西省分离株SX09S-01 和分离自患者脑脊 液的GZ56 的E 基因氨基酸同源性最高,均达 100.0%。基因序列已提交GenBank 注册,序列号: KP216584~KP216598。
CxFV:分别拼接新分离CxFV 的3 段E 基因核 酸序列,获得4 株病毒全长E 基因序列信息 (GenBank 序列号:KP216580~KP216583)。系统进 化分析结果中所有CxFV株分布在2 个基因型别中, 本研究获得的毒株与其他来自中国大陆地区的分离 株位于同一分支,与2006 年山东分离株 SDDM06-11 进化关系最近,并且与美国、日本株位 于同一个基因型别(GENⅠ)中(图 2)。山西省 CxFV 新分离株之间高度同源,其中12-LY005、 12-LY015 和12-LY035 的E 基因核苷酸、氨基酸同 源性均为100.0% ,与12-YJ018 的同源性分别为 99.9%和99.8%。山西省新分离株与SDDM06-11 核 苷酸和氨基酸同源性最高,分别为99.3%和97.3%。 盖塔病毒(GETV):将12-YJ020 的E2 基因序列 (GenBank 序列号:KP216576)与其他18 株国内外 GETV及其他甲病毒属成员(Ross River Virus)进行 系统进化及同源性分析,结果显示, 12-YJ020 与上海分离株SH0516 和 SH0515 的核酸亲缘关系及同源性最 高,均为99.3% ,与甘肃分离株 GS10-2 同源性为99.1% 。SH0516、 SH0515 和GS10-2 与12-YJ020 的氨 基酸同源性分别为99.5%、99.5%和 99.2%(图 3)。
CppDNV:基于NS1 和NS2 基因 序列的进化分析结果显示(图 4),山 西省新分离CppDNV 的3 个毒株 (GenBank 序列号:KP216577~ KP216579)核苷酸同源性为100.0%, 与我国其他地方CppDNV 分离株同 属于短颈浓核病毒属 (Brevidensovirus),亲缘关系最近、同 源性也很高,为99.8%~100.0%,其中 与CppDNVJZ16、CppDNVGZWN1、 CppDNVGZWN和XJ058 核酸同源性 达100.0%。
讨论 已证实3 种蚊媒病毒及相关疾病在中国存在与 流行,包括JEV、登革热病毒(Dengue virus,DENV)[10] 以及Tahyna 病毒(Tahyna virus, TAHV)[11]。其中JEV 所致的乙脑在 中国造成较大疾病负担[12]。中国> 90%乙脑病例发生在<15 岁儿童,该 病可通过及时接种乙脑疫苗预防[13], 但山西省2006 年发生成年人乙脑流 行[1],仅7-8 月累计报告病例66 例, 病死率为28.8%,94.74%死亡病例分 布在年龄>50 岁组[1, 14]。JEV 通过 “蚊虫-猪-蚊虫”循环实现其在自然 界中的保存和传播[12],但在当年及随 后开展的运城市多种生境蚊媒病毒 调查工作中,并未分离到JEV[2, 3]。本研究于2012年夏季再次在山西 省运城市进行蚊媒病毒监测,共获得 包括JEV 在内的4 种、23 株病毒分离 物。其中,GETV广泛分布于东南亚及 澳大利亚北部等太平洋沿岸地区[15], 能够在猪、马等多种动物中引发自限 性疾病[10],在我国已先后从河北、云 南、甘肃等省分离到[8, 16],本研究分离 的12-YJ020 为首次在山西省分离报 道GETV,该毒株与上海(SH0515、 SH0516)、甘肃(GS10-2)分离株的E2 基因亲缘关系最为接近,鉴于E2 编码 蛋白是病毒与宿主细胞受体相互作 用、诱导产生中和抗体的最重要表面 蛋白,提示山西省新分离GETV 与以 上毒株在致病性方面表现更为相 似。Wang 等[9]于2006 年从山东省首 次分离到1 株昆虫特异性病毒CxFV (编号SDDM06-11),该种病毒仅能在 C6/36 细胞扩增导致病变,不能在哺 乳动物细胞中扩增。本研究首次从 山西省分离到4 株CxFV,同样仅能在 C6/36 细胞中导致CPE,较典型特征 表现为细胞融合,系统进化分析显 示,山西省分离株与SDDM06-11 同 源性最高,提示CxFV 在我国已经呈 现扩展分布趋势,且毒株变异度较 小。2007 年付士红等[3]从山西省南部蚊虫中分离到 4 株CppDNV,本次仍能分离到该种病毒,提示 CppDNV在山西省南部地区自然界中稳定存在。E 基因编码蛋白决定着JEV 毒力及抗原性,比较2012年山西省运城市的JEV 毒株,发现均为基因Ⅰ型 JEV,且新分离株与疫苗株的E基因关键位点未见异 常突变,提示分离株毒力并未降低而神经侵入力同 样较弱,可以说明当地自然界中存在乙脑的病原体, 并且基因Ⅰ型JEV已成为当地优势毒种。
代培芳等[17]于2006 和 2007 年对山西省运城市进行 媒介蚊虫调查,临猗县2006 年 9 月捕获的三带喙库蚊和淡色 库蚊分别占59.4% 和38.7% , 2007 年8 月分别为77.7% 和 22.1%。2012 年8 月,除蚊虫总 量减少外,淡色库蚊已取代三 带喙库蚊成为当地绝对优势蚊 种(91.96%),媒介的大幅改变 可能导致其携带相应病毒的种 类和数量变化。从临猗县蚊虫 分离的7 株病毒中仅1 株为 JEV(12-LY039),但该毒株分 离自淡色库蚊,且标本来源于 既往有乙脑病例的农户家的猪 舍,提示当地仍然存在可致病 JEV。本研究中永济市蚊虫相 对较多,三带喙库蚊和淡色库 蚊分别占72.9%和16.2%,相对 于2007 年同期数据亦有改变 (三带喙库蚊57.6%,淡色库蚊 40.0%)[17],所分离毒株中JEV 占87.5%(14/16)。三带喙库蚊 对JEV 高度易感[18],本研究中 携带JEV的媒介以三带喙库蚊 为主,也包含淡色库蚊,且分离 到JEV 毒株的标本均来自猪 场,提示相关地方仍需严格做 好对猪场等环境的防蚊灭蚊及 卫生管理工作,防患于未然。
[感谢运城市疾病预防控制中心 (CDC)、临猗县CDC 及永济市CDC 对 本项目的支持]
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