2020,
Vol. 29
2. 上海海洋大学 上海市水产养殖工程技术研究中心, 上海 201306;
3. 上海海洋大学 水产科学国家级实验教学示范中心, 上海 201306
中国是世界上最大的淡水珍珠生产国, 其中超过80%的淡水珍珠是由三角帆蚌(Hyriopsis cumingii)生产的[1]。在蚌养殖中发现, 不育群体和单性群体具有十分明显的优势。性腺不发育可使能量转向体细胞生长, 提高个体的生长速度[2]。三角帆蚌雌雄异体, 雌雄间的产珠性能存在显著性差异, 成年雄蚌较雌蚌显现出较好的产珠性能[3]。目前, 性别决定和分化调控基因及发育调控机制在高等脊椎动物中已相继被发现, 但对三角帆蚌雌雄性别分化相关的分子机制研究较少。找到一种行之有效的分子技术鉴定方法, 可以在不损害蚌体本身的基础上, 有助于优质雄性育珠蚌的筛选。
WNT(Wingless-type MMTV integration site family)基因家族通过编码分泌型糖蛋白信号分子可以激活多种信号通路, 在脊椎动物中广泛存在, 最初是在小鼠(Mus musculus)[4]和果蝇(Drosophila melanogaster)[5]中发现的。目前, 在高等脊椎动物中, 共发现了19种WNT家族成员基因, 且均具有分泌型生长因子的特点[6]。WNT具有较高的保守性, 参与生物体内多种发育过程, 可以调控生物体细胞的增殖、分化和迁移, 在动物体的早期发育和器官形成过程中起着重要的作用[7-8]。
WNT4是WNT家族中重要的成员, 是调节WNT /β-catenin信号通路的关键蛋白。目前在人类(Homo sapiens)、小鼠、非洲爪蟾(Xenopus laevis)、斑马鱼(Danio rerio)、栉孔扇贝(Chlamys farreri)、厚壳贻贝(Mytilus coruscus)中均有发现。研究表明, 在哺乳动物中WNT4基因在雌性性腺分化过程中发挥着重要的作用。维持雌性生殖过程需要 WNT4 , 其在卵泡发育各个阶段都有表达, 包括缪勒氏管的形成[9]、类固醇的生成、卵母细胞的存活[10], 是卵巢分化的重要调控因子。在人类中, WNT4能够与 DAX1 基因协同调控女性发育, 并阻止睾丸形成[11], 在小鼠中, WNT4在其缪勒氏管中有表达, 缺失该基因会导致雌性胚胎发生雄性化, 但过表达该基因则不会使雄性胚胎雌性化[10-12]。在黑鲷(Acanthopagrus schlegeli)中, WNT4参与了卵巢的早期发育、生长和成熟, 但并未参与性别分化[13]。但在半滑舌鳎(Cynoglossus semilaevis)中, 卵巢的表达量显著低于精巢[14]。在一些硬骨鱼中, 如斑马鱼、青鳉(Oryzias latipes)、虹鳟(Oncorhynchus mykiss)中具有两个WNT4(WNT4 a和WNT4 b), 其中WNT4 a具有高保守性, 在性腺等组织中均具有较高的表达量, 而 WNT4 b保守性较低。
然而在无脊椎动物中, 特别是在贝类中, WNT4研究较少, 仅在栉孔扇贝、厚壳贻贝等海水贝类中有研究。本实验以三角帆蚌为实验对象, 通过RACE法获取了HcWNT4基因序列全长, 并通过荧光定量技术研究了其在三角帆蚌不同组织和不同发育时期的相对表达量, 通过原位杂交技术, 定位分析其在雌雄性腺中的分布情况, 初步探究了HcWNT4基因在三角帆蚌的性别决定及分化中的作用, 为进一步开展三角帆蚌中WNT基因家族研究提供参考资料。
1 材料与方法 1.1 实验动物本实验所用三角帆蚌均选自浙江省武义养殖基地, 其中1月龄、2月龄、3月龄的个体放置于装有RNAStore试剂(天根, 北京)的离心管中保存带回实验室, 4至8月龄幼蚌每月定时取样, 成熟2龄三角帆蚌带回实验室(26±2)℃暂养1周, 适当投喂小球藻。选取成熟2龄雌雄三角帆蚌各9只, 分别取其鳃、肝脏、斧足、闭壳肌、外套膜和性腺组织放入液氮, 并于-80℃保存。
1.2 总RNA提取与cDNA合成采用TRIzol(Invitrogen, USA)提取各组织总RNA, 通过NanoDrop 2000C (Thermo Scientific, 美国)测定RNA含量, 并通过1%琼脂糖凝胶电泳检查RNA的完整性。用PrimeScriptTM RT reagent Kit with gDNA Eraser(TaKaRa, 日本)试剂盒参照操作指南获得cDNA模板, 反应体系如下:5×gDNA Eraser Buffer 5 μL, gDNA Eraser 1 μL, total RNA适量(500 ng), RNase Free dH2O补足至10 μL, 42 ℃反应2 min; 在上述反应液中加入PrimeScript RT Enzyme Mix Ⅰ 1 μL, RT Primer Mix 4 μL, 5×PrimeScript Buffer 4 μL, RNase Free dH2O 1 μL, 37 ℃ 15 min, 85 ℃ 5 s, 4 ℃保存, 使用前稀释5倍。
1.3 HcWNT4序列全长的获取从本实验室三角帆蚌珍珠囊转录组库[15]中获取 HcWNT4 基因部分序列, 通过Primer Premier 5.0软件设计引物(表 1)。使用SMART 5' RACE & 3' RACE(Clontech, 美国)试剂盒合成cDNA第1条链, 并参照说明进行3'和5'扩增。PCR扩增体系为25 μL, 反应程序如下:94 ℃预变性3 min, 94 ℃ 30 s, 56 ℃ 30 s, 72 ℃ 2 min, 30个循环, 最后72 ℃延伸10 min, 4 ℃保存。用1%琼脂糖凝胶电泳检测PCR扩增产物, 用TaKaRa MiniBEST Agarose Gel DNA Extraction Kit Ver.4.0(TaKaRa, 日本)纯化目的片段后, 克隆到pCEM-T Easy (Promega, 美国)载体上, 16 ℃连接16 h, 并转入DH5α感受态细胞(天根, 北京)中, 涂平板, 37 ℃过夜。挑选阳性克隆样品送至生工(上海)测序, 与已知序列进行比对并进行拼接, 获得HcWNT4基因序列全长。
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表 1 本实验所需引物 Tab.1 Primers for the present study |
使用NCBI数据库中的Blast(https://blast.ncbi.nlm.nih.gov/Blast.cgi)确认HcWNT4基因的序列。使用ORFfinder(https://www.ncbi.nlm.nih.gov/orffinder/)测定HcWNT4的氨基酸序列。使用ProtParam(https://web.expasy.org/protparam/)分析HcWNT4的物理参数。使用SWISS-MODEL(https://swissmodel.expasy.org/)预测三级结构。使用Clustal W2程序和MEGA7.0中的邻接(NJ)方法构建系统进化树。
1.5 HcWNT4荧光定量分析检测反转后的各组织cDNA产物浓度, 分别稀释到100 ng/μL, 利用qRT-PCR技术检测HcWNT4基因在三角帆蚌各个组织中表达量情况。研究表明EF-lα在三角帆蚌各组织表达稳定, 选其作为参照基因。使用Primer Premier 5.0软件对HcWNT4基因ORF区设计qRT-PCR特异性引物(表 1)。使用TB GreenTM Premix Ex Taq Ⅱ (Tli RNaseH Plus, TaKaRa, 日本)和CFX96仪(Bio-Rad)测定相对基因表达水平。反应体系(20 μL):10 μL 2×TB Green Premix Ex Taq, 6.8 μL RNase Free水, 0.8 μL上游引物和0.8 μL下游引物, 1.6 μL cDNA模板。反应条件:95 ℃ 3 min, 95 ℃ 5 s, 60 ℃ 30 s, 共40个循环。使用2-ΔΔCT法计算HcWNT4基因相对表达量。
1.6 原位杂交用Primer Premier 5.0设计特异性引物, 并在下游引物5'端加入T7启动子序列(TAATACGACTCACTATAGGG)。纯化所得PCR产物作为体外转录模板, 使用T7 High Efficiency Transcription试剂盒(全式金, 北京)及DIG RNA Labeling Mix (Roche, 德国)得到标记探针, 于-80℃冰箱保存。
选择2龄成熟雌雄三角帆蚌, 将性腺组织在4%多聚甲醛中与焦碳酸二乙酯(DEPC)4 ℃固定24 h, 然后在70%乙醇中保存。将组织梯度脱水、包埋制片, 用石蜡切片机(Leica, 德国)切片, 厚度8~10 μm。然后根据DIG nucleic acid detection kit(SP6 / T7; Roche, 德国)说明书进行原位杂交, 用NBT/BCIP显色剂避光处理, 使用Leica DM 2500显微镜(Leica, 德国)观察杂交信号并拍照。
1.7 数据分析使用SPSS 18.0软件, 采用单因素方差分析各组织及其各个时期之间的差异, 并且P＜0.05被认为具有统计学意义, 使用SigmaPlot 12.5绘制条形图。
2 结果与分析 2.1 HcWNT4全长cDNA的克隆及序列特征通过RACE法克隆获得HcWNT4序列全长为1 560 bp(登录号:MN866367), 其中5'-UTR为396 bp、3'-UTR为24 bp, 开放阅读框(ORF)为1 140 bp, 编码了379个氨基酸(图 1)。预测其蛋白相对分子质量为42.51 ku, 理论等电点为8.82, 为亲水性蛋白。
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小写字母表示3'-UTR和5'-UTR。大写字母表示编码区(上部为核苷酸, 下部为氨基酸)。方框内ATG/TAA为起始密码子/终止密码子; 阴影部分为HcWNT4保守区域氨基酸序列 Lowercase letters indicate 3'-UTR and 5'-UTR. Uppercase letters indicate the coding region (the upper part is the nucleotide and the lower part is the amino acid). In the box, ATG/TAA is the start codon/stop codon; the shaded part:amino acid sequence of the conserved region of HcWNT4 图 1 三角帆蚌HcWNT4基因cDNA序列及编码的氨基酸序列 Fig. 1 HcWNT4 gene cDNA sequence and encoded amino acid sequence of Hyriopsis cumingii |
同源性比对结果显示, 三角帆蚌HcWNT4与栉孔扇贝和虾夷扇贝相似性最高, 分别为71.07%和70.51%, 与厚壳贻贝相似性为67.88%, 与非洲爪蟾相似性较低, 为61.86%。
从NCBI数据库中下载8个代表性物种的WNT4氨基酸序列, 使用MEGA 7.0软件构建WNT4的NJ系统进化树。结果表明, 三角帆蚌HcWNT4与栉孔扇贝和虾夷扇贝的蛋白进化关系最近, 与其他双壳类贝类序列聚类, 远离斑马鱼和小鼠序列。因此, 来自多种物种的WNT4之间存在高度序列保守性, 表明其进化和结构具有保守性, 推断具有功能相似性(图 2)。通过SWISS-MODEL程序预测了HcWNT4蛋白质三级结构(图 3), SWISS-MODEL建模结果显示, 同源模板与序列的相似性为52.43%, GMQE为0.68, QMEAN为-2.21, 说明该蛋白与模板蛋白匹配度较高, 其中, α螺旋占39%, β折叠为17%, TM螺旋占4%, 无规则卷曲为34%。
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基于MEGA 7.0使用邻接(NJ)方法构建, 节点上的数字表示重复1 000次的自举(Bootstrap)检验置信值 The tree was constructed by MEGA 7.0 using the neighbour-joining (NJ) method with 1 000 bootstrap repeats 图 2 不同物种HcWNT4氨基酸序列构建的系统进化树 Fig. 2 Phylogenetic tree of HcWNT4 amino acid sequences from different species |
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图 3 HcWNT4三级结构预测 Fig. 3 HcWNT4 tertiary structure prediction |
qRT-PCR结果(图 4)显示, HcWNT4 基因在雌雄三角帆蚌的6个组织(性腺、鳃、外套膜、斧足、闭壳肌和肝脏)中均有表达, 其中雌雄三角帆蚌均在斧足中相对表达量最高, 在性腺、闭壳肌中雌性表达量均显著高于雄性, 而在外套膜中雌性三角帆蚌显著低于雄性。
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*表示雌雄间存在显著性差异(*P<0.05, **P<0.01) Significant differences are indicated by asterisks (*P<0.05, **P<0.01) 图 4 HcWNT4在2龄三角帆蚌各组织中相对表达量 Fig. 4 Relative expression of HcWNT4 in different tissues of 2-year-old H. cumingii |
由图 5可知, 在三角帆蚌幼龄性腺发育阶段, 1月龄表达量最高, 2月龄次之, 之后逐渐下降, 在5月龄左右再次上升, 之后趋于平缓, 不同发育阶段性腺表达量存在显著性差异。
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不同字母(a, b, c, d)表示性腺不同发育时期表达存在显著性差异(P<0.05), 标有相同字母表示组间无显著性差异, ab, bc含有相同字母, 表示组间差异不显著; 1m.1月龄; 2m.2月龄; 3m.3月龄; 4m.4月龄; 5m.5月龄; 6m.6月龄; 7m.7月龄; 8m.8月龄 Different letters (a, b, c, d) indicate significant difference in expression of gonads at different developmental stages(P<0.05), identical letters indicate no significant difference between groups, ab, bc which have one identical letter indicated the expression levels are not significantly different from each other; 1m.1 month; 2m.2 months; 3m.3 months; 4m.4 months; 5m.5 months; 6m.6 months; 7m.7 months; 8m.8 months 图 5 1—8月龄性腺组织相对表达量 Fig. 5 Relative expression of gonad tissue from 1 to 8 months |
对HcWNT4基因在2龄成熟雌雄三角帆蚌性腺进行定位分析。原位杂交的结果显示在实验组中, 雌性性腺中存在明显的蓝紫色杂交信号, 主要位于卵母细胞的细胞膜上, 但在雄性性腺中信号较弱, 对照组中均无信号(图版)。
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1.雌性实验组;2.雄性实验组;3.雌性局部放大;4.雄性局部放大;5.雌性阴性对照组; 6.雄性阴性对照组;0o.卵母细胞;Fw.滤泡壁 1.Fecnale of Experimenal group; 2.Male of Experinmental group; 3.A partal enlargenent of female; 4. A partial enlargement of male;5. Female of negative control group;6.Male of negative control group;Oo.Oocyte;Fw. Follicular wall 图版 HcWNT4在2龄三角帆蚌性腺原位杂交 Plate HeWNT4 in situ hybridization in 2-year-old of H. cumingii gonads |
WNT信号通路在进化上是一条极保守的信号传导途径, 从无脊椎动物果蝇到脊椎动物斑马鱼、小鼠和人类中都存在这条信号通路, 它对于调控生物体内多种生物学过程都具有重要的作用。WNT家族包含许多成员, 目前为止, 在哺乳动物中已经报道了19种WNT基因(Wnt1、Wnt2、Wnt2b、Wnt3、Wnt3a、Wnt4、Wnt5a、Wnt5b、Wnt6、Wnt7a、Wnt7b、Wnt8a、Wnt8b、Wnt9a、Wnt9b、Wnt10a、Wnt10b、Wnt11和Wnt16)。其功能需要与卷曲蛋白受体和LRP共受体结合[16]。WNT蛋白参加生物体内多种发育过程, 包括细胞增殖分化、原肠腔发育、组织器官分化和成体细胞组织内维持稳态等。
WNT4能够激活性腺发育中的经典WNT信号传导途径[17-18]。研究表明, WNT4在不同生物内的多种组织中均有表达。在栉孔扇贝[19]、厚壳贻贝[20]和栉江珧(Atrina pectinata)[21]中, 其性腺、闭壳肌、鳃、外套膜中均有表达, 推测WNT4可能参与了多种组织细胞的生命过程。本研究中, 在雌雄三角帆蚌的6个组织中均有表达, 且雌雄间存在差异, 在卵巢中相对表达量显著高于其在精巢中的表达量, 推测HcWNT4可能与卵巢发育有关, 参与了三角帆蚌两性分化过程。在黑鲷和牙鲆(Paralichthys olivaceus)中有相似的结果, WNT4在卵巢中表达量均显著高于精巢[13, 22]。在小鼠中, 敲除其WNT4基因, 并转入新型WNT4, 会导致卵巢卵泡细胞生成受损, 雌性小鼠生育能力降低, 最终导致卵巢早退, 由此推测, WNT4在卵泡细胞发育中起着至关重要的作用[23]。在人类中, WNT4基因突变可能会导致以缺乏子宫和输卵管以及雄激素过多的临床体征为特征的综合征, 这表明WNT4基因在女性生殖道发育中起着关键作用[24]。而在栉孔扇贝[19]和虹鳟中[25], 结果却相反, 精巢的表达量高于卵巢, 这可能是因为物种差异及WNT4的多功能性所致。
早期表达中, 幼蚌性腺在1月龄时表达量最高, 之后逐渐下降, 5月龄再次上升后又缓慢下降, 逐渐趋于平缓, 推测HcWNT4参与了早期发育和性别分化过程。在栉江珧中, WNT4在不同发育阶段的性腺中均有表达, 在囊胚期和原肠期、稚贝阶段表达量较高, 推测其在性腺生长过程中起着重要的作用, 这一现象与牙鲆性腺中结果相似[22]。而在长牡蛎(Crassostrea gigas)中, WNT4在胚胎发育早期表达量较高, 猜测该基因在早期发育阶段参与了某些器官的形成[7], 在哺乳动物中存在相似的结果, WNT4参与哺乳动物早期胚胎发育, 以及多种器官的发育, 如肾脏、乳腺和生殖系统等。
为进一步了解HcWNT4基因在成熟三角帆蚌性腺中的表达位置, 通过组织切片, 地高辛标记法对2龄三角帆蚌雌雄性腺进行原位杂交, 结果显示, 在雌性三角帆蚌卵母细胞的细胞膜上有明显的蓝紫色杂交信号, 而在精巢中信号较弱, 这与实时荧光定量PCR结果一致, 推测HcWNT4与雌性性腺分化和卵子形成有关。有研究表明, WNT4基因在卵泡发育过程中的颗粒细胞上均有表达, 可以上调Amh的表达, 对缪勒式管的形成、卵泡的发育必不可少[10]。而在扩展莫尼茨绦虫(Moniezia expansa)中, 通过核酸原位杂交分析发现, WNT4基因在虫体的雌雄生殖细胞里均有表达, 推测WNT4可能参与了其生殖细胞的发育过程[26]。
本实验克隆了三角帆蚌HcWNT4基因序列全长, 原位杂交结果显示, 在雌性卵母细胞的细胞膜上有较明显的杂交信号, 而在雄性精巢中杂交信号较弱, 与qRT-PCR结果一致, 推测HcWNT4基因可能与雌性性腺的分化和卵子形成有关。
| [1] |
汪桂玲, 白志毅, 刘晓军, 等. 三角帆蚌种质资源研究进展[J]. 水产学报, 2014, 38(9): 1618-1627. WANG G L, BAI Z Y, LIU X J, et al. Research progress on germplasm resources of Hyriopsis cumingii[J]. Journal of Fisheries of China, 2014, 38(9): 1618-1627. |
| [2] |
姜卫国, 许国强, 林岳光, 等. 合浦珠母贝三倍体和二倍体的生长比较[J]. 热带海洋学报, 1991, 10(3): 1-7. JIANG W G, XU G Q, LIN Y G, et al. Comparison of growth between triploid and diploid of Pinctada martensii (D.)[J]. Tropic Oceanology, 1991, 10(3): 1-7. |
| [3] |
何毛贤, 沈琪, 林岳光, 等. 合浦珠母贝二倍体、三倍体和非整倍体群体的基因杂合度与生长比较[J]. 热带海洋学报, 2002, 21(4): 55-62. HE M X, SHEN Q, LIN Y G, et al. Comparison of heterozygosity and growth between diploid, triploid and aneuploid pearl oyster Pinctada martensii(D.)[J]. Journal of Tropical Oceanography, 2002, 21(4): 55-62. |
| [4] |
VAN OOYEN A, NUSSE R. Structure and nucleotide sequence of the putative mammary oncogene int-1; proviral insertions leave the protein-encoding domain intact[J]. Cell, 1984, 39(1): 233-240. DOI:10.1016/0092-8674(84)90209-5 |
| [5] |
CABRERA C V, ALONSO M C, JOHNSTON P, et al. Phenocopies induced with antisense RNA identify the wingless gene[J]. Cell, 1987, 50(4): 659-663. DOI:10.1016/0092-8674(87)90039-0 |
| [6] |
KESTLER H A, KVHL M. From individual Wnt pathways towards a Wnt signalling network[J]. Philosophical Transactions of the Royal Society B:Biological Sciences, 2008, 363(1495): 1333-1347. DOI:10.1098/rstb.2007.2251 |
| [7] |
杨梅, 许飞, 刘俊, 等. 长牡蛎(Crassostrea gigas)Wnt4基因cDNA克隆与表达分析[J]. 海洋与湖沼, 2015, 46(1): 35-42. YANG M, XU F, LIU J, et al. Molecular cloning and expression of Wnt4 gene in pacific oyster Crassostrea gigas[J]. Oceanologia et Limnologia Sinica, 2015, 46(1): 35-42. |
| [8] |
GORDON M D, NUSSE R. Wnt signaling:multiple pathways, multiple receptors, and multiple transcription factors[J]. Journal of Biological Chemistry, 2006, 281(32): 22429-22433. DOI:10.1074/jbc.R600015200 |
| [9] |
STARK K, VAINIO S, VASSILEVA G, et al. Epithelial transformation of metanephric mesenchyme in the developing kidney regulated by Wnt-4[J]. Nature, 1994, 372(6507): 679-683. DOI:10.1038/372679a0 |
| [10] |
VAINIO S, HEIKKILÄ M, KISPERT A, et al. Female development in mammals is regulated by Wnt-4 signalling[J]. Nature, 1999, 397(6718): 405-409. DOI:10.1038/17068 |
| [11] |
JORDAN B K, MOHAMMED M, CHING S T, et al. Up-regulation of WNT-4 signaling and dosage-sensitive sex reversal in humans[J]. The American Journal of Human Genetics, 2001, 68(5): 1102-1109. DOI:10.1086/320125 |
| [12] |
BERNARD P, HARLEY V R. Wnt4 action in gonadal development and sex determination[J]. The International Journal of Biochemistry & Cell Biology, 2007, 39(1): 31-43. |
| [13] |
WU G C, CHANG C F. Wnt4 is associated with the development of ovarian tissue in the protandrous black porgy, Acanthopagrus schlegeli[J]. Biology of Reproduction, 2009, 81(6): 1073-1082. DOI:10.1095/biolreprod.109.077362 |
| [14] |
HU Q M, ZHU Y, LIU Y, et al. Cloning and characterization of Wnt4a gene and evidence for positive selection in half-smooth tongue sole (Cynoglossus semilaevis)[J]. Scientific Reports, 2015, 4: 7167. DOI:10.1038/srep07167 |
| [15] |
BAI Z Y, ZHENG H F, LIN J Y, et al. Comparative analysis of the transcriptome in tissues secreting purple and white nacre in the pearl mussel Hyriopsis cumingii[J]. PLoS One, 2013, 8(1): e53617. DOI:10.1371/journal.pone.0053617 |
| [16] |
NIEHRS C. The complex world of WNT receptor signalling[J]. Nature Reviews Molecular Cell Biology, 2012, 13(12): 767-779. DOI:10.1038/nrm3470 |
| [17] |
MAATOUK D M, DINAPOLI L, ALVERS A, et al. Stabilization of β-catenin in XY gonads causes male-to-female sex-reversal[J]. Human Molecular Genetics, 2008, 17(19): 2949-2955. DOI:10.1093/hmg/ddn193 |
| [18] |
LIU C F, PARKER K, YAO H H C. WNT4/β-catenin pathway maintains female germ cell survival by inhibiting activin βB in the mouse fetal ovary[J]. PLoS One, 2010, 5(4): e10382. DOI:10.1371/journal.pone.0010382 |
| [19] |
李海龙, 刘建国, 刘晓玲, 等. 栉孔扇贝wnt4基因cDNA克隆及表达分析[J]. 中国水产科学, 2013, 20(2): 260-268. LI H L, LIU J G, LIU X L, et al. Molecular cloning and expression analysis of wnt4 cDNA from the zhikong scallop Chlamys farreri[J]. Journal of Fishery Sciences of China, 2013, 20(2): 260-268. |
| [20] |
徐跃峰, 李一峰, 梁箫, 等. 厚壳贻贝Wnt4基因时空表达[J]. 水产学报, 2016, 40(10): 1567-1575. XU Y F, LI Y F, LIANG X, et al. Temporal-spatial expression of Wnt4 gene in the mussel Mytilus coruscus[J]. Journal of Fisheries of China, 2016, 40(10): 1567-1575. |
| [21] |
王昌勃, 李琪, 于瑞海, 等. 栉江珧wnt4基因cDNA的克隆表达及调控[J]. 中国水产科学, 2016, 23(5): 1041-1051. WANG C B, LI Q, YU R H, et al. Molecular cloning and expression analysis of wnt4 from Atrina pectinata and effects of estradiol-17β on its expression[J]. Journal of Fishery Sciences of China, 2016, 23(5): 1041-1051. |
| [22] |
翁申达.牙鲆性别相关基因的克隆与表达分析[D].青岛: 中国科学院研究生院(海洋研究所), 2013. WENG S D. Molecular cloning and expression patterns of sex-related genes in Paralichthys olivaceus[D]. Qingdao: The Institute of Oceanology, Chinese Academy of Sciences, 2013. |
| [23] |
PRUNSKAITE-HYYRYLAINEN R, SHAN J D, RAILO A, et al. Wnt4, a pleiotropic signal for controlling cell polarity, basement membrane integrity, and antimullerian hormone expression during oocyte maturation in the female follicle[J]. The FASEB Journal, 2014, 28(4): 1568-1581. DOI:10.1096/fj.13-233247 |
| [24] |
BIASON-LAUBER A, KONRAD D, NAVRATIL F, et al. A WNT4 mutation associated with Müllerian-duct regression and virilization in a 46, XX woman[J]. The New England Journal of Medicine, 2004, 351(8): 792-798. DOI:10.1056/NEJMoa040533 |
| [25] |
NICOL B, GUERIN A, FOSTIER A, et al. Ovary-predominant wnt4 expression during gonadal differentiation is not conserved in the rainbow trout (Oncorhynchus mykiss)[J]. Molecular Reproduction and Development, 2012, 79(1): 51-63. DOI:10.1002/mrd.21404 |
| [26] |
王正荣, 张艳艳, 薄新文, 等. 扩展莫尼茨绦虫wnt基因在虫体不同发育体节的差异表达[J]. 畜牧兽医学报, 2016, 47(12): 2483-2492. WANG Z R, ZHANG Y Y, BO X W, et al. Differential expression of wnt genes in different proglottides of Moniezia expansa[J]. Acta Veterinaria et Zootechnica Sinica, 2016, 47(12): 2483-2492. |
2. Shanghai Engineering Research Center of Aquaculture, Shanghai Ocean University, Shanghai 201306, China;
3. National Demonstration Center for Experimental Fisheries Science Education, Shanghai Ocean University, Shanghai 201306, China