2. 上海应用技术大学香料香精技术与工程学院, 上海 201418
2. School of Perfume and Aroma Technology, Shanghai Institute of Technology, Shanghai 201418, China
黄连上清胶囊由黄连、栀子、连翘等17味药组成,功能清热通便,散风止痛,用于上焦风热所致的头晕脑胀,牙龈肿痛,口舌生疮,咽喉红肿等症。据文献报道具有明显的通便、镇痛、解热、抗炎、抗菌作用[1],对玫瑰糠疹也有一定的疗效[2]。黄连上清软胶囊具有辅助治疗种植体周围炎的疗效显著[3]。黄连是黄连上清胶囊中的一味主药,是中医临床常见的抗菌消炎中药。研究表明,黄连中抗菌消炎的物质基础主要是其中所含的原小檗碱类生物碱成分,而非洲防己碱、表小檗碱、盐酸黄连碱、盐酸药根碱、盐酸巴马汀与盐酸小檗碱是黄连中6个主要的生物碱成分,在分子结构特点上均属异喹啉类生物碱[4]。黄连上清胶囊质量标准收载于中国药典2015年版一部[5],只对黄连、黄柏中的盐酸小檗碱进行了含量测定。中国药典与文献中均有报道对大黄[6-7]和黄芩[8]中主要成分的含量测定,有对黄连[9-10]及黄连上清片[11]中多个生物碱含量进行测定。本实验深入研究黄连中的生物碱,建立高效液相色谱法同时测定黄连上清胶囊中6个生物碱,为黄连上清胶囊的质量标准的全面提高提供依据,该方法准确、简便,可有效控制药品的质量。
1 仪器和试药 1.1 仪器Agilent 1260系列高效液相色谱仪(G1311B型二元泵,G1329B型自动进样器,G4212B DAD检测器,美国安捷伦)、Agilent openLAB色谱工作站(美国安捷伦),Eclipse XDB C18色谱柱(250 mm × 4.6 mm,5 μm;填料:十八烷基硅烷键合硅胶,安捷伦公司);CPA 225D型电子天平(0.01 mg,德国赛多利斯);pH计(美国梅特勒公司);超声仪(上海科导超声仪器有限公司)。
1.2 药品和试剂黄连上清胶囊从市场上购得:批号16080021和16110032样品生产厂家为太极集团重庆涪陵制药厂有限公司,批号161006样品生产厂家为上海海虹实业(集团)巢湖今辰药业有限公司。对照品非洲防己碱(批号W13J729029)、盐酸黄连碱(批号YM0529YA14)、表小檗碱对照品(批号H25F3X1)购于源叶生物;对照品盐酸药根碱(批号110733-201108)、盐酸巴马汀(批号110732-201108)、盐酸小檗碱(批号110713-201212)均购于中国食品药品检定研究院。甲醇和乙腈均为色谱纯(德国Merck公司),十二烷基磺酸钠(化学标准试剂,中国食品药品检定研究院),磷酸二氢钾(分析纯,国药集团化学试剂有限公司),磷酸(色谱纯,德国Merck公司),水为一级水(实验室制备)。
2 方法和结果 2.1 溶液的配制 2.1.1 对照品溶液分别称取对照品非洲防己碱、盐酸药根碱、表小檗碱、盐酸黄连碱、盐酸巴马汀、盐酸小檗碱适量,分别加甲醇溶解并稀释制成含非洲防己碱75 μg·mL-1、盐酸药根碱75 μg·mL-1、表小檗碱400 μg·mL-1、盐酸黄连碱400 μg·mL-1、盐酸巴马汀400 μg·mL-1、盐酸小檗碱2 000 μg·mL-1的混合对照品储备溶液。临用前精密量取储备溶液2 mL至100 mL容量瓶,用甲醇稀释至刻度,即得。
2.1.2 供试品溶液取黄连上清胶囊内容物粉末约1.0 g,精密称定,置50 mL容量瓶中,加盐酸-甲醇(1:100)混合溶液适量超声处理(功率150 W,频率40 kHz)30 min,放冷,用甲醇稀释至刻度,摇匀,滤过,用0.45 μm微孔滤膜过滤,取续滤液,即得。
2.1.3 阴性样品溶液以不添加黄连药材的处方按照制剂工艺制成胶囊内容物,取内容物粉末1.0 g,按供试品溶液制备方法,制得阴性样品溶液。
2.2 色谱条件色谱柱Agilent Eclipse XDB C18色谱柱(250 mm × 4.6 mm,5 μm);流动相乙腈-50 mmol·L-1磷酸二氢钾溶液(40:60)(混合溶液中加15 mmol·L-1十二烷基硫酸钠,再以磷酸调节pH至4.0);检测波长:345 nm;流速1.0 mL·min-1;柱温35 ℃;进样量:10 μL。
2.3 系统适用性试验分别取“2.1.1”与“2.12”项下的对照品溶液与供试品溶液10 μL,按“2.2”项下的色谱条件进样分析。结果,6个分析物的理论塔板数均大于10 000,且分离度均大于1.5。见图 1。
精密吸取“2.1.1”项下的混合对照品储备液0.5、1.0、2.0、3.0、5.0 mL,置同一100 mL量瓶中,用甲醇稀释至刻度,摇匀,即得系列对照品混合溶液。按“2.2”项下色谱条件依次进样测定,记录峰面积,以峰面积积分值(Y)为纵坐标,溶液浓度(X)为横坐标进行线性回归,绘制标准曲线。6个生物碱的回归方程见表 1。
精密吸取“2.1.1”项下对照品混合溶液10 μL,按“2.2”项下色谱条件测定,重复进样6次,连续3 d,记录色谱图峰面积。其RSD(n=6),非洲防己碱日内为0.8%,日间为1.2%;盐酸药根碱日内为1.0%,日间为1.4%;表小檗碱日内为0.9%,日间为1.1%;盐酸黄连碱日内为0.8%,日间为1.3%;盐酸巴马汀日内为0.7%,日间为1.5%;盐酸小檗碱日内为0.9%,日间为0.9%。结果表明精密度良好。
2.6 重复性试验称取黄连上清胶囊样品6份(批号为16080021)按“2.1.2”项下方法制备供试品溶液,按“2.2”项下色谱条件测定,计算6个生物碱的含量。非洲防己碱平均含量为35.9 μg·粒-1(RSD=1.3%);盐酸药根碱平均含量为33.0 μg·粒-1(RSD=1.2 %);表小檗碱平均含量为83.6 μg·粒-1(RSD=0.7%);盐酸黄连碱平均含量为126.8 μg·粒-1(RSD=0.4%);盐酸巴马汀平均含量为97.9 μg·粒-1(RSD=0.6%);盐酸小檗碱平均含量为762.9 μg·粒-1(RSD=0.9%)。结果表明本法重复性较好。
2.7 稳定性试验称取批号为16080021黄连上清胶囊样品的供试品溶液,分别在0、1、2、4、8、12和24 h,按“2.2”项下色谱条件测定,记录色谱图峰面积。其峰面积的RSD(n = 7)分别为非洲防己碱0.7%;盐酸药根碱峰0.5%;表小檗碱峰0.9%;盐酸黄连碱峰0.8%;盐酸巴马汀峰0.3%;盐酸小檗碱峰0.4%。实验结果表明6个生物碱在24 h内稳定。
2.8 加样回收率精密称取已知6个成分含量的黄连上清胶囊9份(批号16080021),分别精密加入适量对照品溶液,按“2.1.2”项下供试品溶液的制备方法操作,分别测定其含量,计算平均回收率结果见表 2。结果符合检测规定。
取3批样品,每批2份,按“2.1.2”项下的方法制备供试品溶液,按“2.2”色谱条件进行分析,记录峰面积,按外标法计算含量。结果见表 3。
查阅相关资料[12-15],对6个生物碱测定的流动相进行考察,采用乙腈-50 mmol·L-1磷酸二氢钾溶液(50:50)(混合溶液中加15 mmol·L-1十二烷基磺酸钠,再以磷酸调节pH至4.0)、乙腈-(磷酸-三乙胺-水,1:2:100)(26:74)、乙腈-0.05%磷酸二氢钾(35:65,以磷酸调节pH至3.0)、乙腈-乙酸铵(0.1 mol·L-1)水溶液(25:75,氨水调pH10)为流动相,均不能有效分离,且理论塔板数不高。采用本实验流动相乙腈-50 mmol·L-1磷酸二氢钾溶液(40:60)(混合溶液中加15 mmol·L-1十二烷基磺酸钠,再以磷酸调节pH至4.0),6个生物碱均能达到基线分离,分离度均大于2.0,且理论塔板数均大于10 000。
3.2 色谱柱的选择本实验采用3个厂家3个不同型号的C18色谱柱进行考察,分别为Agilent Eclipse XDB C18、Waters XBridge C18、Kromasil 100-5-C18,在本实验色谱条件下,对照品混合溶液与供试品溶液均达到有效分离,无杂质峰干扰。本方法对色谱柱的选择具有通用性。
3.2 样品前处理方法考察了供试品前处理溶剂盐酸-甲醇(1:100),因生物碱具有弱碱性,与酸成盐后易溶于水,故采用盐酸-甲醇(1:100)作为提取溶剂。考察了超声30 min与回流30 min的不同处理方法,6个生物碱提取量是一致的,故采用超声处理,简单方便。考察不同的超声时间15、30、45、60 min,6个生物碱在超声30 min时已经提取完全,故选择30 min作为超声时间。在比较超声提取过滤液直接测定与滤液过中性氧化铝柱后测定,发现过中性氧化铝柱后供试品中杂质干扰峰较少,但是因过柱处理过程烦琐,且主成分易吸附损失,测定结果偏低。故选择超声提取过滤液直接测定。
3.3 样品测定结果由表 3结果可见,3批黄连上清胶囊中6个生物碱的总含量均大于1.0 mg·粒-1。本方法可以作为黄连上清胶囊药典方法中盐酸小檗碱含量测定方法的补充,测定6个生物碱的总量作为评价黄连上清胶囊的质量,更具全面性。
[1] |
田军, 蒋珠芬, 杨士友. 黄连上清胶囊药理作用研究[J]. 中药药理与临床, 1998, 14(2): 3013. TIAN J, JIANG ZF, YANG SY. Study on pharmacological action of Huanglian Shangqing capsules[J]. Pharmacol Clin Chin Mater, 1998, 14(2): 3013. |
[2] |
郑优成. 黄连上清胶囊治疗玫瑰糠疹的疗效观察[J]. 安徽医药, 2010, 14(4): 455. ZHENG YC. Observation on the therapeutic effect of Huanglian Shangqing capsules on pityriasis[J]. Anhui Med Pharm J, 2010, 14(4): 455. |
[3] |
黄涛, 刘琳. 黄连上清软胶囊辅助治疗种植体周围炎的临床观察[J]. 中国药房, 2016, 27(18): 2491. HUANG T, LIU L. Clinical observation of Huanglian Shangqing soft capsules in the adjuvant treatment of inflammation around implant[J]. China Pharm, 2016, 27(18): 2491. DOI:10.6039/j.issn.1001-0408.2016.18.14 |
[4] |
杨勇, 叶小利, 李学刚. 4种黄连生物碱的抑茵作用[J]. 时珍国医国药, 2007, 18(12): 9. YANG Y, YE XL, LI XG. Antimicrobial effect of four alkaloids from Coptidis Rllizome[J]. Lishizhen Med Mater Med Res, 2007, 18(12): 9. |
[5] |
中国药典2015年版. 一部[S]. 2015: 1475 ChP 2015. VolⅠ[S]. 2015: 1475 |
[6] |
巫涛, 顾明君. HPLC测定黄连上清胶囊中大黄素、大黄酚含量[J]. 中成药, 2005, 27(4): 472. WU T, GU MJ. Determination of emodin and chrysanthemum in Huanglian Shangqing capsules by HPLC[J]. Chin Tradit Pat Med, 2005, 27(4): 472. |
[7] |
樊和平. 高效液相色谱法测定黄连上清胶囊中大黄素及大黄酚的含量[J]. 现代中药研究与实践, 2004, 18(6): 42. FAN HP. Determination of emodin and chrysophanol in Huanglian Shangqing capsules by HPLC[J]. Res Pract Chin Med, 2004, 18(6): 42. |
[8] |
张婕, 施夏蓉, 王松华. RP-HPLC法测定黄连上清胶囊中黄芩苷的含量[J]. 海峡药学, 2014, 26(3): 77. ZHANG J, SHI XR, WANG SH. Determination of baicalin in Huanglian Shangqing capsules by RP-HPLC[J]. Strait Pharm J, 2014, 26(3): 77. |
[9] |
李会, 苏华. HPLC法测定黄连中盐酸小檗碱和盐酸药根碱[J]. 广东化工, 2013, 15(40): 170. LI H, SU H. Determination of the berberine hydrochloride and jatrorrhizine hydrochlorid in Huanglian by HPLC[J]. Guangdong Chem Ind, 2013, 15(40): 170. |
[10] |
丁晴, 徐德然. HPLC法同时测定黄柏中盐酸药根碱、盐酸巴马汀及盐酸小檗碱的含量[J]. 西北植物学报, 2004, 24(11): 2143. DING Q, XU DR. Determination of jatrorrhizine, palmatine and berberine in Cortex phellodendron by HPLC[J]. Acta Botan Boreali Occident Sin, 2004, 24(11): 2143. DOI:10.3321/j.issn:1000-4025.2004.11.032 |
[11] |
胡紫艳, 冯振斌, 朱颖. 高效液相色谱法测定黄连上清片中5种生物碱[J]. 海峡药学, 2016, 28(8): 74. HU ZY, FENG ZB, ZHU Y. Determination of five kinds of alkaloids in Huanglian Shangqing tablets by HPLC[J]. Strait Pharm J, 2016, 28(8): 74. |
[12] |
阳勇, 李铁刚, 朱晶晶, 等. HPLC法测定黄连药材及其炮制品中主要生物碱的含量[J]. 中成药, 2010, 32(9): 1540. YANG Y, LI TG, ZHU JJ, et al. Determintion of main alkaloids in crude and processed Rhizoma Coptidis by HPLC[J]. Chin Tradit Pat Med, 2010, 32(9): 1540. |
[13] |
张帅, 赵宏冰, 何芳, 等. 不同炮制方法对黄连缘种生物碱含量的影响研究[J]. 中国药师, 2013, 16(1): 19-21. ZHANG S, ZHAO HB, HE F, et al. Influences of different processing methods on the vontent of 5 alkaloids in Rhizoma Coptis[J]. China Pharm, 2013, 16(1): 19-21. |
[14] |
徐丹丹. HPLC法测定黄连单煎液中小檗碱的含量[J]. 大家健康, 2013, 7(5): 56. XU DD. Determination of berberine in Huanglian single decoction by HPLC[J]. Healthy People, 2013, 7(5): 56. |
[15] |
谢进, 韩晋, 张诗龙, 等. 黄连不同部位中5种生物碱的含量比较[J]. 解放军药学学报, 2011, 27(2): 124. XIE J, HAN J, ZHANG SL, et al. Determination of five alkaloids in different parts of Coptis chinensis Franch.by ultra performance liquid chromatography[J]. Pharm J Chin PLA, 2011, 27(2): 124. |