2. 上海农林职业技术学院, 上海 201699
类胡萝卜素是一类存在于高等植物、微藻和部分光合细菌中的天然色素,由于其抗氧化特性[1],使其对包括癌症在内的一些疾病具有预防作用[2-5]。对类胡萝卜素天然合成过程的研究有助于提高产量,满足不断提升的市场需求。在类胡萝卜素生物合成途径中,八氢番茄红素合成酶 (phytoene synthase,PSY) 是催化关键步骤的限速酶,能影响整个类胡萝卜素合成的反应速率[6-7]。因此,深入研究PSY的编码基因序列 (psy)、酶结构及功能,有助于改进类胡萝卜素合成调控,或通过基因工程手段提高类胡萝卜素产物合成。
微藻中含有许多特有的类胡萝卜素[8],同时易于培养,因而成为类胡萝卜素自然来源的首选。近年来,雨生红球藻 (Haematococcus pluvialis)[9]、佐夫色绿藻 (Chromochloris zofingiensis)[10]、原壳小球藻 (Auxenochlorella protothecoides)[11]等藻类的psy基因全长序列相继被克隆鉴定。通过构建过表达载体及细胞核转化,成功将佐夫色绿藻的psy基因转入莱茵衣藻 (Chlamydomonas reinhardtii) 中,使细胞内紫黄质 (Violaxanthin) 和叶黄素 (Lutein) 的含量上升[10]。
小球藻 (Chlorella) 富含重要的类胡萝卜素[12],其中叶黄素能够增强鲤体内抗氧化酶的活性,从而增强抵抗有害物质的能力[13]。普通小球藻 (Chlorella vulgaris) 作为小球藻属的典型种,易于培养、生长迅速,结构简单便于研究,在藻类研究中常作为模式生物,也是天然类胡萝卜素的重要提取源[14]。因此,本文选取普通小球藻作为研究对象,首先克隆测定其psy基因的cDNA全长序列,并对其编码蛋白质的序列进行预测,分析其同源性并构建系统发生树。同时预测PSY蛋白质的基本理化性质、功能位点和亚细胞定位,并构建蛋白质高级结构的三维模型。
1 材料与方法 1.1 藻种培养方法普通小球藻 (C. vulgaris) 购于中国科学院淡水藻种库 (武汉)。藻细胞培养于1 000 mL三角烧瓶中,使用BG-11培养液[15],pH为7~8,藻液总体积400 mL。使用光照培养箱维持稳定的培养条件,温度 (25±1)℃,光照强度8 000 lx,光照周期为12 h (09:00至21:00):12 h。为获得足够的总RNA,当藻细胞生长进入指数期末期 (第7天, 21:00) 时收集藻细胞,用于提取总RNA及psy克隆。
1.2 总RNA提取使用TRIzol试剂 (Invitrogen) 按照使用指南提取总RNA。总RNA的浓度及纯度使用Nanodrop2000(Thermo Scientific) 测定,根据OD260计算RNA浓度 (RNA浓度=OD260×40 ng/μL),根据OD260/OD280及OD260/OD230判定RNA的纯度。用RNase-Free水将总RNA稀释至终浓度为500 ng/μL,保存于-80 ℃备用。总RNA的完整性使用1%琼脂糖凝胶电泳测定。
1.3 psy cDNA全长的克隆以总RNA为模板,使用反转录酶M-MLV (TaKaRa) 及引物Oligo (dT18, TaKaRa) 合成普通cDNA第一链。使用SMARTer PCR cDNA Sythesis Kit (Clontech) 合成3′RACE及5′RACE cDNA。操作过程均按试剂说明书。
psy保守片段的克隆:根据GenBank (https://www.ncbi.nlm.nih.gov/genbank/) 数据库中已登录的高等植物和微藻的psy基因核酸序列及氨基酸序列,使用Clustal Omega (http://www.ebi.ac.uk/Tools/msa/clustalo/) 进行多序列比对。核酸序列通过GeneFisher2(http://bibiserv.techfak.uni-bielefeld.de/genefisher2/) 生成简并序列,并用Oligo7(7.6,Molecular Biology Insights) 生成简并引物;氨基酸序列通过Codehop (http://blocks.fhcrc.org/codehop.html) 处理生成简并引物。综合以上两种方法,设计一对简并引物 (psy-pf和psy-pr,表 1) 用于第一轮PCR扩增,第二对非简并引物 (psy-yf和psy-yr,表 1) 用于第二轮PCR扩增。PCR使用GoTaq Green Master Mix试剂 (Promega)。第一轮以普通cDNA为模板,扩增程序:95 ℃预变性5 min,40个PCR循环 (95 ℃变性30 s,47 ℃退火30 s,72 ℃延伸1 min),及72 ℃延伸5 min。PCR产物稀释50倍后作为第二轮PCR模板,扩增程序:95 ℃预变性5 min,20个降落式PCR循环 (95 ℃变性30 s; 退火温度由70 ℃降落至61 ℃,每两个循环降低1 ℃,退火30 s;72 ℃延伸1 min),25个PCR循环 (95 ℃变性30 s,60 ℃退火30 s,72 ℃延伸1 min),及72 ℃延伸5 min。
3′末端片段的克隆:第一轮PCR以3′RACE cDNA为模板,上游引物psy-3GSP-Fo,下游引物NUP,扩增程序:95 ℃预变性5 min,40个PCR循环 (95 ℃变性30 s,64 ℃退火40 s,72 ℃延伸2 min),及72 ℃延伸5 min。PCR产物稀释50倍后作为第二轮PCR模板,上游引物替换为psy-3GSP-Fi,扩增程序:95 ℃预变性5 min,5个PCR循环1(95 ℃变性30 s,72 ℃退火延伸2 min),5个PCR循环2(95 ℃变性30 s,70 ℃退火40 s,72 ℃延伸2 min),5个PCR循环3(95 ℃变性30 s,68 ℃退火40 s,72 ℃延伸2 min),5个PCR循环4(95 ℃变性30 s,67 ℃退火40 s,72 ℃延伸2 min),30个PCR循环5(95 ℃变性30 s,66 ℃退火40 s,72 ℃延伸2 min),及72 ℃延伸5 min。
5′末端片段的克隆:第一轮PCR以5′RACE cDNA为模板。上游引物NUP,下游引物psy-5GSP-Ro,扩增程序:95 ℃预变性5 min,40个PCR循环 (95 ℃变性30 s,68 ℃退火40 s,72 ℃延伸1 min),及72 ℃延伸5 min。PCR产物稀释50倍后作为第二轮PCR模板,下游引物替换为psy-5GSP-Ri,扩增程序:95 ℃预变性5 min,5个PCR循环1(95 ℃变性30 s,72 ℃退火延伸2 min),5个PCR循环2(95 ℃变性30 s,70 ℃退火30 s,72 ℃延伸2 min),30个PCR循环3(95 ℃变性30 s,68 ℃退火30 s,72 ℃延伸2 min),及72 ℃延伸5 min。
所有PCR产物经1%琼脂糖凝胶电泳后切胶回收,经普通琼脂糖凝胶DNA回收试剂盒 (天根) 纯化。纯化产物连接至pMD19-T载体 (TaKaRa),并转化至感受态细胞DH5a (天根)。挑取阳性单克隆经PCR验证后送至上海生工生物工程有限公司测序。
1.4 序列分析使用DNAMAN (8.0,Lynnon) 将上述psy基因保守片段、3′及5′末端片段序列拼接后获得cDNA全长序列。使用以下工具预测分析基因开放阅读框 (ORF)、蛋白质序列、基本理化性质、功能位点、亚细胞定位,以及多序列比对、构建发生树,并构建蛋白质高级结构的三维模型。
Translate (http://web.expasy.org/translate/):预测基因开放阅读框及氨基酸序列。
ProtParamon (http://web.expasy.org/protaram):计算蛋白质的理论等电点和分子量。
BLAST (https://blast.ncbi.nlm.nih.gov/Blast.cgi):将序列与GenBank数据库进行对比。
MEGA 7.0:计算遗传距离 (Poison模型) 及构建系统发生树 (N-J法,neighbor-joining),bootstrap重复1 000次检验。
TMHMM (http://www.cbs.dtu.dk/services/TMHMM/):预测蛋白质跨膜结构域。
TargetP (http://www.cbs.dtu.dk/services/TargetP/):分析产物蛋白的亚细胞定位[16]。
MEME (http://meme-suite.org/tools/meme):保守区块分析。
PROSITE (http://prosite.expasy.org/):基序 (motif) 分析。
NCBI Conserved domains (http://www.ncbi.nlm.nih.gov/Structure/cdd/wrpsb.cgi):基序及结构域分析。
Phyre2(http://www.sbg.bio.ic.ac.uk/phyre2/html/page.cgi?id=index):蛋白质三维结构建模。
Swiss-PdbViewer (4.1,DeepView):模型处理及标记。
2 结果 2.1 psy基因cDNA全长的克隆对已报道的psy基因序列进行比对后,根据保守序列设计了两对引物 (表 1),通过巢式PCR和降落式PCR,扩增出了一段406 bp的片段。测序及BLAST数据库比对表明该片段序列与其他绿藻的psy基因有较高的相似性,推测该片段属于psy基因保守序列的一部分。根据这一片段序列,设计基因特异性引物 (表 1) 进行RACE-PCR扩增,分别获得了5′末端及3′末端序列。使用DNAMAN将上述3段序列拼接后,最终获得了完整的psy cDNA序列。
克隆得到的cDNA序列全长为1 605 bp。使用Translate (ExPASy) 对序列进行翻译并预测其开放阅读框,得到编码区序列长1 248 bp,所编码的蛋白质包含415个氨基酸。编码区外分别具有338 bp 5′-非编码区 (UTR,untranslate dregion) 及22 bp的3′-UTR (图 1)。
经ProtParam (ExPASy) 计算,预测的PSY蛋白质分子量为46.83 ku,理论等电点为8.92,含量最多的氨基酸为丙氨酸 (12.8%),不稳定系数 (instability index) 为47.08,脂肪系数 (aliphatic index) 为79.59,总平均亲水性 (GRAVY,grand average of hydropathicity) 为-0.374。
通过TMHMM程序分析,该PSY蛋白不具有跨膜结构域,表明其可能不结合在膜上。
使用TargetP服务器分析所预测蛋白的亚细胞定位,结果显示在该PSY氨基酸序列中,1~45位氨基酸残基可能是一段叶绿体转运肽 (cTP, chloroplast transit peptide),可信度为3, 1为最可信,5为不可信。
2.2 同源性及系统发生树的构建将普通小球藻的PSY氨基酸序列与GenBank数据库进行Blastp对比分析,结果表明,普通小球藻的PSY氨基酸序列与其他绿藻具有较高的相似性和一致性:与原壳小球藻 (Auxenochlorella protothecoides)、小球藻 (Chlorella variabilis)、佐夫色绿藻 (Chromochloris zofingiensis)、莱茵衣藻 (Chlamydomonas reinhardtii)、绿色鞭毛藻 (Ostreococcus lucimarinus)、盐生杜氏藻 (Dunaliella salina) 的相似性分别为84%、83%、81%、87%、85%和80%;一致性分别为76%、74%、69%、74%、73%和74%。与高等植物、蓝藻及细菌的相似性和一致性相对较低:比如与百合 (Lilium brownii) 相似性为78%,一致性为67%;与聚球蓝细菌 (synechococcus sp.) 相似性为72%,一致性为58%;与类球红细菌 (Rhodobacter sphaeroides) 相似性为48%,一致性为32%。
将该PSY氨基酸序列与48种不同物种的PSY序列通过Clustal Omega进行比对,并用MEGA 7.0构建系统发生树 (N-J法)。从系统发生树 (图 2) 中可以看出,不同物种的PSY蛋白质聚集成细菌、蓝细菌、绿藻和高等植物4个分支。预测所得的PSY氨基酸序列 (图 2中*标示) 与其他绿藻聚集成一支,bootstrap值为92%。与普通小球藻在系统发生上最相近的是小球藻、原壳小球藻和佐夫色绿藻,遗传距离分别为0.173、0.188和0.239(Poisson模型)。此外,高等植物与绿藻的PSY蛋白聚集成一大类 (bootstrap值为93%),表明其可能由同一个蛋白质进化而来。
将系统发生树 (图 2) 中的48种PSY氨基酸序列经由MEME服务器分析保守区块 (Block), 结果见图 3(图中仅列出部分物种)。所有序列共有1个保守区块,在普通小球藻的PSY氨基酸序列中位于258~307位,将其命名为Block2。另有2个保守区块Block1(112~253位) 和Block3(315~394位) 只存在于高等植物、绿藻及蓝藻中 (图 3a)。细菌的crtB序列 (即PSY) 与其他物种的PSY蛋白质仅有一部分保守序列具有同源性 (Block2)。
通过Prosite和NCBI Conserved domains服务器对普通小球藻PSY氨基酸序列进行保守基序 (motif) 分析,结果标注于图 4。在所有比对的PSY氨基酸序列中都存在1个保守基序,在普通小球藻中位于267~293位氨基酸 (Block 2),序列为LGTANQLTNILRDVGEDASQRNRIYVP,将其命名为Motif S (图 4,红色框标注)。数据库对比显示这段序列名为“Squalene and phytoene synthases signature 2”,正式表达式为LGtanQlt.NIlRDVgeDasqrn..RiYiP,是八氢番茄红素合成酶蛋白的特征序列。在这段序列中存在一个保守的底物-镁离子结合位点/天冬氨酸富集区 (substrate-Mg2+bindingsite/aspartate-rich region),命名为Motif D3,起始氨基酸279位,序列为DVGED。另一个保守DXXXD基序在Block1中,命名为Motif D1,起始氨基酸153位,序列为DELVD。在普通小球藻中存在第3个DXXXD基序,位于226位氨基酸,序列为DELVD,命名为Motif D2(图 4,绿色框标注),在所对比的49种PSY中,只有普通小球藻、原壳小球藻和小球藻3种绿藻中存在Motif D2(图 4仅列出部分绿藻)。此外,在序列的第123位和第381位分别存在两个保守的活性位点遮蔽残基 (active site lid residues) YAKTF和RAYV,分别命名为Motif L1和Motif L2(图 4,蓝色框标注)。
除上述保守基序外,序列中存在多个潜在的蛋白质修饰位点,列于表 2。其中一部分位点位于保守区块中,可能是PSY蛋白的特征修饰位点。有3个位点虽然位于保守区块中,但却与其他物种的保守序列不同,可能是普通小球藻特有的修饰位点。
在序列的114位氨基酸 (Block1) 之前,还有多个非保守的潜在修饰位点,包括2个天冬酰胺-糖基化位点、3个cAMP和cGMP依赖的蛋白激酶磷酸化位点、3个酪氨酸激酶磷酸化位点以及3个酰基化位点 (表 2,图 4中黑色框标注)。
2.4 PSY蛋白质的高级结构建模通过Phyre2服务器,使用同源建模法 (homology-based) 与从头计算法 (ab initio) 预测PSY蛋白质的二级结构和三级结构三维模型。首先通过PDB数据库 (Protein Data Bank) 对比,依据序列一致性、比对的覆盖率及模板的可信度,以启发式算法 (heuristics) 选出了4个综合最优的模板 (c2zcpA,c4hd1A,c3we9A,d1ezfa),这些模板为细菌中已知的八氢番茄红素或角鲨烯 (squalene) 合成酶的晶体结构。根据这些模板,首先将PSY蛋白序列中与之同源的部分建模,这段序列为104~405位氨基酸残基,这部分模型的可信度为90%以上 (Phyre2服务器评估)。剩余的1~103位及406~415位残基使用从头计算法建模,可信度 < 90%。最终将三段模型拼接后形成PSY蛋白质的三维模型。
预测得到的二级结构如图 5,序列中共有21个α螺旋,65个β转角以及12个γ转角。预测构建的PSY蛋白三维模型见图 6,图中标出了蛋白质肽链的氨基端 (N端) 和羧基端 (C端)。4个保守基序 (Motif D1、D3,Motif L1、L2) 和非保守Motif D2的位点及结构在图中用白色表示。
在食品及医药等领域中,类胡萝卜素所蕴含的实用价值使得人们致力于通过生物合成,特别是从藻类中获取更多类胡萝卜素产物[8]。在类胡萝卜素生物合成途径中,八氢番茄红素合成酶PSY是催化关键步骤的限速酶,影响后续类胡萝卜素合成的反应速率[7]。除了通过特定培养条件增加藻细胞内类胡萝卜素的累积外,已有报道在植物和微藻中通过基因修饰构建外源的psy过表达载体,成功提高了宿主细胞内类胡萝卜素的含量[10, 17]。普通小球藻易于培养,常作为藻类研究的模式生物且富含类胡萝卜素,对于普通小球藻类胡萝卜素相关基因的研究还较少,本研究首次对普通小球藻psy基因进行了克隆 (图 1)。
将克隆得到的cDNA序列翻译成氨基酸序列后,通过多序列比对发现,该序列与其他绿藻中的PSY蛋白具有较高的相似性和一致性。系统发生分析也表明,该序列与绿藻的PSY蛋白具有同源性,与小球藻、原壳小球藻和佐夫色球藻的遗传距离较为接近 (图 2)。对序列中的保守区块及功能基序进行分析, 发现序列中存在PSY蛋白的保守区块 (图 3),在这些区块中包含了PSY蛋白的特征序列“Squalene and phytoene synthases signature 2”(Motif S),该特征序列可能与底物结合及催化活性有关[18]。此外还有2个“底物-镁离子结合位点”(Motif D1、D3) 和2个“活性位点遮蔽残基”(Motif L1、L2),均属于PSY蛋白序列的保守基序。以上结果从同源性、系统发生及保守基序3方面可以推断在普通小球藻中克隆获得的全长cDNA序列为八氢番茄红素合成酶的编码基因psy。
目前已经获得了普通小球藻叶绿体的全基因组序列 (GenBank登录号:NC_001865.1)[19],其中包括编码光反应中心蛋白、叶绿素合成酶、叶绿体分裂相关的基因。使用Blastn将psy的cDNA序列与叶绿体基因组序列进行比对后,并未在基因组序列中找到psy基因,表明psy不属于叶绿体基因组。由于类胡萝卜素的合成途径位于叶绿体中[20],因此PSY蛋白质可能在叶绿体外翻译后进入叶绿体内。亚细胞定位 (TargetP) 的分析结果支持了这一推测,PSY序列的前45个氨基酸可能为一段叶绿体转运肽 (图 5)。转运肽能引导肽链与叶绿体外被膜结合,转运肽穿过叶绿体膜后被切除,剩余肽链折叠修饰后形成完整蛋白质进入叶绿体[21-22],相应地,PSY序列上具有多个潜在的蛋白质修饰位点 (表 2),可用于蛋白质翻译后的修饰以完成折叠。
使用同源建模和从头计算相结合的方法,构建了普通小球藻PSY蛋白质的三维结构模型 (图 6)。在该模型中,两个保守的“底物-镁离子结合位点”Motif D1、D3分别位于相对的两个壁上,可各结合一个底物二牻牛儿基二磷酸 (GGPP)。随后的催化反应分成两步,第一步催化两分子GGPP生成1分子前植物烯二磷酸 (prephytoene-diphosphate) 和1分子焦磷酸,第二步由前植物烯二磷酸脱去二磷酸后生成八氢番茄红素 (phytoene)[23-24]。由于是两步反应,因此在底物结合位点附近存在两个“活性位点遮蔽残基”Motif L1和L2,能够从细胞环境中保护高活性的中间产物[25]。
早先报道在原壳小球藻和小球藻两种绿藻的PSY蛋白序列中存在第3个“底物-镁离子结合位点”[11],在普通小球藻的PSY预测氨基酸序列中同样发现了这一基序Motif D2(序列DELYD),而在其他所对比物种中该序列主要为DELYE,并不具有“底物-镁离子结合位点”的特征。在预测的三维模型中,Motif D2的二级结构主要为α螺旋,位于Motif D1和Motif D3的附近,三者组成环形结构,与原壳小球藻的结构相似[11]。该位点是否具有活性,在功能上对PSY蛋白有何影响还未知,后续可对不同PSY蛋白质进行比较,或应用定点突变[26]方法对其进行研究。
综上,本文首次克隆了普通小球藻中八氢番茄红素合成酶基因psy的cDNA全长,预测其蛋白质序列,构建了蛋白质的高级结构三维模型,并分析了其底物结合位点及催化反应过程。所获得的结果可为相关基因及蛋白质研究提供基因序列及理论预测,同时为构建过表达载体提供基因信息,从而有利于提高类胡萝卜素产量,满足日益上升的市场需求。
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